Lobophyllia hemprichii

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Lobophyllia hemprichii (Ehrenberg, 1834) es un coral pétreo de pólipos grandes que en el comercio se vende como «coral cerebro lobulado», «lobophyllia» o, con menos precisión, «coral cerebro». A diferencia de los verdaderos cerebro (familias Merulinidae o Mussidae con géneros como Platygyra o Favites), su colonia no forma una cúpula con valles continuos y sinuosos, sino un conjunto hemisférico o aplanado de valles cortos y gruesos, separados por crestas altas y dentadas, que en el esqueleto desnudo se reconocen como cálices de 20-40 mm de diámetro (excepcionalmente 50 mm). Esa separación incompleta entre cálices —condición flabelo-meandroide— es el carácter diagnóstico que el acuarista puede comprobar a simple vista: cada «boca» tiene su propio valle, pero los valles contiguos comparten pared en algunos tramos.

Sobre el esqueleto, el tejido vivo forma un manto carnoso que se hincha con agua y desborda los bordes del coralito, con un disco oral grande y una serie de tentáculos cónicos, retráctiles, dispuestos en dos o tres anillos y de 15-25 mm de longitud. El color es muy variable —verde, rojo, granate, marrón, gris azulado, a veces con el disco oral contrastado en verde neón o naranja—, pero el patrón estable es la presencia de estrías radiales claras que recorren el manto desde la boca hacia la periferia, coincidiendo con los septos subyacentes.

Su reputación en acuariofilia está justificada: es uno de los LPS más tolerantes a la manipulación, al transporte y a las variaciones de parámetros, y sobrevive en condiciones que matarían a un Acropora o a un Catalaphyllia. Ahora bien, «fácil» no significa «indestructible»: su talón de Aquiles es la iluminación intensa y sostenida, que provoca retracción crónica del manto y blanqueamiento parcial, y la competencia por espacio, porque L. hemprichii es un coral marcadamente agresivo. Extiende tentáculos barredores nocturnos de hasta 10-15 cm y, en contacto directo, digiere al vecino mediante filamentos mesentéricos extrusionados. En un acuario hay que reservarle un radio libre de al menos 15 cm respecto a otros corales con tejido blando.

El crecimiento es lento pero medible: en cautividad, con alimentación semanal, una colonia joven aumenta de 1 a 2 cm de diámetro al año; en el arrecife, las colonias grandes superan el metro. Esto implica que un ejemplar de 12-15 cm comprado como «pequeño» tardará años en duplicar tamaño, y que la fragmentación por corte de valles es posible pero de baja tasa de éxito si no se respeta la proporción de tejido por coralito.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

La historia taxonómica del género es un buen ejemplo de los problemas de la sistemática escleractiniana basada solo en el esqueleto. Durante décadas Lobophyllia se incluyó en Mussidae junto a Acanthastrea, Micromussa y Symphyllia, sobre la base de septos con dientes grandes y lóbulos paliformes. Los análisis filogenéticos de Budd y colaboradores (2012) demostraron que Mussidae era polifilético y crearon Lobophylliidae, que hoy agrupa además a Acanthastrea, Cynarina, Echinophyllia, Homophyllia, Micromussa, Moseleya y Symphyllia. Algunos autores recientes han propuesto integrar Symphyllia dentro de Lobophyllia, lo que afecta directamente a la identificación de ejemplares comerciales: las colonias con valles largos y meandrinos que se venden como Symphyllia agaricia podrían ser conespecíficas.

En el acuario, la confusión más habitual se da con Lobophyllia corymbosa (valles más alargados y colonias frecuentemente esféricas) y con L. costata (cálices más separados, tendencia faceloide). L. hemprichii se distingue por cálices grandes que comparten pared en parte de su perímetro, septos en tres ciclos (24-36 en total) con dientes gruesos y romos, y una columela trabecular poco profunda. La determinación definitiva requiere observar el esqueleto limpio, no solo el tejido.

Como todos los escleractinios, alberga dinoflagelados del género Symbiodinium (clados C y D según la población y la profundidad), lo que explica su capacidad fotosintética pero también su sensibilidad a la luz excesiva. La especie está incluida en el Apéndice II de CITES, por lo que todo ejemplar comercial debe ir acompañado de certificado de origen.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Especie de amplísima distribución indopacífica: desde el mar Rojo y la costa de África oriental (Kenia, Tanzania, Mozambique) hasta Samoa y las islas de la Polinesia Francesa, incluyendo el golfo de Adén, Maldivas, Sri Lanka, el archipiélago indomalayo (Indonesia y Filipinas, principal fuente de ejemplares comerciales), la Gran Barrera de Coral, Nueva Caledonia, Palau y el sur de Japón (islas Ryukyu, límite norte en torno a los 30° N). En el Atlántico no existe; cualquier «lobophyllia» del Caribe es una identificación errónea.

Su rango batimétrico va de la superficie a unos 30 m, con máxima abundancia entre 5 y 20 m. No es un coral de cresta arrecifal batida: prefiere el arrecife posterior, las laderas protegidas, las lagunas someras y los arrecifes costeros con cierta turbidez y sedimentación. Se le encuentra frecuentemente en fondos mixtos de arena gruesa y roca, y también en zonas portuarias y de escollera, lo que da idea de su tolerancia a condiciones subóptimas. En esos ambientes el agua suele estar a 25-29 °C, salinidad 34-35, pH 8,1-8,4 y una atenuación lumínica notable: a 15 m de profundidad en aguas costeras turbias la PAR disponible puede ser inferior a 200 µmol·m⁻²·s⁻¹, y ahí la especie crece y se reproduce con normalidad.

Esta ecología explica dos requerimientos de acuario. Primero, la luz: un rango de 100-200 µmol·m⁻²·s⁻¹ (fotoperiodo de 8-10 h) es adecuado; por encima de 300 µmol·m⁻²·s⁻¹ el manto se retrae, aparecen zonas pálidas y el coral entra en balance negativo. Bajo iluminación de LED de arrecife, la ubicación típica es la mitad inferior de la roca o el sustrato. Segundo, el flujo: prefiere corriente moderada e indirecta, que renueve el agua sobre el manto sin golpearlo; un flujo turbulento de 10-15 cm/s con alternancia es ideal, y un chorro directo de bomba provoca retracción permanente y lesiones por abrasión del tejido contra el esqueleto.

En el arrecife es un consumidor heterótrofo relevante: los análisis de contenido estomacal citan crustáceos pequeños, gusanos y materia orgánica particulada, capturados de noche con los tentáculos extendidos. La fotosíntesis de sus zooxantelas cubre buena parte de la demanda energética, pero el aporte de alimento particulado es lo que sostiene la tasa de calcificación y el color. En cautividad, la alimentación semanal con artemia, mysis o trozos de 3-5 mm de pescado y crustáceo, administrada al atardecer sobre los tentáculos extendidos, marca la diferencia entre una colonia que se mantiene y una que prospera.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Arquitectura colonial. Lobophyllia hemprichii forma colonias flabelo-meandroides: los cálices se disponen en series cortas de uno a tres centros —ocasionalmente más— separados por valles poco profundos, no en meandros largos y continuos como L. corymbosa en su sentido estricto. Las colonias juveniles son hemisféricas y compactas; con los años se aplanan y expanden lateralmente hasta 25–40 cm de diámetro, con el borde de crecimiento adherido o ligeramente elevado. Cada cáliz mide 25–50 mm de diámetro y las paredes septotecales, densas y de color más claro que el disco oral, alcanzan 5–8 mm de grosor. Los septos se ordenan en tres o cuatro ciclos con dientes grandes, romos y lobulados (de ahí el nombre del género), y los lóbulos paliformes del ciclo interno son marcados y ayudan a distinguir la especie en esqueletos secos.

Pólipos. El pólipo es carnoso y masivo: el tejido cubre completamente el esqueleto y desborda los cálices, de modo que en la colonia viva las paredes apenas se intuyen. El disco oral es amplio y puede inflarse con agua hasta duplicar su volumen aparente. Los tentáculos son cortos, cónicos, de 5–8 mm, dispuestos en dos o tres anillos concéntricos, y permanecen retraídos durante el fotoperiodo; se despliegan 30–60 minutos después del apagado. La coloración es muy variable y a menudo bicolor: disco oral verde, turquesa o gris metálico con paredes y tejido intercalar rojo, granate, naranja o marrón; existen morfos casi monocolor y patrones con líneas radiales claras sobre el disco. La fluorescencia verde del disco se debe a proteínas similares a la GFP y no indica por sí misma el estado de las zooxantelas.

Esqueleto. Aragonito con extensión lineal lenta —del orden de 3–10 mm al año en la pared externa— pero densidad alta, lo que da colonias pesadas y resistentes a la fragmentación mecánica. La cara inferior desarrolla epiteca con costas y, en colonias de sustrato blando, puede quedar parcialmente cubierta de sedimento cementado. Esta arquitectura masiva explica su tolerancia a corrientes moderadas y su mala respuesta a la abrasión continuada del tejido.

Zooxantelas y trofia. Aloja simbiontes del género Cladocopium (antes Symbiodinium clado C), con densidad estable y buena retención de pigmento incluso con nutrientes moderados. A diferencia de muchos LPS de pólipo pequeño, L. hemprichii es marcadamente heterótrofa: captura presas de hasta 15 mm (misis, krill, camarón entero, trozos de pescado) y la alimentación 2–3 veces por semana acelera el crecimiento y mejora la saturación de color. Su agresividad es alta: de noche extiende filamentos digestivos y tentáculos barredores de hasta 10–15 cm que necrosan tejido de vecinos, incluidos Euphyllia y Favites.

Nota taxonómica. Los análisis moleculares de Arrigoni y colaboradores (2016) sitúan L. hemprichii dentro de la variabilidad de L. corymbosa; en acuariofilia se mantiene el nombre para los morfos de pólipo grande, series cortas y colores contrastados, que es el criterio práctico que se usa en esta ficha.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Especie robusta pero poco tolerante a la inestabilidad: soporta rangos amplios de nutrientes y luz, y falla con oscilaciones rápidas de alcalinidad, salinidad o temperatura. Los valores de la tabla son objetivos de mantenimiento estable, no extremos de tolerancia.

Con esa combinación, la colonia mantiene el pólipo inflado durante el día y abre tentáculos de forma predecible por la noche; la expansión diurna excesiva con tentáculos visibles suele indicar flujo demasiado bajo o luz insuficiente. Mantén el yodo en 0,03–0,06 mg/L si haces cambios de agua regulares y no sobrealimentes: el exceso de materia orgánica disuelta es el principal desencadenante de infecciones bacterianas en heridas.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocación. En el tercio inferior del acuario, sobre roca firme y plana o sobre una loseta cerámica, nunca enterrada en arena: el sedimento que se acumula entre los valles provoca necrosis del tejido intercalar en pocas semanas. Reserva un radio libre de 15 cm —más en colonias adultas— por los tentáculos barredores nocturnos, y evita la vecindad de Hydnophora, Galaxea y Acanthastrea. La orientación ideal deja el disco oral ligeramente inclinado, no vertical, para que el flujo arrastre los detritos. Si la fijas con epoxi, aplica este solo en la base seca del esqueleto y no sobre tejido vivo.

Crecimiento. La extensión radial es lenta (3–10 mm/año) pero la colonia gana volumen y peso de forma constante; el aumento de biomasa se aprecia mejor por el número de bocas nuevas, que aparecen por gemación intratentacular a lo largo de las series meandroides. Con alimentación 2–3 veces por semana y KH estable, la tasa se duplica respecto a colonias no alimentadas. No esperes cubrir una roca en un año: es una especie de proyecto a largo plazo.

Fragging. Se realiza con sierra de banda de diamante o sierra manual de dientes finos, cortando perpendicularmente a las series y atravesando esqueleto y coenosarco de una sola pasada para minimizar desgarros. Cada fragmento debe conservar al menos dos o tres bocas y un borde de tejido sano; los cortes de una sola boca superviven, pero tardan meses en cerrar. Protocolo: corte fuera del agua el menor tiempo posible, enjuague en agua del acuario, baño de yodo (10–20 mg/L de Lugol durante 10–12 minutos) y cuarentena en un recipiente con flujo suave e iluminación media-baja. La primera semana no alimentes; a partir del día 7–10 ofrece misis picados. Vigila los diez primeros días la aparición de masas blanquecinas gelatinosas (enfermedad del tejido marrón, asociada a ciliados): si aparece, aspira y repite el baño de yodo, y descarta el fragmento si avanza 5 mm en 24 h. La cicat

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Lobophyllia hemprichii es un LPS de agresividad alta, no moderada. Desarrolla tentáculos barredores de 10-15 cm que se despliegan al apagarse las luces —y también de día si detecta alimento en la columna de agua—, capaces de digerir tejido de Euphyllia, Favia, Trachyphyllia o Acanthastrea en una sola noche. Deja 25-30 cm de separación con otros LPS y 40 cm con SPS; la colonia crece en forma de domo y su radio real de agresión supera lo que sugiere su tamaño aparente. Añade agresión química por alelopatía: en acuarios de menos de 200 L con varios LPS, el uso de carbón activo (100-200 g/100 L, cambiado mensualmente) reduce la carga de compuestos orgánicos disueltos.

Peces. Compatibles: cirujanos (Zebrasoma, Ctenochaetus), lábridos pequeños, gobios, blénidos, anthias, cardenales y grammas. De riesgo real: Chaetodon (en especial C. lunula, C. collare y C. auriga), Pomacanthus y Holacanthus, que picotean el disco oral y provocan retracción crónica; Balistidae, Arothron, Diodon y Monacanthus, que fracturan el esqueleto; y Acreichthys tomentosus, vendido para controlar Aiptasia, que se pasa a los LPS cuando agota las anémonas. Los payasos no son hospedadores naturales de esta especie: Amphiprion clarkii o Premnas biaculeatus pueden frotarse contra los pólipos y generar necrosis focal en el margen; A. ocellaris suele ignorarlo.

Invertebrados. Lysmata y Stenopus extraen alimento del disco oral y provocan regurgitación: alimenta con campana de plástico o jeringa con tubo. Cangrejos ermitaños grandes (Dardanus) y Mithraculus sculptus arrancan tejido al desplazarse. Drupella y Coralliophila son depredadores obligados de coral: revisa la base y la cara oculta de la colonia cada 2-3 semanas. Hermodice carunculata consume tejido vivo. Estrellas Protoreaster nodosus y P. linki: descartadas. Los erizos Diadema controlan algas pero erosionan la base con las púas. Mantén anémonas y corallimorfos (Rhodactis, Discosoma) fuera del radio de contacto: pueden cubrir la colonia y matarla por competencia directa.

8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES

Blanqueamiento. Pérdida de zooxanthellae por encima de 30-31 °C sostenidos 5-7 días, o por PAR superior a 400 µmol·m⁻²·s⁻¹ en colonias procedentes de aguas turbias. Esta especie rinde mejor entre 150 y 250 µmol·m⁻²·s⁻¹ con fotoperiodo de 8-10 h. Distingue blanqueamiento (tejido translúcido, septos visibles, pólipo aún expandido y con respuesta a la alimentación) de necrosis (tejido desprendiéndose, esqueleto blanco y desnudo). La recuperación de color lleva 6-10 semanas con alimentación 2 veces por semana.

Jelly marrón. Masa gelatinosa pardo-amarillenta sobre tejido necrótico, producida por ciliados (Porpostoma notatum, Helicostoma) con bacterias asociadas. Avanza 1-2 cm/h y consume una colonia de 15 cm en 24-48 h. Actuación: aspirar con jeringa, cortar 1 cm por delante del borde afectado con cortapernos (el corte debe entrar en tejido sano), baño de yodo (Lugol, 40 gotas/L, 10-15 min) y descartar el esqueleto necrótico. No devuelvas el agua del baño al sistema.

RTN y STN. La necrosis rápida aparece en horas tras choque térmico, hipersalinidad (por encima de 36) o salto de KH superior a 1 dKH/día. La necrosis lenta se debe a KH fuera de

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

• Verifica la especie antes de pagar. Lobophyllia hemprichii muestra pólipos discretos de 3-6 cm en el centro de la colonia (meandroide solo en el borde), con septos de dientes altos y puntiagudos y costas dentadas. Si los valles son largos y comparten pared, es L. corymbosa o una Symphyllia mal etiquetada; el precio y el cuidado no son iguales. Rechaza colonias con esqueleto blanco expuesto en la base: es recesión antigua que suele reactivarse.
• Nunca la saques del agua. El tejido carnoso retiene burbujas de aire que provocan necrosis focal en 48-72 h. Para moverla, traslada la roca o el fragmento dentro de un recipiente sumergido; si tienes que manipularla, hazlo con la colonia boca arriba y sin presionar el pólipo.
• El inflado es normal; el inflado permanente, no. Puede duplicar el diámetro del esqueleto tras comer o al apagar luces. Si permanece hinchada 24 h sin alimentarse y con la boca abierta, revisa flujo y parámetros: suele indicar irritación por sedimentos o inicio de infección.
• Dale 20 cm de radio libre. Emite tentáculos barredores de 10-15 cm entre 30 y 90 minutos después del apagón; su potencia es alta y necrosa Acropora, Montipora e incluso Euphyllia. A su vez pierde contra Galaxea, Physogyra y anémonas. Planifica la ubicación definitiva desde el primer día: es una colonia de décadas.
• Trocea la comida, no la sirvas entera. Piezas de 5-8 mm (mysis grande, krill, mejillón, gamba cruda) y máximo 1 cm; 2-4 piezas por pólipo, 2-3 veces por semana. Si regurgita una bola de moco con comida a los 30-60 minutos, la pieza era grande: reduce el tamaño, no la frecuencia.
• Alimenta de noche las primeras semanas. Los tentáculos captadores (1-2 mm) se despliegan con el apagón; con paciencia acepta comida de día en 3-4 semanas. El olor de la comida desencadena la respuesta en menos de 5 minutos.
• Fíjala sobre roca plana, no sobre arena profunda. La arena se acumula bajo el pólipo, abrasa el tejido y favorece infecciones bacterianas. Usa epoxi solo sobre el esqueleto lateral, nunca sobre el carnoso: el putty fresco quema el tejido.
• Luz de 80-150 PAR y flujo indirecto. Con más de 200 PAR se contrae y pierde saturación roja/naranja; con menos de 50 PAR sobrevive pero crece muy lento y palidece. El flujo ideal mueve el tejido suavemente sin plegarlo: nada de corriente laminar directa sobre la cara expuesta, que provoca recesión en el lado de impacto.
• Actúa en minutos ante el «jelly» marrón. Masa gelatinosa parda con olor pútrido = infección por ciliados. Corta con corta-huesos 5 mm dentro de tejido sano, baño de yodo (3-5 gotas de Lugol por litro, 10-15 min) y mejora el flujo. No soples con pavo sobre toda la colonia: dispersas los ciliados.
• Fragmente con sierra de banda. Corte recto atravesando los valles, mínimo 3-4 pólipos por fragmento, baño de yodo y 2-3 semanas en luz baja. Es uno de los LPS más tolerantes a la fragmentación: tasa de éxito superior al 80 % con parámetros estables.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

Rutina semanal fija: test de KH y Ca, sifonado del sedimento alrededor del esqueleto y observación del inflado al apagón. Rutina mensual: Mg, NO₃, PO₄ y revisión del 100 % del perímetro del pólipo en busca de tejido blanco o «pinzado».

12. ✅ CONCLUSIÓN

Lobophyllia hemprichii es un LPS de los llamados «fáciles» solo si se respetan tres condiciones: estabilidad de KH (7,5-8,5 dKH sin oscilaciones de más de 0,5 en 24 h), alimentación carnosa regular con trozos pequeños y un espacio físico generoso que evite combates con tentáculos barredores. Su tolerancia a nutrientes (NO₃ 2-10 ppm) la hace apta para acuarios con peces y corales blandos, pero es vulnerable a la infección por ciliados cuando hay heridas, sedimentos acumulados o flujo insuficiente: cualquier recesión blanca en la base debe tratarse el mismo día. No esperes crecimientos rápidos: 1-2 cm anuales de diámetro en colonias bien alimentadas es un resultado realista, y su longevidad en cautividad supera la década. Con 80-150 PAR, flujo indirecto y dos comidas semanales, una colonia de 6-8 cm se convierte en la pieza central de la zona baja del arrecife; con luz intensa, corriente directa y ayuno, se reduce a un esqueleto con pólipos retraídos en pocos meses. Compra ejemplares con pólipos discretos y dientes septales altos, manipúlala siempre sumergida y recorta cualquier foco de jelly sin dudar: son los tres gestos que separan el éxito del fracaso con esta especie.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Cómo distingo Lobophyllia hemprichii de L. corymbosa y L. pachysepta?

L. hemprichii forma colonias flabelo-meandroides o faceloides: las series de cálices son cortas (rara vez superan los 40–50 mm de longitud), a menudo monocéntricas, y los pólipos tienden a separarse en la parte superior, dejando ver el esqueleto entre ellos. Los dientes septales son altos y agudos, en dos órdenes marcados, y el tejido es menos voluminoso que en L. corymbosa, cuyas valvas son más largas, con dientes romos y un coenosarco muy carnoso que cubre casi todo el coralito. L. pachysepta presenta un esqueleto notablemente más grueso y color pardo-verdoso con disco oral púrpura o verde. La coloración de L. hemprichii va del gris y pardo al verde, con centros contrastados; existen morfos rojos y naranjas, generalmente de aguas más profundas.

¿Qué iluminación y corriente necesita exactamente?

Es un coral de ambientes protegidos: en el arrecife ocupa lagunas, bases de talud y zonas sombreadas. En acuario rinde mejor con PAR de 75–150 µmol·m⁻²·s⁻¹, en la mitad inferior de la roca o sobre arena, y tolera bien repisas a la sombra. Los morfos rojos y naranjas se fotoinhiben por encima de 200 µmol·m⁻²·s⁻¹ y muestran retracción diurna persistente y blanqueamiento marginal. La corriente debe ser suave y aleatoria, del orden de 10–20 cm/s (movimiento de pólipos, no latigazo): bombas de 500–1000 l/h con salida difusa. Una corriente fuerte y directa impide la expansión nocturna, erosiona el tejido del margen y favorece infecciones bacterianas.

¿Es necesario alimentarlo? ¿Cómo y cuánto?

Aunque mantiene zooxantelas, L. hemprichii es un heterótrofo voraz y su crecimiento se correlaciona directamente con la captura de presas. Ofrece trozos de krill, mysis, gamba o pescado de 4–8 mm, uno por boca, dos o tres veces por semana, al atardecer o de noche, cuando extiende los tentáculos. Retira lo no ingerido a los 20–30 minutos: la carne en descomposición sobre el coenosarco es la principal causa de necrosis focal. No lo alimentes con papillas ni polvo de coral; no los captura y ensucia el agua. Con alimentación regular, la expansión radial puede alcanzar 1–2 cm anuales; sin ella, el coral se mantiene pero apenas deposita esqueleto.

¿Dónde lo coloco y con qué vecinos es compatible?

Colócalo sobre arena o sobre una piedra plana en el tercio inferior, dejando un radio libre de al menos 15 cm. Desarrolla tentáculos barredores nocturnos que pueden extenderse 10–15 cm y su carga nematocística es de las más potentes entre los LPS: necrosa de forma rápida Acropora, Seriatopora, Euphyllia y Trachyphyllia. Es compatible con Sarcophyton a distancia, con zoántidos y con otros musídos separados por barreras de roca. Fíjalo con epoxy sobre una base pequeña, no directamente al sustrato vivo: facilita la recolocación si aparece agresión o falta de luz. Evita situarlo bajo rebosaderos con corriente descendente fuerte.

¿Cómo lo fragmento sin perder los pólipos?

La reproducción por fragmentación es viable pero exige corte de esqueleto: usa sierra de cinta con hoja de diamante o dremel con disco, nunca cizalla. Traza el corte a lo largo de una valva, no transversal al pólipo, y asegúrate de que cada fragmento conserva al menos una boca completa y tejido de coenosarco en ambos lados del corte. Corta en seco el mínimo tiempo posible y devuelve los fragmentos al agua en menos de un minuto; enjuaga el polvo de esqueleto. La cicatrización tarda 2–4 semanas, con riesgo de infección por ciliados si la temperatura supera 27 °C. Sumerge en yodo a dosis de baño (2–5 ml/l, 5–10 min) solo si aparece tejido blanquecino.

¿Qué parámetros y problemas de salud debo vigilar?

Mantén 24–27 °C (estable, ±0,5 °C), densidad 1.025–1.026 (35 ppt), Ca 420–450 mg/l, KH 7,5–9 dKH, Mg 1300–1350 mg/l, NO₃ 5–10 mg/l y PO₄ 0,03–0,10 mg/l; valores de nutrientes en cero producen palidez y adelgazamiento del tejido. Vigila la enfermedad del jelly marrón (ciliados Porpostoma/Helicostoma), que avanza en 24–48 h: aspira el tejido afectado, aísla y baña en yodo. Los platelmintos Waminoa sobre el coenosarco se eliminan con baño de prazicuantel a 5 mg/l durante 6 horas. La retracción diurna prolongada suele indicar exceso de luz o corriente, no enfermedad.

📚 REFERENCIAS

• Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, Vol. 2. Australian Institute of Marine Science, Townsville. Ficha de Lobophyllia hemprichii.
• WoRMS Editorial Board (2024). Lobophyllia hemprichii (Ehrenberg, 1834). World Register of Marine Species. https://www.marinespecies.org
• Budd, A.F., Fukami, H., Smith, N.D. & Knowlton, N. (2012). Taxonomic classification of the reef coral family Mussidae (Cnidaria: Anthozoa: Scleractinia). Zoological Journal of the Linnean Society 166: 465–529.
• Borneman, E.H. (2001). Aquarium Corals: Selection, Husbandry and Natural History. TFH Publications, Neptune City.
• Sprung, J. & Delbeek, J.C. (1997). The Reef Aquarium, Vol. 2. Ricordea Publishing, Coconut Grove.
• Houlbrèque, F. & Ferrier-Pagès, C. (2009). Heterotrophy in tropical scleractinian corals. Biological Reviews 84: 1–17.

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