Favia favus

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Favia favus (Forskål, 1775) es el nombre con el que la acuariofilia marina lleva cuatro décadas designando a este coral pétreo colonial; sin embargo, la revisión molecular de Faviidae (Budd & Stolarski, 2011; Huang et al., 2014) trasladó la especie al género Dipsastraea, por lo que su denominación válida en WoRMS es Dipsastraea favus. Es un coral hermatípico zooxantelado, constructor de arrecife, de morfología masiva: colonias hemisféricas a ligeramente aplanadas, de 15–40 cm de diámetro en el arrecife, con crecimiento lineal muy lento (del orden de 2–5 mm/año en extensión radial), lo que en acuario se traduce en una pieza que apenas cambia de silueta en dos o tres años.

El rasgo diagnóstico es la coralita plocoide: cada pólipo posee pared propia, separada de la vecina por un surco visible, con diámetro de 8–15 mm y budding extracalicular. Los septos se disponen en tres ciclos (24–36 septos), con dientes finos y 6–12 lóbulos paliformes bien marcados que descienden hacia una columela trabecular, esponjosa y pequeña, no laminar. Esa columela la separa de Favites (coralitas cerioides, paredes septales compartidas) y el tamaño y la regularidad de la coralita la distinguen de Dipsastraea pallida, de coralitas menores (5–9 mm) y más irregulares, y de D. lizardensis, con septos más gruesos y menos numerosos. La coloración es críptica: marrón, gris, verdosa o crema, con el disco oral frecuentemente contrastado en verde o azul pálido; los morfos oscuros con centros fluorescentes verdes son los más comercializados.

Su reputación de coral «para empezar» está justificada por la amplitud de su nicho: tolera bien la turbidez, oscilaciones térmicas y niveles de nutrientes que hacen palidecer a otros LPS, pero no es un coral indestructible. Dos puntos débiles concretos: acumula sedimento en los surcos intercoralitycos y sufre recesión tisular si no se sopla, y su crecimiento lento hace que cualquier necrosis de 1 cm tarde meses en cerrarse.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

La especie pertenece a la familia Merulinidae, resultado de la disolución de la antigua Faviidae, hoy reconocida como polifilética. El género Dipsastraea agrupa especies antes adscritas a Favia con coralitas plocoides, columela trabecular y lóbulos paliformes; no obstante, la identificación morfológica sigue siendo problemática y parte de la literatura acuariófila cita como F. favus ejemplares que son en realidad D. matthaii o D. rotumana. La especie tipo del género es Dipsastraea favus, designada por Blainville en 1830 como Dipsastraea y descrita originalmente por Forskål en el mar Rojo, de donde procede el material tipo.

El esqueleto es aporoso, sin perforaciones; la pared de la coralita es delgada (0,5–1 mm) y el costado presenta costas finas y equidistantes. La plasticidad morfológica según profundidad y régimen de luz (coralitas más elevadas y septos más exsertos en aguas someras agitadas) complica la diagnosis y explica el alto número de sinónimos: Madrepora favus, Favia denticulata, Favia parastellata y Favia ehrenbergi entre otros.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Su distribución abarca el Indo-Pacífico completo: desde el mar Rojo y el Golfo de Adén, por el Índico tropical (Maldivas, Chagos, Indonesia), hasta Samoa y las islas Ryukyu por el norte y la Gran Barrera por el sur; está citada también en el Pacífico central (Islas Marshall, Fiji). Ocupa preferentemente planicies arrecifales, lagunas traseras y el tramo superior del talud, entre 0 y unos 40 m, siendo más abundante en los 3–15 m. Es una especie de aguas someras y tolerante: coloniza fondos con sedimento fino, soporta turbidez moderada, episodios de salinidad reducida en lagunas someras y temperaturas de 18 a 32 °C en charcas intermareales.

En el arrecife suele aparecer como colonia aislada sobre sustrato consolidado, compartiendo espacio con Porites masivos y Favites; no forma bandas monoespecíficas. Exhibe agresividad por contacto: desarrolla tentáculos barredores de 3–6 cm que extiende de noche sobre la roca vecina, capaces de dañar tejido de Seriatopora, Acropora o Montipora en pocas horas, por lo que necesita una separación efectiva de 10–15 cm en el acuario.

Traslado a cautividad: colocarlo sobre roca viva, en la base o media altura, con la coralita orientada hacia arriba para evitar depósito de sedimento. Rango de luz recomendado de 75 a 150 PAR (se adapta a más con aclimatación lenta de 4–6 semanas), evitando exposición directa a lámparas de alta potencia, que provoca decoloración por sobreexcitación de sus Cladocopium. Flujo indirecto y alterno, tipo media laguna, de 10–20 cm/s, que mantenga la superficie limpia sin golpear el tejido. Parámetros adecuados: temperatura 25–26 °C, salinidad 35 ppt, Ca 400–450 mg/L, Mg 1250–1350 mg/L, kH 7,5–9 dKH, NO₃ 2–10 mg/L, PO₄ 0,03–0,08 mg/L. La alimentación es opcional: los tentáculos se despliegan 1–3 horas tras el apagado y acepta mysis fresco o congelado, calamar picado y pellets de 1–2 mm, una o dos veces por semana; no requiere captura activa si la iluminación y los nutrientes están en rango, pero la alimentación periódica acelera el crecimiento y mejora la densidad de pigmento.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Nota taxonómica imprescindible: la especie descrita por Forskål en 1775 como Favia favus fue transferida al género Dipsastraea por Budd et al. (2012), por lo que en la literatura reciente aparece como Dipsastraea favus. En el comercio se sigue vendiendo como «Favia», y conviene saber que gran parte de los «Favia» del hobby son en realidad Favites, Goniastrea o Dipsastraea de otras especies. La clave diagnóstica es doble: Favia posee muros septales propios y completos (theca íntegra) entre cálices contiguos y lóbulos paliformes desarrollados sobre la columela; Favites comparte los muros (septoteca común) y carece de ellos.

Colonia y coralitos: colonia masiva, hemisférica en ejemplares jóvenes e irregular con nódulos y columnas bajas en adultos; en el arrecife alcanza 1 m de diámetro, en acuario 5-15 cm tras varios años. Coralitos monocéntricos, plocoides, de 10-15 mm de diámetro —grandes para el género—, que se comprimen y poligonizan cuando el espacio es limitado, con fosa central profunda. Septos en tres ciclos (24-36), de dientes finos y regulares, con lóbulos paliformes prominentes en los ciclos internos que forman una «corona» pálida alrededor de la boca. Columela trabecular, no muy profunda. El tejido carnoso es translúcido y se extiende unos milímetros sobre el esqueleto del margen.

Coloración y pólipos: muros marrón oscuro, verde oliva o mostaza, con disco oral verde pálido o crema que contrasta netamente; ese patrón bicolor es el rasgo más reconocible de la especie. De noche extiende tentáculos cortos y gruesos (2-4 mm) y filamentos digestivos; la respuesta a alimento es rápida y voraz. Es uno de los LPS más agresivos: desarrolla sweeper tentacles de hasta 5-8 cm y digiere tejido de vecinos, pudiendo matar una Acropora adyacente en pocas semanas.

Zooxantelas: alberga Symbiodinium del clado C (C1/C3 típicamente). Su autotrofia es alta: sobrevive meses sin alimentación directa, pero el aporte heterótrofo de mysis o krill aumenta la extensión del tejido y la saturación del color. Ojo a un error de diagnóstico frecuente: el exceso de luz o la inestabilidad del KH aclaran los discos orales mientras los muros siguen marrones, lo que no es un blanqueamiento general.

Esqueleto: aragonito denso y poco poroso. La extensión lineal es lenta (3-8 mm/año en el arrecife, 5-10 mm/año en acuario estable), y esa densidad implica que un KH bajo corroe el esqueleto expuesto más rápido que en corales porosos. El crecimiento se produce sobre todo por engrosamiento y gemación intracalicinal en el margen.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Luz: es un coral de aguas medias, netamente de sombra en el arrecife. Con LED, sitúalo en la mitad inferior del tanque o bajo salientes; a partir de 200 µmol/m²/s aparecen discos orales casi blancos y tejido retraído de forma crónica. Aclimata aumentando un 10-15 % de intensidad cada dos semanas si vienes de un ejemplar mantenido con fluorescencia o T5.

Flujo: necesita renovación suficiente para arrastrar el moco y evitar sedimentos en la fosa, pero no tolera impacto directo: la corriente laminar de una bomba cercana provoca recesión del cenosarco en el lado expuesto en una o dos semanas. Lo ideal es un flujo alterno de 10-20 cm/s que mueva suavemente los tentáculos nocturnos sin doblar el tejido diurno.

Estabilidad: más que cualquier valor puntual, esta especie castiga las oscilaciones. Un descenso de KH de 2 dKH en 24 h o un cambio de salinidad por evaporación mal compensada produce retracción de pólipos y, en casos graves, polyp bailout. Mantén el KH con dosificador y la salinidad con relleno automático de agua de ósmosis.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocación: sobre roca firme, en el tercio inferior, con la base bien asentada; nunca directamente sobre arena fina, porque el sedimento se acumula en la fosa, irrita el pólipo y la abrasión desgasta el margen. Reserva 10-15 cm de radio libre: no es solo para proteger a los vecinos, sino porque sus sweeper tentacles alcanzan ese radio de noche y puedes perder una colonia de SPS joven en una semana. Las paredes verticales y salientes son buenas ubicaciones; en ellas la colonia crece más incrustante que hemisférica.

Crecimiento: la expansión radial es de 3-5 mm/año por el margen, con aumento progresivo de la masa central; el crecimiento es alométrico, de modo que una colonia de 10 cm puede tener más de una década. La alimentación con mysis 2-3 veces por semana y un flujo que transporte el alimento hasta los tentáculos aceleran notablemente la deposición de esqueleto respecto a colonias solo autótrofas. En sistemas con mucho alimento congelado vigila el PO₄: es más rentable alimentar con menos cantidad y buen aclarado que forzar el crecimiento.

Fragging: el esqueleto masivo exige sierra de banda con disco de diamante; las cizallas de hueso solo sirven para fracturar fragmentos pequeños y suelen astillar coralitos. Corta en el valle entre coralitos, nunca por el

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

Antes de nada, una precisión taxonómica que cambia poco el manejo pero mucho la comunicación con otros aficionados: lo que llevamos años llamando Favia favus se reclasificó como Dipsastraea favus (Huang et al., 2014). Su rasgo diagnóstico frente a Favites es que las paredes de los septos son propias de cada coralito (septoteca independiente), con centros monocéntricos separados por surcos profundos; en Favites las paredes son compartidas. Es una colonia masiva o submasiva, de crecimiento lentísimo (3-8 mm de diámetro al año en cautividad), y esa lentitud es la que marca toda la estrategia de mantenimiento: cualquier pérdida de tejido tarda meses en recuperarse.

• Iluminación medida, no estimada. Trabaja en 80-150 PAR en la colonia, con pico máximo tolerado de 200 PAR. Por encima de 250 PAR los centros se aclaran y la expansión diurna se reduce a la mitad en 10-14 días. Aclimata con malla de sombreo (2-3 capas) retirando una capa cada 10 días durante 6 semanas. Fotoperíodo de 10-12 h.
• Flujo indirecto y limpieza de valles. Necesita 5-10 cm/s sobre el tejido, pero nunca chorro directo: la recesión por impacto constante aparece siempre en el lado de la corriente, con banda de esqueleto desnudo de 5-8 mm. Con 15-20 renovaciones/hora en el tanque basta si orientas la salida contra el cristal. Una vez por semana, jeringa de 20 ml o pera de goma para expulsar detrito acumulado en los surcos: si se compacta, se necrosa el coralito.
• Alimentación nocturna y tamaño de presa. Despliega tentáculos de captura entre 30 y 60 minutos después del apagado. Ofrece mysis, krill picado de 2-4 mm o pellets de 2 mm, 2-3 veces por semana. Rechaza y expulsa cualquier pieza mayor de 5 mm, y esa expulsión arrastra mucus que ensucia el tanque. No alimentes con el coral cerrado: el alimento se deposita en los valles y fermenta.
• Tentáculos barredores. Emite sweeper tentacles de 10-15 cm entre 2 y 4 horas después del apagado, más largos cuanto mayor es la colonia. Las quemaduras en vecinos son visibles en 24-48 h. Deja 15 cm libres frente a Euphyllia, Acropora, Catalaphyllia y cualquier otro LPS de tejido blando; el daño casi siempre se detecta tarde porque ocurre de noche.
• KH estable por encima de todo. Mantén 7,5-8,5 dKH con oscilación diaria inferior a 0,5 dKH; Ca 420-450 ppm, Mg 1300-1350 ppm, salinidad 35 g/L (1,026), temperatura 24-26 °C. Es un coral de esqueleto denso y consume carbonatos de forma sostenida: colonias de más de 10 cm pueden tirar 0,3-0,5 dKH/día. Mide KH dos veces por semana; el Ca semanal.
• Nutrientes: no los bajes a cero. NO₃ 2-5 ppm y PO₄ 0,03-0,08 ppm. Con nutrientes indetectables el coral palidece y pierde tejido por los bordes; con NO₃ por encima de 15 ppm los valles se cubren de algas filamentosas que erosionan el cenénquima entre coralitos.
• Recesión y «brown jelly». Ante una banda de tejido marrón gelatinoso (ciliados tipo Helicostoma sobre tejido dañado), aspira con tubo de aireación sin tocar el coral, haz baño de yodo (1 gota de Lugol por 100 ml de agua del tanque, 10-15 min) y fragmenta 1 cm por delante del frente de necrosis. Sin fragmentar, una colonia de 8 cm puede perderse en 4 días.
• Fragmentación con sierra de banda. Hoja de diamante, corte pasando por al menos 3-4 coralitos completos y 3-4 cm de base. Seca el corte 20 segundos, fija con epoxi sin enterrar tejido vivo y coloca en zona de flujo suave. La cicatrización del corte lleva 3-6 semanas; la nueva coralito, meses.
• Fíjalo y no lo muevas. Se cementa al sustrato con epoxi y secreta esqueleto sobre la base. Cada reubicación implica reajuste de luz y flujo y una fase de 2-3 semanas con pólipos parcialmente retraídos. Decide la posición definitiva antes de pegarlo.
• Cuarentena real. 6-8 semanas en tanque aparte, con inspección de la base y de los surcos. Es habitual la entrada de plagas asociadas: gusanos tubícolas, esponjas perforantes y algas incrustantes que avanzan por el esqueleto muerto desde abajo. Raspado mecánico y revisión mensual de la base.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

12. ✅ CONCLUSIÓN

Dipsastraea favus (comercialmente Favia favus) es un LPS de dificultad media-baja en cuanto a parámetros y media-alta en cuanto a estabilidad: tolera bien variaciones de nutrientes y luz moderada, pero no perdona la oscilación de alcalinidad ni el flujo directo sostenido. Su valor en el acuario no está en el crecimiento —es de los corales más lentos que vas a mantener— sino en la resistencia: una colonia bien aclimatada y cementada a la roca puede durar décadas si no la mueves, si mantienes el KH entre 7,5 y 8,5 y si respetas los 15 cm de distancia frente a vecinos de tejido agresivo.

La clave práctica es tratarlo como un coral de «colocación única»: elige la posición definitiva con 80-150 PAR, flujo indirecto y acceso para la jeringa de limpieza, fíjalo con epoxi y limita tu intervención a alimentar de noche, mantener la química estable y vigilar la base y los surcos. El error más común no es la iluminación ni la alimentación: es la reubicación repetida y la fragmentación tardía de una recesión que empezó semanas antes en la cara oculta de la colonia.

Si buscas un coral para iniciarte en LPS con exigencia química real pero sin la fragilidad de los pólipos grandes, este es un candidato sólido; si buscas crecimiento visible y fragmentos abundantes en un año, elige otra especie. Reserva para él un lugar bajo o medio, estable, y trátalo como lo que es: una pieza de crecimiento anual casi geológico que recompensa la constancia, no la novedad.

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

Favia favus —reclasificada como Dipsastraea favus tras la revisión de Budd y colaboradores (2012)— calcifica despacio: colonia masiva, coralitos plocoides de 10-16 mm con coenosteum diferenciado y dos ciclos de septos con lóbulos paliformes conspicuos, y una acreción radial de apenas 2-5 mm al año. Eso implica que un desajuste tarda semanas en manifestarse y meses en revertirse. Mantén la alcalinidad total entre 7,5 y 8,5 dkH con oscilación diaria inferior a 0,3 dkH: por encima de 1 dkH de variación en 24 h aparece recesión en el borde basal, donde el esqueleto nuevo aún es fino. Calcio 420-450 mg/L y magnesio 1320-1380 mg/L; por debajo de 1250 mg/L de Mg la calcificación se ralentiza y la base expuesta se vuelve porosa. Nitrato 5-15 mg/L y fosfato 0,03-0,10 mg/L le favorecen: es especie de arrecife plano y laguna, tolera turbidez, pero con DOC elevado reduce la extensión de pólipo. Salinidad 35 g/L y temperatura 25-26 °C con deriva máxima de 1 °C diaria.

Es un competidor agresivo de contacto. Al apagar las luces extiende filamentos mesentéricos y digiere tejido vecino en un radio de 3-5 cm en pocas horas, con especial eficacia frente a Acropora, Montipora y Seriatopora; no necesita tentáculos barredores largos, porque la digestión extramesentérica es enzimática y deja una línea de esqueleto blanco visible en 12-24 h. El problema real, sin embargo, es la competencia disuelta: en sistemas con Sinularia, Sarcophyton o Briareum, los diterpenos liberados suprimen la extensión de pólipo y la calcificación del faviido incluso a distancia, sin necrosis apreciable. Se detecta por pólipos retraídos de día y crecimiento nulo. Carbón activado a 100-200 mL por 100 L con recambio cada 3-4 semanas, cambios de agua del 10 % semanal y separación física de 10-12 cm respecto a octocorales resuelven la mayoría de los casos; frente a zoantidos o Pachyclavularia el desenlace habitual es necrosis por sobrecrecimiento.

En iluminación admite un rango amplio —80 a 250 µmol·m⁻²·s⁻¹ de PAR— pero la fotoaclimatación es lenta: 4-6 semanas. Por encima de 350-400 µmol se blanquea en la cúpula de la colonia; por debajo de 50 µmol infla los pólipos hasta duplicar su volumen para captar luz, pierde contraste y vira a marrón. El indicador fiable no es el color sino la superficie de tejido: esqueleto blanco en el borde superior indica exceso; pólipo distendido y translúcido, defecto. En flujo prefiere movimiento indirecto y turbulento, 10-20 renovaciones por hora. Un chorro directo de bomba produce recesión en media luna en el lado de impacto en 2-3 semanas, y por debajo de 8 renovaciones el sedimento se acumula en el coenosteum y genera focos de necrosis entre coralitos, porque la lámina de moco que segrega no se desprende sin corriente.

Las patologías poco frecuentes de esta especie son casi siempre mecánicas o de bioerosión. La esponja perforante Cliona excava túneles en la base y provoca recesión progresiva con sedimento amarillento en los poros; se resuelve extrayendo la colonia y sellando las entradas con epoxi libre de disolventes. El cangrejo Cymo melanodactylus, de 5-8 mm y color pardo, vive en los interespacios y consume moco y tejido basal: es nocturno, se detecta con luz roja. Los platelmados Waminoa forman manchas pardas que asfixian coralitos y responden mejor a baño de levamisol (5 mg/L, 5 min) que a cualquier depredador. Menos habitual: bailout de pólipos tras shock térmico, con pólipos que se desprenden vivos y se reasientan, y disolución del esqueleto de anclaje con magnesio bajo 1200 mg/L. Casi nunca

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Mi «Favia favus» está realmente bien identificada?

Casi con total seguridad no. La especie fue descrita por Forskål en 1775 como Madrepora favus y hoy se acepta como Dipsastraea favus (familia Merulinidae) tras la revisión de Huang et al. (2014); el nombre «Favia» sigue usándose en el comercio como cajón de sastre. Los caracteres diagnósticos son: coralitos cerioides monocéntricos de 8–14 mm de diámetro con paredes compartidas, 24–36 septos en tres ciclos (raramente cuatro) con dentición fina y regular, lóbulos paliformes sobre los septos internos y columela trabecular. Clave frente a Favites: en Favites los septos son continuos a través de la pared entre coralitos contiguos; en Dipsastraea la pared los separa netamente. Frente a Goniastrea: esta muestra septos fusionados en tríos formando patrón en abanico. Colonia masiva, hemisférica o lobulada, de 20–40 cm.

¿Qué parámetros exactos necesita?

Salinidad 35 g/L (densidad 1.025–1.026), temperatura 24–26 °C con tolerancia puntual hasta 28 °C y riesgo de blanqueo por encima de 30 °C mantenidos. Alcalinidad 7,5–9,0 dKH con fluctuación diaria inferior a 0,5 dKH; calcio 420–450 mg/L; magnesio 1290–1350 mg/L. Nitrato 2–10 mg/L y fosfato 0,03–0,08 mg/L: es un coral de arrecife plano y aguas turbias, tolera nutrientes moderados mejor que un acropórido, pero por encima de NO₃ 20 mg/L se oscurece y reduce la calcificación. Mantén el potasio y el yodo sin suplementar salvo análisis; la estabilidad iónica importa más que cualquier aditivo.

¿Cuánta luz y corriente admite?

PAR de 100–250 µmol·m⁻²·s⁻¹, con 150–200 como franja óptima; soporta 300+ si se aclimata lentamente, pero pierde contraste de color y acidifica el tejido. Corriente moderada y oscilatoria, del orden de 10–20 cm/s: suficiente para que los tentáculos vibren sin plegarse. Corriente directa fuerte provoca recesión del tejido en el margen del pólipo; corriente nula acumula detritos en los cálices y abre la puerta a infecciones por ciliados. Colócalo en la roca viva, nunca en el sustrato arenoso, donde la base no puede incrustar.

¿Es agresivo? ¿Cuánto espacio debo dejarle?

Es un LPS marcadamente agresivo de noche. Despliega tentáculos barredores de 10–15 cm desde el margen septal, capaces de necrosar tejido de Acropora, Montipora y otros LPS. Deja 15–20 cm libres frente a corales sensibles y ten en cuenta que su colonia crece radialmente 1–3 mm/año en la naturaleza, por lo que el espacio debe calcularse a meses vista. Puede ser víctima de Galaxea, Euphyllia y Physogyra. Bajo estrés severo puede realizar «bail-out» de pólipos, liberando pólipos vivos que se reasientan.

¿Cómo y cuánto debo alimentarlo?

Es mixótrofo: la fotosíntesis de sus simbiontes (mayoritariamente Cladocopium) cubre el grueso energético, pero la heterotrofia acelera la calcificación y la densidad de tejido. Alimenta 2–3 veces por semana con nauplios de Artemia, mysis, copépodos o pellets de 1–2 mm; la respuesta tentacular aparece 5–15 minutos después del estímulo olfativo, preferentemente con luz apagada. Captura mediante red mucosa y nematocistos, no por filtración pasiva. Retira el alimento no consumido de los cálices: su descomposición es la causa más frecuente de necrosis focal.

¿Por qué aparecen zonas de esqueleto desnudo y cómo actúo?

Diferencia tres cuadros: banda blanca avanzando rápido (necrosis por estrés térmico o salto de alcalinidad), «gelatina marrón» por ciliados y Vibrio con tejido colapsado y olor fétido, y banda negra o marrón de Halofolliculina corallasia (enfermedad de erosión esquelética). En los dos primeros casos, sifona el tejido necrótico, haz baño de yodo (Lugol 10 min) y fragmenta por delante del frente de necrosis con sierra de banda: trozos de 3–5 pólipos, montaje en epoxi y 2 semanas a luz baja. No existen tratamientos antibióticos de eficacia demostrada en acuario; la actuación precoz es el único pronóstico favorable.

📚 REFERENCIAS

• Forskål, P. (1775). Descriptiones animalium avium, amphibiorum, piscium, insectorum, vermium. Möller, Copenhague.
• Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, Vol. 2. Australian Institute of Marine Science, Townsville.
• Budd, A.F., Fukami, H., Smith, N.D. & Knowlton, N. (2012). Taxonomic classification of the reef coral family Mussidae (Cnidaria: Anthozoa: Scleractinia). Zoological Journal of the Linnean Society, 166(3): 465–529.
• Huang, D., Benzoni, F., Fukami, H., Knowlton, N., Smith, N.D. & Budd, A.F. (2014). Taxonomic classification of the reef coral families Merulinidae, Montastraeidae and Diploastraeidae. Zoological Journal of the Linnean Society, 171(2): 277–355.
• Houlbrèque, F. & Ferrier-Pagès, C. (2009). Heterotrophy in tropical scleractinian corals. Biological Reviews, 84(1): 1–17.
• DeVantier, L., Hodgson, G., Huang, D., Johan, O., Licuanan, A., Obura, D., Sheppard, C., Syahrir, M. & Turak, E. (2008). Favia favus. The IUCN Red List of Threatened Species. IUCN, Gland.

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