Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia
📋 ÍNDICE DEL ARTÍCULO
- 1. 🌏 INTRODUCCIÓN
- 2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
- 3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
- 4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
- 5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
- 6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
- 7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
- 8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES
- 9. 🌍 CONSERVACIÓN Y SOSTENIBILIDAD
- 10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
- 11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
- 12. ✅ CONCLUSIÓN
1. 🌏 INTRODUCCIÓN
Zoanthus pulchellus es un antozoo hexacoralario colonial de la familia Zoanthidae, caracterizado por formar céspedes o tapices carnosos sobre sustrato duro, sin esqueleto calcáreo alguno. Cada pólipo alcanza típicamente entre 3 y 8 mm de diámetro en el disco oral, con 30–44 tentáculos dispuestos en dos ciclos alternos, cortos, cónicos y de extremo romo, que en muchas morfologías presentan pigmentación contrastante (verde fluorescente, naranja, rosa o marrón) sobre un disco oral frecuentemente estriado radialmente hacia la boca. Los pólipos emergen de un coenenquima basal de grosor variable —de 1 a 4 mm— que cementa la colonia al sustrato y permite la expansión lateral por gemación y por fragmentación del propio coenenquima.
Ecológicamente es un colonizador oportunista de alta tasa de recubrimiento: monopoliza rápidamente superficies libres de coral muerto, cascote y pavimento arrecifal, combinando reproducción asexual clonal intensa con una defensa química eficaz frente a competidores bentónicos. Su éxito no depende tanto de la competencia directa por luz como de la ocupación temprana del espacio y de la tolerancia a condiciones subóptimas de turbidez, oscilación térmica y sedimentación, lo que lo convierte en un taxón indicador de degradación arrecifal y de fases de dominación por zoantídeos en arrecifes antropizados.
En acuariofilia se comercializa bajo la denominación genérica de «zoas» o «palys», y su fama de resistente procede precisamente de esa plasticidad simbiótica y trófica. Conviene advertir, no obstante, que el epíteto específico se aplica con enorme laxitud en el comercio y que la identificación visual de colonias indopacíficas es, en la mayoría de los casos, insegura (véase sección 2). Como todos los Zoantharia, contiene palitoxina y análogos en concentraciones variables según especie y morfo, por lo que se recomienda manipulación con guantes, gafas y ventilación, evitando el contacto con mucosidad y agua de aclimatación.
2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
La posición genérica está bien establecida, pero la identidad específica de las poblaciones indopacíficas comercializadas como Z. pulchellus es taxonómicamente problemática: la localidad tipo descrita por Duchassaing y Michelotti (1860) corresponde al Caribe, y los análisis de COI, 16S y 12S ribosomal mitocondrial han revelado complejos crípticos de especies dentro del género. La diagnosis diferencial exige cortes histológicos para determinar el patrón mesentérico braquicnémico (quinto par incompleto, dos directivas ventrales) y secuenciación para asignar especie.
| Categoría | Asignación |
|---|---|
| Reino | Animalia |
| Filo | Cnidaria |
| Clase | Anthozoa |
| Subclase | Hexacorallia |
| Orden | Zoantharia (Zoanthidea) |
| Suborden | Brachycnemina |
| Familia | Zoanthidae |
| Género | Zoanthus Lamarck, 1801 |
| Especie | Zoanthus pulchellus (Duchassaing & Michelotti, 1860) |
| Localidad tipo | Mar Caribe (Antillas menores) |
| Sinonimias frecuentes | Z. porphyreus, Z. sociatus (partim), morfotipos «green button» del Indo-Pacífico |
| Diagnosis clave | Coenenquima incrustante; pólipos <10 mm; dos ciclos tentaculares; mesenterios braquicnémicos; ausencia de esqueleto |
| Marcadores moleculares | COI, 16S rDNA, 12S rDNA, ITS2; simbiontes por ITS2 y clado Cladocopium |
| Estado taxonómico | Válido; registros indopacíficos requieren confirmación molecular |
3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
Su distribución arquetípica abarca el Caribe y el Atlántico tropical occidental, desde Florida y Bahamas hasta Brasil, con poblaciones densas en arrecifes de franja, lagunas y sustratos artificiales. Las colonias atribuidas a esta especie en el Indo-Pacífico (Indonesia, Filipinas, Vietnam, Mar Rojo) deben interpretarse como un complejo de morfotipos afines —frecuentemente Z. vietnamensis, Z. sansibaricus, Z. kuroshio o Z. vietnamensis— cuya asignación específica exige verificación genética. En términos prácticos de manejo, el comportamiento ecológico del grupo es homólogo en ambas cuencas.
Ocupa el cinturón somero entre 0 y 15 m, con registros esporádicos hasta 30 m en aguas claras, y muestra preferencia marcada por el arrecife posterior, las llanuras arrecifales y los parches lagunares, donde la irradiancia es alta (PAR frecuentemente superior a 400–600 µmol·m⁻²·s⁻¹ a mediodía) y la hidrodinámica es moderada a fuerte pero sin rompiente directa. Tolera bien aguas turbias, fluctuaciones de salinidad entre 30 y 37 y temperaturas de 22 a 31 °C, lo que explica su presencia en desembocaduras, puertos y muelles.
El sustrato preferente es el carbonato muerto: esqueletos de Acropora y Porites, pavimento calcáreo, cascote consolidado, raíces de mangle sumergidas y estructuras artificiales. La colonia se fija mediante el coenenquima, que incorpora granos de sedimento y fragmentos bioclásticos, incrementando la resistencia mecánica frente al oleaje. Compite por espacio mediante sobrecrecimiento y alelopatía, y coexiste —o desplaza— a macroalgas, esponjas incrustantes y corales juveniles en fases de recuperación.
Su simbiosis con dinoflagelados de la familia Symbiodiniaceae (predominantemente Cladocopium spp., antes Symbiodinium clado C) le confiere autotrofia significativa, complementada con heterotrofia activa sobre bacterioplancton, materia orgánica disuelta y presas de pequeño tamaño capturadas por nematocistos. Esta mixotrofia, junto con la capacidad de reorganizar la comunidad simbiótica ante estrés térmico, sostiene su robustez en sistemas eutrofizados. En el arrecife actúa, por tanto, como especie de fase de transición: pionera tras mortalidades masivas y potencial dominante en arrecifes crónicamente perturbados.
4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
Zoanthus pulchellus (Duchassaing & Michelotti, 1860) es un zoántido del Atlántico occidental (Florida, Caribe, Golfo de México y Brasil) que en el comercio aparece como «button polyp» caribeño, «green button» o simplemente Zoanthus salvaje. Es un pólipo pequeño y de crecimiento en tapiz, lo que lo distingue de inmediato de los Palythoa y de su congénere más robusto, Z. sociatus.
Pólipo individual: disco oral de 3–6 mm de diámetro (excepcionalmente 8 mm en pólipos viejos y bien alimentados), columna de 2–5 mm de altura y 2,5–4 mm de anchura. La columna es lisa, translúcida y sin incrustación de sedimento —carácter diagnóstico frente a Palythoa, que cementa arena y detritos en su pared—. La corona tentacular presenta 12–16 tentáculos cortos, cónicos y de punta aguda, dispuestos en dos ciclos y normalmente replegados hacia el disco oral durante el día, con expansión máxima en las 2–3 horas posteriores al apagado. El margen del disco suele mostrar un anillo de color contrastado y la boca una apertura estrellada central.
Coloración: muy variable y estable por clon. Los morfos más frecuentes combinan disco oral verde metálico, marrón o naranja con tentáculos de punta clara; existen líneas rojas, rosadas y azuladas en el disco. La columna permanece pálida, beige o translúcida, lo que crea el efecto de «pólipos flotando» sobre la roca.
Colonia: el rasgo definitorio es el coenenquima basal continuo: una lámina carnosa de 0,5–1,5 mm de grosor que conecta todos los pólipos y recubre el sustrato. La densidad típica es de 40–80 pólipos por dm² y las matas maduras alcanzan 15–40 cm de diámetro, con crecimiento radial y bordes lobulados que se insinúan en grietas y sobre roca muerta.
Diferencias con Z. sociatus:
- Tamaño: Z. sociatus tiene discos de 6–12 mm y columnas de hasta 12–15 mm, casi el doble que Z. pulchellus.
- Arquitectura: Z. sociatus forma montículos y «torretas» con pólipos individuales emergiendo de un coenenquima grueso; Z. pulchellus forma tapices planos y densos.
- Hábitat: Z. sociatus domina el intermareal y las crestas someras, tolera desecación y variación de salinidad; Z. pulchellus es más submareal, de lagunas y taludes protegidos.
- Acuario: Z. pulchellus es más delicado al manipularse, más propenso a infecciones bacterianas del coenenquima y menos tolerante a picos de amonio y a la exposición al aire.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
Especie resistente pero sensible a la estabilidad: tolera nutrientes altos y perdona errores de iluminación, pero no perdona oscilaciones bruscas de salinidad ni de alcalinidad.
| Parámetro | Valor objetivo | Rango tolerado |
|---|---|---|
| Temperatura | 25 °C | 23,5–27 °C |
| Salinidad | 35 ppt (1,026) | 34–36 ppt (1,024–1,027) |
| pH | 8,2 | 8,0–8,5 |
| Alcalinidad | 8,0 dKH (2,9 meq/L) | 7,0–9,5 dKH |
| Calcio | 430 ppm | 400–470 ppm |
| Magnesio | 1330 ppm | 1250–1400 ppm |
| Nitrato (NO₃) | 5–10 ppm | 2–20 ppm |
| Fosfato (PO₄) | 0,05 ppm | 0,02–0,12 ppm |
| Yodo | 0,03–0,06 ppm (opcional) | no detectable–0,08 ppm |
| Iluminación (PAR) | 150–200 µmol/m²/s | 80–300 µmol/m²/s |
| Fotoperiodo | 10–11 h | 8–12 h |
Iluminación: luz media. Con 150–200 µmol/m²/s (LED de 100–150 W a 30–40 cm) mantiene color y expansión estables; por debajo de 80 µmol/m²/s los pólipos se alargan, palidecen y el coenenquima se estira buscando luz. Por encima de 300 µmol/m²/s aparecen discos blanqueados y tentáculos retraídos de forma crónica. Espectro completo con pico azul 420–460 nm y blanco cálido moderado; el exceso de azul profundo sin blanco reduce la densidad de pólipos a medio plazo.
Flujo: moderado e indirecto, con renovación de 10–15 veces el volumen del acuario por hora y movimiento alternante. Necesita corriente suficiente para evitar que el coenenquima acumule detritos —el principal desencadenante de necrosis— pero no chorro directo, que impide la apertura y erosiona el tejido. Posición ideal: zona de rebote o corriente cruzada suave.
6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
Colocación: sustrato rocoso consolidado, en el tercio inferior o medio del acuario, sobre roca viva madura o roca muerta ya curada. Evita el sustrato arenoso: el coenenquima se entierra, retiene detritos y la colonia se necrosa desde la base. Dado su crecimiento en tapiz, colócalo en una isla de roca aislada con 5–8 cm de margen libre; en contacto con Montipora, Acropora o Palythoa pierde la competencia por sombreado y por aguijones, y sobre roca compartida acabará cubriendo zoántidos vecinos de morfos más lentos.
Fija la colonia con cianoacrilato gel o con una mezcla de epoxy y gel, presionando el coenenquima contra la roca sin aplastar los pólipos. Tras el montaje, mantén 24–48 h con iluminación reducida al 50 % y flujo suave para favorecer la readhesión.
Crecimiento: tasa moderada, de 1–2 pólipos nuevos por pólipo y mes en condiciones óptimas; un fragmento de 5 pólipos alcanza 30–50 pólipos en 6–9 meses. El crecimiento es radial y se acelera con alimentación semanal de microplancton (0,2–1 mm: rotíferos, nauplios, alimento en polvo muy fino) y con nutrientes estables en el rango indicado. El exceso de materia orgánica disuelta, en cambio, provoca proliferación de algas filamentosas sobre el coenenquima y cierre de pólipos.
Fragging: técnica sencilla pero con margen de error bajo. Corta con bisturí o cizalla sobre el coenenquima, nunca sobre la columna del pólipo; deja fragmentos de 3–5 pólipos como mínimo, con 2–3 mm de tejido conectivo alrededor. Realiza el corte fuera del agua el menor tiempo posible (menos de 60 s) y seca el excedente de mucus. Fija con cianoacrilato gel a un fragmento de roca o a un tapón de cerámica, aplicando el pegamento en la base del coenenquima y no en el disco oral.
Cuarentena y dip obligatorios: baño de yodo (Lugol’s, 40 gotas/L, 10–12 min) o dip comercial de coral, seguido de 7 días de observación. La herida cierra en 3–7 días; durante ese periodo evita el flujo directo y la alimentación sobre el corte. Usa guantes y protección ocular: los zoántidos contienen análogos de palitoxina, y el aerosol del corte sobre mucosa o heridas es un riesgo real. No uses peróxido de hidrógeno ni baños hipersalinos sobre el coenenquima expuesto: provocan necrosis extensa en esta especie.
7. 🤝 COMPATIBILIDAD Y ALELOPATÍA
Zoanthus pulchellus es un zoántido colonial de crecimiento rápido, con pólipos de 5–10 mm que forman tapetes sobre roca viva. Su compatibilidad depende menos de la agresividad directa y más de la competencia por espacio y de su capacidad de cubrir sustrato. En acuarios bien establecidos convive con gobios, blenios, cirujanos, payasos, damiselas y la mayoría de camarones limpiadores y caracoles. Sin embargo, peces ángel enanos (Centropyge), algunos ángeles mayores, mariposas, filefishes y ciertos puffers pueden picotear pólipos; no es una regla universal, pero conviene observar. Cangrejos ermitaños y cangrejos grandes pueden pisotear o arrancar colonias pequeñas, sobre todo si están mal pegadas. Los invertebrados sésiles con tentáculos barrenderos, como Euphyllia, Lobophyllia o Catalaphyllia, pueden dañarlo por contacto directo; mantén 10–15 cm de separación o usa islas de roca.
Frente a otros corales, Z. pulchellus compite por espacio y puede sofocar colonias de crecimiento lento, incluidos SPS delicados, zoántidos menos vigorosos y musgosas. No debe colocarse en un nanoarrecife junto a acroporas frágiles sin prever podas y aislamiento. Su alelopatía es principalmente química y por contacto: libera compuestos orgánicos al agua y genera microambientes con menor oxígeno y luz bajo su tapete. El carbón activado, los cambios de agua y una buena exportación de materia orgánica reducen la carga alelopática. No es un coral adecuado para sistemas con escasa filtración química o con SPS muy sensibles en volúmenes pequeños.
Importante: muchos zoántidos contienen palitoxina o análogos, y Z. pulchellus debe manejarse como potencialmente tóxico. Usa guantes, gafas y ventilación al fragmentar; nunca hiervas, cepilles en seco ni escrubes roca con pólipos. La toxina puede afectar a personas y mascotas. No es un pez ni un coral «venenoso» para todos los compañeros, pero sí exige precaución humana. Su crecimiento en tapete es su principal arma: coloniza rápidamente roca desnuda y puede pasar de fragmento a plaga local en meses si se sobrealimenta el sistema.
8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS ESPECÍFICOS
Los problemas más frecuentes son retracción persistente, cierre de pólipos, pérdida de color y necrosis. No todo cierre es enfermedad: cambios de salinidad, alcalinidad inestable, temperatura fuera de 24–27 °C, densidad menor de 34–36 ppt, fosfato muy alto o flujo excesivo pueden irritar la colonia. Mantén alcalinidad en 7–9 dKH, pH 8.1–8.4 y nitratos utilizables (2–10 ppm) sin acumulación de detritus. La luz moderada y el flujo indirecto favorecen pólipos abiertos; el flujo directo fuerte los cierra.
El «zoapox» o viruela de zoántidos se manifiesta como puntos blancos opacos, pólipos cerrados y tejido irregular. No tiene tratamiento veterinario validado; se recomienda aislamiento, baño de yodo según fabricante, mejora de flujo y carbón activado. La «melting disease» o necrosis bacteriana produce pérdida rápida de tejido, olor fétido y dispersión de moco; retira la colonia afectada, corta tejido muerto con instrumental limpio y realiza baños de coral. La cuarentena de 4 semanas y el baño preventivo con productos a base de yodo o CoralRx reducen riesgos.
Los depredadores específicos incluyen nudibranquios comedores de zoántidos, caracoles sol y planarias; revisa la base de los pólipos y las rocas vecinas. Los gusanos tubícolas y espiróbidos suelen ser inocuos, pero indican exceso de materia orgánica. Las algas filamentosas y cianobacterias pueden cubrir la colonia si hay nutrientes altos y poca corriente. Los amphipodos grandes y cangrejos pequeños a veces irritan, aunque no suelen ser la causa principal. Ante pólipos cerrados, revisa primero parámetros, pests y competencia; después considera baño y aislamiento. No confundas una colonia retraída por manipulación con una infección. La exposición a palitoxina por aerosoles o heridas es un riesgo humano grave: no manipules colonias enfermas sin protección.
9. 🌍 CONSERVACIÓN Y SOSTENIBILIDAD
Zoanthus pulchellus es una especie común en el Caribe y el Atlántico occidental, asociada a arrecifes someros, rocas y lagunas. No está evaluada por la IUCN ni incluida en CITES, pero eso no significa que su comercio sea innocuo. Las principales amenazas son la degradación del arrecife, el calentamiento, la acidificación, la sedimentación, la contaminación y la pérdida de sustrato. La recolección para acuariofilia existe, aunque gran parte del mercado puede abastecerse de propagación cautiva. Para un acuarista avanzado, la opción sostenible es comprar fragmentos cultivados, con trazabilidad, y evitar colonias arrancadas de roca natural.
Su rápido crecimiento lo hace ideal para propagación en cautiverio: fragmenta sobre roca seca curada, mantén colonias separadas y comparte excedentes con otros aficionados. No liberes fragmentos ni agua de acuario al medio natural; en regiones no nativas puede comportarse como especie invasora sobre roca viva. Desecha restos en bolsa cerrada, no por el desagüe. La cuarentena y el cultivo local reducen la presión sobre arrecifes y el riesgo de plagas. Apoya proveedores que documenten prácticas de cultivo y evita ejemplares de origen desconocido. Recuerda que la sostenibilidad incluye seguridad: manipula con guantes, ventila el área y nunca cocines ni hiervas roca con zoántidos. Un coral resistente no es un coral desechable; planifica su espacio y su poda antes de introducirlo.
10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
Zoanthus pulchellus es un zoántido colonial de arrecifes someros y lagunas, con pólipos pequeños, disco oral contrastado y tentáculos cortos. Es fotosintético por sus simbiontes, pero no es un coral duro: su éxito depende de estabilidad, espacio y control de plagas. Para acuaristas avanzados, estos son los puntos críticos.
- Estabilidad antes que valores “perfectos”: mantén temperatura de 24–26 °C, salinidad de 35 ppt (1.025–1.026), pH 8.1–8.4 y alcalinidad de 7,5–9 dKH. Un desvío brusco de alcalinidad o salinidad cierra pólipos y favorece infecciones; corrige siempre de forma lenta.
- Luz moderada y aclimatación: sitúa la colonia con PAR de 100–250 µmol·m⁻²·s⁻¹. Empieza al 30–50 % de la intensidad final durante dos o tres semanas. Demasiada luz directa blanquea o decolora; poca luz alarga los pólipos y reduce el crecimiento.
- Flujo intermitente, no laminar: busca movimiento suave que limpie el disco sin cerrar los pólipos. Evita bombas dirigidas de forma constante: el flujo violento impide la expansión y acumula detritos entre la matrícula colonial.
- Espaciado y control de crecimiento: deja 5–10 cm respecto a otros corales y colócala sobre una roca aislada. Z. pulchellus puede cubrir sustrato rápidamente, con 1–3 pólipos nuevos al mes en condiciones óptimas, y asfixiar vecinos más lentos.
- No abuses de la alimentación: no requiere alimentación directa. Una o dos veces por semana, ofrece rotíferos, nauplios de Artemia o aminoácidos muy diluidos; el exceso de comida eleva NO₃ y PO₄ y favorece algas sobre la colonia.
- Nutrientes controlados: mantén NO₃ entre 2 y 10 ppm y PO₄ entre 0,03 y 0,10 ppm. Valores indetectables durante meses pueden palidecer la colonia; valores altos y fluctuantes estimulan algas filamentosas que compiten por espacio.
- Yodo solo con medición: no añadas yodo a ciegas. Si usas suplementos, hazlo con test fiable y dosis conservadoras; el yodo libre elevado irrita los pólipos y puede intoxicar invertebrados sensibles.
- Cuarentena y baño de coral: inspecciona cada colonia nueva y haz cuarentena de 4–6 semanas. Usa baño de coral según etiqueta y revisa bases, grietas y roca. Los nudibranquios depredadores, caracoles sundial, arañas marinas y platelmintos pueden diezmar la colonia en días.
- Carbón activo y alelopatía: Zoanthus libera compuestos que afectan a otros corales. Mantén carbón activo cambiado cada 2–4 semanas y separa colonias de SPS o LPS sensibles; no confundas crecimiento lento con falta de nutrientes.
- Seguridad con palytoxina: usa guantes de nitrilo y protección ocular al manipular, fragmentar o limpiar la roca. Nunca hiervas, seques ni cepilles la colonia en seco: los aerosoles son peligrosos. Lávate manos y brazos, ventila la sala y evita el contacto con ojos y mucosas.
11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
Este calendario asume un sistema estable y maduro. Ajusta la frecuencia si la colonia es nueva, si cambias iluminación o si detectas plagas.
| Frecuencia | Tarea | Detalle práctico |
|---|---|---|
| Diario | Observación rápida | Comprueba apertura de pólipos, color, temperatura y flujo. Cierra pólipos de forma persistente indica estrés, plaga o parámetro inestable. |
| Cada 2–3 días | Revisión de plagas y detritos | Inspecciona bordes de la matrícula, bases y roca con lupa. Sifona detritos sin dañar el tejido; retira caracoles o nudibranquios sospechosos. |
| Semanal | Parámetros y cambio de agua | Mide alcalinidad, NO₃ y PO₄; cambia 10–15 % de agua con salinidad y temperatura igualadas. Limpia cristal y revisa carbón activo. |
| Quincenal | Ca, Mg y pH | Comprueba calcio 400–450 ppm, magnesio 1250–1350 ppm y pH 8.1–8.4. Ajusta por goteo; evita correcciones rápidas de alcalinidad. |
| Mensual | Inspección profunda | Revisa bombas, skimmer y zonas muertas. Separa colonias que se toquen; documenta crecimiento y color para detectar tendencias. |
| Trimestral | Fragmentación y mantenimiento | Si hace falta, fragmenta con guantes y protección ocular, sobre roca aislada. Renueva carbón, limpia bombas y revisa el protocolo de seguridad. |
12. ✅ CONCLUSIÓN
Zoanthus pulchellus es una especie atractiva y relativamente tolerante, pero no debe tratarse como un coral “inmortal”. Su punto fuerte es la colonización rápida; su punto débil es la sensibilidad a fluctuaciones de alcalinidad, salinidad y temperatura, y su vulnerabilidad a plagas y competencia algal. En un acuario avanzado, la clave está en ofrecer luz moderada, flujo intermitente, parámetros estables y espacio controlado. La cuarentena y la inspección periódica evitan la mayoría de pérdidas. No sobrealimentes: la fotosíntesis cubre gran parte de sus necesidades y el exceso de nutrientes favorece algas que compiten por la matrícula colonial.
La seguridad es parte del cuidado. Al manipular la colonia, usa guantes, protección ocular y ventilación; nunca cepilles ni calientes tejido en seco por el riesgo de palytoxina. Mantén carbón activo y separa la colonia de corales sensibles por alelopatía. Con estabilidad, revisión semanal y control de crecimiento, Z. pulchellus puede formar una matrícula colorida y duradera. La mejor señal de éxito no es solo que crezca, sino que lo haga con pólipos abiertos, color estable y sin invadir vecinos. Aísla, observa y corrige despacio: ese es el método más rentable con este zoántido.
❓ PREGUNTAS FRECUENTES
¿Zoanthus pulchellus es lo mismo que una «palythoa»?
No. Zoanthus pulchellus (Duchassaing & Michelotti, 1860) pertenece a la familia Zoanthidae y forma colonias de pólipos pequeños —disco de 5–10 mm— unidos por un coenenquima delgado y translúcido, sin sedimento incrustado. Palythoa caribaeorum presenta pólipos de 10–20 mm sobre una base gruesa y carnosa, literalmente cargada de arena y detritos. La distinción es práctica: Palythoa acumula mucha más palitoxina y crece como masas más voluminosas. Z. pulchellus se reconoce por el verde esmeralda intenso del disco oral, con la boca contrastada en blanco, rosa o azul, y tentáculos cortos dispuestos en dos filas.
¿Qué iluminación y corriente necesita?
Es un zoántido fotosimbiótico obligado (Symbiodiniaceae), así que la luz es su principal fuente de energía. Trabaja bien entre 100 y 250 µmol·m⁻²·s⁻¹ con fotoperiodo de 8–10 horas; tolera menos luz, pero el color verde se apaga y los pólipos se alargan buscando la fuente. La corriente debe ser moderada e indirecta: 10–20 veces el volumen del tanque por hora con movimiento aleatorio. Un flujo laminar fuerte y constante lo irrita y lo mantiene cerrado. Colócalo siempre sobre una roca aislada, porque forma tapiz y ahoga SPS y LPS.
¿Es peligroso manipularlo?
Contiene palitoxina y análogos en concentraciones muy inferiores a las de Palythoa, pero no es inocuo. Nunca cepilles la roca, la raspes en seco ni la hiervas: los aerosoles son la vía de exposición más peligrosa y provocan cuadros pseudogripales, fiebre, disnea e irritación ocular. Usa guantes de nitrilo, gafas de protección, ventilación y carbón activo. Enjuaga las piezas fuera del acuario, lava manos y superficies, y mantén niños y mascotas alejados del material húmedo.
¿Cómo controlo su crecimiento?
Se propaga por fisión pedal y por brotes del coenenquima; en condiciones estables puede duplicar su superficie en dos o cuatro meses. Aíslalo con una barrera de arena estéril o roca desnuda de 5–8 cm, revisa los bordes mensualmente y retira el excedente con espátula desde la periferia, nunca desde el centro. Recuerda que compite también químicamente, no solo por espacio.
¿Por qué se cierran los pólipos?
Un cierre de más de 48 horas suele indicar inestabilidad de parámetros: mantén alcalinidad en 7–9 dKH, salinidad 1.024–1.026, NO₃ entre 5 y 15 mg/L, PO₄ en 0,03–0,1 mg/L y temperatura de 24–27 °C. Busca depredadores con linterna roja de noche: nudibranquios aeolidios que imitan el color del pólipo, arañas de mar y caracoles perforadores. Las pústulas blancas del «zoa pox» se asocian a estrés; un baño de yodo y la corrección de parámetros suelen resolverlo.
¿Necesita alimentación suplementaria?
Es mayoritariamente autótrofo. La alimentación es opcional: rotíferos, nauplios de Artemia o mysis picado dos veces por semana, con bombas apagadas diez minutos, aceleran el crecimiento pero no son imprescindibles. Para propagarlo, corta fragmentos de 3–5 pólipos con coenenquima, pégalos a una roca con cianoacrilato en gel y cúralos dos semanas en zona de corriente suave y luz media.
📚 REFERENCIAS
- Duchassaing de Fombressin, P. & Michelotti, J. (1860). Mémoire sur les Coralliaires des Antilles. Memorie della Reale Accademia delle Scienze di Torino, ser. 2, 19: 279–365.
- Humann, P. & DeLoach, N. (2002). Reef Creature Identification: Florida, Caribbean, Bahamas. New World Publications, Jacksonville.
- Reimer, J.D. (2010). Key to field identification of shallow water brachycnemic zoanthids (Order Zoantharia: Suborder Brachycnemina) present in Okinawa. Galaxea, Journal of Coral Reef Studies 12: 23–29.
- Sinniger, F., Reimer, J.D. & Pawlowski, J. (2008). Potential of DNA sequences to identify zoanthids (Cnidaria: Zoantharia). Zoological Science 25(12): 1253–1260.
- Deeds, J.R. & Schwartz, M.D. (2010). Human risk associated with palytoxin exposure. Toxicon 56(2): 150–162.
- Borneman, E.H. (2001). Aquarium Corals: Selection, Husbandry, and Natural History. TFH Publications, Neptune City.
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia
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