Lobophyllia corymbosa

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Lobophyllia corymbosa es un coral duro LPS de colonia masiva, generalmente hemisférica o subhemisférica, que en cautividad crece como un bloque compacto de aragonito recubierto por tejido carnoso. No es una especie flabelo-meandroide ni ramificada: sus coralitos forman series meandroidas con valles y crestas que comparten paredes, un rasgo que la separa de L. hemprichii. Los valles suelen medir 20-30 mm de anchura, con septos exsertos y dientes grandes, romos y muy marcados; la columela es trabecular y el esqueleto, denso y pesado, con costas gruesas. En colonias adultas, el diámetro puede superar los 30-50 cm, aunque el crecimiento en acuario es lento.

Los pólipos son carnosos, con tentáculos cortos, numerosos y de punta redondeada, distribuidos sobre el disco oral y a lo largo de los valles. Durante el día suelen permanecer parcialmente retraídos, mostrando el patrón de valles y crestas; tras la alimentación o al apagarse la luz se expanden y pueden duplicar su volumen aparente. Esa expansión es normal y no debe confundirse con edema o infección. El color es muy variable —marrón, verde, rojo, gris o combinaciones con centros contrastados— y no permite identificar la especie por sí solo; la arquitectura meandroide y el esqueleto masivo son los caracteres diagnósticos.

Como coral zooxantelado, L. corymbosa alberga zooxantelas simbióticas (Symbiodiniaceae) en la gastrodermis. La fotosíntesis del simbionte cubre buena parte de su demanda energética, pero la especie es también heterótrofa y captura presas de tamaño medio: mysis, artemia adulta, trozos de gamba o pescado de 3-6 mm. La alimentación no debe sustituir a la luz, sino complementar la nutrición en tanques con nitratos y fosfatos bajos. El esqueleto se deposita como aragonito y las zonas de crecimiento activo se aprecian como un borde de tejido claro que avanza sobre la roca o sobre el esqueleto expuesto.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

L. corymbosa tolera cierto margen en nutrientes, pero es sensible a cambios bruscos de alcalinidad y salinidad. Mantener valores estables es más importante que perseguir cifras exactas. La iluminación debe ser moderada: un exceso de PAR sin aclimatación provoca retracción persistente, blanqueamiento parcial o pérdida de color en los valles. El flujo ha de ser indirecto y moderado, suficiente para renovar el agua sobre el tejido sin azotar los pólipos; un chorro directo de bomba puede impedir la expansión y favorecer lesiones por roce.

La combinación de luz moderada y nutrientes detectables favorece la expansión del tejido y evita que el coral dependa exclusivamente de la alimentación. Si los nitratos superan 15-20 mg/L de forma sostenida, aumenta el riesgo de algas sobre el esqueleto expuesto; si bajan a cero, el coral puede palidecer y retraerse. El yodo no es imprescindible, pero yoduros traza bien controlados ayudan en la muda de tejido en algunos sistemas; no deben usarse como remedio de lesiones.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocar L. corymbosa sobre roca firme, en la parte baja o media del acuario, con la base del esqueleto apoyada y no enterrada en arena. La arena fina puede acumularse entre los valles y provocar irritación o infección del tejido; si se usa sustrato, mantener una corriente suave que lo mantenga limpio. Dejar 15-20 cm de separación respecto a otros LPS y SPS, porque emite tentáculos barredores nocturnos y puede dañar corales vecinos. Tolera zonas de sombra parcial, pero no la oscuridad prolongada. No es un coral para roca inestable: su esqueleto pesado puede caer y fracturar el tejido.

El crecimiento es lento y masivo: en condiciones estables suele aumentar 0,5-1,5 cm de diámetro al año, depositando aragonito en los valles y extendiendo tejido sobre la roca circundante. No confundir el crecimiento con una recesión: el tejido sano avanza como un borde claro y firme; el tejido que se retrae deja esqueleto blanco y afilado. La reproducción sexual es rara en acuario; la vía práctica es la fragmentación asexual.

La fragmentación exige sierra de banda con hoja de diamante o cortador de esqueleto, no martillo y cincel. Cortar fragmentos que incluyan al menos un valle completo y tejido sano alrededor; evitar seccionar el centro del pólipo y no separar fragmentos sin tejido. Trabajar con guantes y gafas, usar agua del tanque para refrigerar el corte y desinfectar la hoja entre colonias. Tras el corte, hacer un baño de yodo suave según fabricante, colocar los fragmentos en zona de sombra y flujo moderado y no alimentar durante 24-48 horas. La cicatrización puede tardar 2-4 semanas; vigilar que no aparezca tejido necrótico marrón o algas sobre el corte. Los fragmentos pequeños sin valle completo suelen reabsorberse o crecer muy lentamente, por lo que no merece la pena fragmentar colonias de menos de 8-10 cm.

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Lobophyllia corymbosa es, junto con L. hemprichii y las Symphyllia, uno de los LPS con mayor capacidad agresiva del arrecife. Desarrolla tentáculos barredores a partir del borde del coralito, de 8-15 cm (ocasionalmente más), que se despliegan entre 2 y 4 horas después del apagado y permanecen extendidos toda la noche. La descarga de nematocistos es letal para el tejido de Euphyllia, Favia, Acanthastrea, Caulastrea e incluso SPS vecinos; la necrosis aparece en 12-24 horas como una banda blanca en el coral agredido. Deja un perímetro libre de 15-20 cm o aísla la colonia sobre arena o una roca-isla. A esto se suma competencia química por alelopatía: carbón activado en continuo (100-200 g/300 L, cambiado cada 3-4 semanas) reduce la carga de compuestos organohalogenados que libera.

Peces: convive sin problemas con la mayoría de peces de arrecife —Amphiprion, Gobiodon, Pseudochromis, Cirrhilabrus, Zebrasoma, Ctenochaetus— porque ningún pez común se alimenta de su tejido. Los riesgos reales son:

• Géneros de riesgo alto: Pomacanthus (P. imperator, P. semicirculatus), Holacanthus y varios Centropyge (C. eibli, C. flavissima, C. loricula) picotean el manto carnoso y provocan retracción crónica y necrosis focal.
• Chaetodontidae coralívoros: Chaetodon lunula, C. trifasciatus, C. collare y C. meyeri arrancan porciones de pólipo; un solo ejemplar puede consumir una colonia pequeña en semanas.
• Depredadores mecánicos: Balistidae, Tetraodontidae (Arothron), Diodontidae y Scaridae trituran el esqueleto, que en esta especie es relativamente poroso y de crecimiento lento.

Invertebrados: los camarones limpiadores (Lysmata amboinensis, L. debelius) y Stenopus hispidus no dañan el coral, pero le roban el alimento del manto y provocan retracción repetida; alimenta con la bomba en pausa y con el camarón distraído. Cangrejos ermitaños (Calcinus, Clibanarius) y caracoles grandes vuelcan la colonia: fíjala con epoxi o cemento a la roca. Mithraculus sculptus picotea tejido si pasa hambre. Anémonas Aiptasia y majano son un problema serio: su picadura deja una línea necrótica en el margen del coralito y, en colonias pequeñas, puede matarlas. El gusano de fuego Hermodice carunculata depreda activamente tejido de mussidos; Eurythoe complanata solo irrita. Los erizos (Diadema, Echinometra) abrasionan el manto al transitarlo, y los caracoles vermétidos generan redes de moco que mantienen el pólipo cerrado.

8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES

Blanqueamiento. En L. corymbosa el umbral térmico es de 30-31 °C mantenidos (o +2,5 °C sobre la media habitual de la colonia durante más de 48 h); también blanquea por luz excesiva (PAR > 450-500 µmol·m⁻²·s⁻¹ en acuarios con nitratos < 2 mg/L) y por transporte en oscuridad. El manto pasa de verde-marrón a translúcido y el esqueleto se transparenta. Si la causa se corrige en la primera semana, recupera color en 4-8 semanas; si el blanqueamiento supera el 60 % de la superficie y persiste más de 15 días, la mortalidad es alta.

RTN y necrosis bacteriana («brown jelly»). Es la patología más frecuente en importaciones. Producida por ciliados (Porpostoma notata) asociados a Vibrio, se reconoce por una masa mucosa marrón, maloliente, que avanza 1-2 cm por hora. Actúa con rapidez: sifona la gelatina, extrae la colonia, corta con sierra de disco 5 mm dentro de tejido sano, baño de yodo (Lugol a 15-20 gotas/L, 10-15 min) y carbón activado. Contagia a Euphyllia, Trachyphyllia y Homophyllia en horas. La necrosis de transporte (banda blanca desde la base) suele deberse a fluctuaciones térmicas o heridas del esqueleto; estabiliza temperatura, salinidad (34-35 g/L) y alcalinidad (7,5-8,5 dKH) y no manipules la colonia.

Parásitos y plagas.

• Caracoles piramidelídos (Tathrella iredalei): conchas cónicas blanquecinas de 1-2 mm en la base del pólipo o en las fisuras del esqueleto; succionan tejido y causan retracción crónica. Son nocturnos: retira manualmente con pinzas cada 5-7 días durante un mes para romper el ciclo de puesta.
• Gusanos planos (Waminoa spp.): masas pardas sobre el manto, inocuas pero indicadoras de exceso de materia orgánica;
  

  10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

  • Alimenta por valles, no “por pólipo”: Lobophyllia corymbosa forma una colonia meandroide con varias bocas dentro de cada valle. Con pipeta, deposita mysis de 3-5 mm cerca de cada boca, no sobre el manto expandido; si el alimento queda sobre el tejido, retíralo con una jeringa y agua del acuario. Dos o tres tomas semanales tras el apagado son suficientes para una colonia de 8-12 cm.
  • Respeta sus tentáculos barredores: los extiende 10-15 cm desde el margen, sobre todo 2-3 horas después de apagar la luz. Deja 20 cm de separación con Euphyllia, Acanthastrea, Favites y Scolymia; en nano no lo pegues a vecinos, aunque parezca compacto de día.
  • Flujo indirecto y comprobable: busca una renovación de 10-15 veces el volumen/hora en la rama, sin corriente laminar directa sobre el manto. Si el borde del tejido se levanta o los valles acumulan detritus, reorienta la bomba 15-20° y vuelve a observar 24 horas.
  • Luz moderada, con aclimatación real: 75-150 µmol/m²/s de PAR y fotoperiodo de 8-10 horas. Aclimata con malla que reduzca un 50% durante tres semanas; si aparece esqueleto blanco en los valles, baja a 50-75 PAR. Bajo LED de 300 PAR sin protección, se retrae y pierde tejido en días.
  • Alcalinidad estable, no “perfecta”: mantén 7,5-9,0 dKH con oscilaciones menores de 0,5 dKH/día. Mide siempre a la misma hora; un salto de 1,5 dKH por dosificación manual provoca recesión del manto desde la base, aunque calcio y magnesio estén en rango.
  • Inspecciona la base y los valles: revisa platelmintos del género Waminoa y nudibranquios sobre el tejido; un baño de CoralRx según fabricante y cuarentena de seis semanas antes de introducirlo evitan contaminar el sistema. No cepilles el manto: se desgarra con facilidad.
  • No lo saques al aire para limpiar: el manto se adhiere al esqueleto y se rompe. Para soplar detritos, usa jeringa de 50 ml con agua del acuario, sin exponer la colonia. Si hay cianobacterias en los valles, aspira con tubo fino; no uses peróxido sobre el tejido.
  • Fragmentar es una excepción: no es un coral de fragging rutinario. Si necesitas cortar, usa sierra de diamante a través del esqueleto, deja 2 cm de margen en cada fragmento y evita baños de agua dulce; la herida tarda semanas en cerrar y es puerta de entrada de infecciones.
  • Control térmico en verano: 24-26 °C; picos de 28 °C durante 6-8 horas provocan retracción y blanqueo parcial. Usa ventilador con reposición automática de agua, no aumentes la salinidad por evaporación; mantén 35 ppt (1.025-1.026).
  • Lee la retracción como señal, no como carácter: una colonia sana expande el manto 1-2 cm sobre el esqueleto. Si permanece contraído con tentáculos cortos, revisa primero alcalinidad y temperatura, después flujo y finalmente parásitos; no aumentes la alimentación para “compensar”.

  11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

  Calendario estacional para Lobophyllia corymbosa en acuario de arrecife

  Estación	Estabilidad y parámetros	Alimentación	Mantenimiento específico	Señal de alarma
  Primavera (mar-may)	Recalibra refractómetro; verifica consumo de alcalinidad tras el crecimiento invernal. Mantén 7,5-9,0 dKH y 420-450 mg/L de Ca.	2 tomas semanales de mysis; añade krill picado una vez cada 15 días.	Limpia bombas y revisa que el flujo indirecto no haya aumentado por incrustaciones; aspira valles con jeringa.	Manto retraído con bordes blanquecinos: revisa salinidad y alcalinidad antes de tocar la luz.
  Verano (jun-ago)	Controla 24-26 °C; evita picos de 28 °C. Reposición automática para no subir la salinidad por evaporación.	Reduce a 1-2 tomas semanales si la temperatura se acerca a 27 °C; el alimento no consumido se descompone rápido.	Ventilador con ATO, limpieza semanal de rejillas y comprobación de tentáculos barredores nocturnos.	Retracción diurna persistente o moco abundante: baja temperatura y revisa oxígeno.
  Otoño (sep-nov)	Vuelve a medir consumo de alcalinidad; con menos luz ambiental, ajusta fotoperiodo a 8-9 horas.	Recupera 2-3 tomas semanales; usa mysis enriquecido con aminoácidos una vez por semana.	Cambia carbón activo si lo usas para controlar alelopatía; revisa crecimiento del esqueleto y espacio con vecinos.	Recesión desde la base: descarta platelmintos y estabilidad de dKH.
  Invierno (dic-feb)	Vigila la temperatura nocturna de la sala; un calentador de 100 W para 200 L no compensa una habitación a 16 °C. Mantén 35 ppt.	Mantén 2 tomas semanales; no sobrealimentes si el acuario está más frío y el metabolismo baja.	Revisa juntas de bombas, calentador y sifón; evita corrientes frías directas sobre la colonia.	Contracción con tentáculos cortos y palidez: comprueba temperatura ❓ PREGUNTAS FRECUENTES ¿Cómo distingo Lobophyllia corymbosa de L. hemprichii y de L. pachysepta? L. corymbosa es flabelo-meandroide: la colonia arranca de un único pólipo y desarrolla valles largos y sinuosos, a menudo de 8-15 cm de recorrido, con varios centros bucales alineados en la misma depresión. Los septos presentan dientes gruesos y lóbulos paliformes marcados, visibles con el tejido retraído. L. hemprichii es faceloide: pólipos cilíndricos separados, cada uno con una sola boca y su propio muro. L. pachysepta también forma valles, pero más cortos y con septos de dientes más finos. El color (marrón, verde, rojo, gris) no es diagnóstico: solo la arquitectura esquelética lo es. ¿Qué parámetros exactos necesita? Temperatura 24-26 °C (tolera picos a 28 °C), salinidad 34-35 g/L, KH 7-9 dKH con fluctuación máxima de ±0,3 dKH al día, calcio 420-450 mg/L, magnesio 1300-1350 mg/L, nitrato 5-10 mg/L y fosfato 0,03-0,08 mg/L. Es especialmente sensible a las subidas bruscas de alcalinidad, que provocan retracción del tejido y exposición del borde septal. Mantén yodo detectable (0,03-0,06 mg/L) si observas pérdida de coloración. Evita densidades altas de materia orgánica disuelta: el tejido mucoso retiene detrito y favorece infecciones bacterianas en la unión con el esqueleto. ¿Qué iluminación y corriente tolera? Rango óptimo de 100-150 PAR con espectro completo; por encima de 250 PAR el disco oral se aclara y aparecen zonas blanquecinas en el tejido peribucal. Con menos de 50 PAR se expande de forma excesiva y pierde intensidad de color. La corriente debe ser indirecta y turbulenta, del orden de 10-15 cm/s: suficiente para arrastrar el moco que produce, pero sin incidir directamente sobre el tejido, que se desgarra con facilidad en flujo laminar fuerte. Colócala en sustrato firme, nunca sobre arena suelta, y con el disco orientado hacia la luz sin sombreado por roca superior. ¿Es agresiva con los corales vecinos? Sí. L. corymbosa desarrolla tentáculos barredores nocturnos que pueden extenderse 10-15 cm y, en conflicto directo, extruye filamentos mesentéricos con enzimas digestivas que necrosan el tejido de Acropora, Montipora y otros LPS de pared fina. Deja una separación mínima de 15 cm respecto a SPS y de 10 cm respecto a otros musídidos. Pierde frente a Galaxea fascicularis y frente a colonias grandes de Euphyllia. La agresión es también química: en acuarios pequeños (<150 L) el espacio de crecimiento queda reducido por alelopatía. ¿Cómo y cuándo la alimento? Los tentáculos se extienden de noche o 10-15 minutos después de detectar materia orgánica en el agua. Ofrece mysis, krill troceado o pellets de 3-6 mm dos o tres veces por semana, depositando la pieza sobre cada boca y retirando lo no ingerido a los 20 minutos. Cada centro bucal debe recibir alimento: en colonias con cinco o seis bocas, una sola ración grande genera regurgitación y aporte desigual. La alimentación acelera el depósito de esqueleto, pero un exceso eleva nitrato y fosfato y dispara la proliferación de algas en el borde de la colonia. ¿Se puede fragmentar y qué riesgos tiene? Sí, con sierra de banda refrigerada por agua salada. Cada fragmento debe contener al menos una boca completa con tejido peribucal de 1 cm alrededor; los cortes sin boca no regeneran y mueren en 2-4 semanas. El riesgo principal es la infección por «gelatina marrón» (ciliados y bacterias oportunistas) en el tejido seccionado: sumerge el fragmento en solución de yodo yodo-povidona al 0,5 % durante 5 minutos, colócalo en corriente moderada y agua limpia, y evita alimentar hasta que el borde cierre. La cicatrización tarda 2-4 semanas a 25 °C. 📚 REFERENCIAS Forskål, P. (1775). Descriptiones Animalium, Avium, Amphibiorum, Piscium, Insectorum, Vermium. Möller, Hauniae. Descripción original como Madrepora corymbosa. Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, Vol. 2. Australian Institute of Marine Science, Townsville. Budd, A.F., Fukami, H., Smith, N.D. & Knowlton, N. (2012). Taxonomic classification of the reef coral family Mussidae (Cnidaria: Anthozoa: Scleractinia). Zoological Journal of the Linnean Society, 166: 465-529. Borneman, E.H. (2001). Aquarium Corals: Selection, Husbandry, and Natural History. TFH Publications, Neptune City. Sprung, J. & Delbeek, J.C. (1997). The Reef Aquarium, Vol. 2. Ricordea Publishing, Coconut Grove. WoRMS Editorial Board. Lobophyllia corymbosa (Forskål, 1775). World Register of Marine Species, consulted 2024.