Acropora tenuis

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Acropora tenuis (Dana, 1846) es un coral escleractinio colonial de la familia Acroporidae, considerado desde hace décadas una de las especies «de referencia» del género tanto en el arrecife como en acuariofilia marina avanzada. El epíteto específico tenuis —latín para «delgado, fino, esbelto»— alude a sus ramas de escaso diámetro y a sus coralitos tubulares poco prominentes. Forma colonias corimbosas a cespitosas de 15-40 cm de diámetro, con ramas horizontales que se recurvan hacia arriba en los extremos y ramificaciones subsecuentes cortas; en altas densidades y con flujo intenso el crecimiento se compacta, mientras que en flujo débil las ramas se alargan, se adelgazan y se vuelven frágiles y quebradizas.

El color es extremadamente variable y no siempre estable en cultivo: el morfo basal suele ser marfil, crema pálido o beige, con las puntas axiales y los extremos de las ramas en azul cobalto, lila, violeta o verde. Existen líneas de acuario muy seleccionadas —la más conocida comercialmente como «Walt Disney», así como los morfos «toxic green» o «blue tenuis»— que parecen corresponder a esta especie o a linajes muy próximos, y cuya coloración depende en gran medida del clado de simbiontes, del PAR recibido y del equilibrio de nutrients, no de diferencias taxonómicas. Esa plasticidad cromática, unida a su tasa de crecimiento (5-15 cm anuales en ramas individuales en condiciones óptimas), explica su popularidad.

Frente a otros Acropora de morfología similar, A. tenuis muestra una tolerancia relativamente amplia a la variación de parámetros: mantiene color y extensión de tejido con nitrato entre 2 y 15 mg/L (NO₃⁻), fosfato 0,03-0,10 mg/L, KH 7,5-8,5 dKH, Ca 420-450 mg/L, Mg 1290-1350 mg/L, densidad 1,025-1,026 (35 g/L) y temperatura de 25-26,5 °C. No obstante, sigue siendo un SPS exigente en estabilidad: las oscilaciones de salinidad superiores a 0,002 en 24 h, el KH por debajo de 7 o los cambios bruscos de iluminación provocan blanqueamiento basal y necrosis de tejido coenosarcal en 48-72 h. Es, por tanto, una especie «media»: más indulgente que A. millepora o A. loripes, pero no apta para sistemas jóvenes o con parámetros inestables.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

Dana describió la especie en 1846 como Madrepora tenuis, dentro de la nomenclatura linneana entonces vigente para los corales pétreos ramificados. La revisión genérica de Wallace (1999) consolidó su posición en Acropora y delimitó la diagnosis morfológica: coralitos radiales tubulares, aplanados contra la rama (apresados), dispuestos en hileras regulares y ordenadas, con aberturas redondeadas y paredes finas; coralito axial pequeño y cónico; coenosteum con espínulas finas. Esta disposición «en hileras» es el carácter diagnóstico más útil en vivo, junto con la escasa elevación de los radiales.

La identificación se complica por la existencia de un complejo de formas afines. Acropora selago presenta ramas más gruesas y cortas y coralitos radiales redondeados, sin la alineación tan marcada; A. aspera muestra un coenosteum áspero y rasposo con paredes de coralito más gruesas; A. vermiculata desarrolla ramitas digitiformes largas y afiladas; y A. millepora se distingue por sus coralitos radiales con labio inferior marcadamente extendido. La coloración no es diagnóstica y la superposición morfológica entre morfos es alta, lo que ha generado confusión en el comercio: buena parte de los «tenuis» importados pertenecen en realidad a otras especies del grupo.

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4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Forma colonial. Acropora tenuis (Dana, 1846) construye colonias corymbosas a cespitosas: de un disco basal firme emergen ramas cortas, gruesas (8-20 mm de diámetro) y curvadas hacia arriba, que se fusionan en la periferia y dibujan una copa abierta o una mesa compacta de contorno redondeado. En el arrecife alcanza 40-80 cm de diámetro; en acuario, un fragmento de 4 cm puede ocupar 25-30 cm de roca en tres años, con ramas algo más gruesas y cortas que las de las colonias silvestres, probablemente por menor hidrodinámica e iluminación más homogénea.

Coralitos y coenosteum. El carácter diagnóstico es la combinación de un coralito axial por rama (2-3,5 mm de diámetro, con borde circular definido) y coralitos radiales nariformes: tubulares, apretados contra la rama, de 1-1,5 mm, con el labio inferior prolongado y el superior curvado, de modo que la apertura queda oblicua y forma una especie de doble labio. Ese detalle separa A. tenuis de A. humilis (radiales más pequeños e inmersos) y de A. selago (ramas más delgadas y separadas). El coenosteum intercorallito es poroso, con espínulas finas y costas poco marcadas; al tacto resulta áspero, no liso.

Esqueleto. Aragonito depositado por el ectodermo calcificante del pólipo axial, que actúa como motor del crecimiento longitudinal, mientras los radiales engrosan y ramifican. La densidad del esqueleto (1,6-2,0 g/cm³) delata el historial de calcificación: esqueletos porosos y frágiles indican KH inestable o niveles de fosfato por encima de 0,15 mg/L.

Pólipos. De unos 1 mm, con 12 tentáculos cortos en dos ciclos. Permanecen retraídos durante el fotoperiodo y se expanden de noche o tras la adición de alimento particulado. La extensión nocturna sostenida es un indicador fiable de flujo suficiente y de nutrientes disponibles; colonias que no extienden pólipos en semanas suelen estar sufriendo depredación por Tegastes acroporanus o estrés térmico.

Zooxantelas y color. Hospeda Symbiodiniaceae del género Cladocopium (tipos C1/C3 en morfos someros, C15 en algunas líneas de cultivo), alojadas en la gastrodermis. El tejido va del crema y amarillo pálido al marrón verdoso, y los ápices suelen mostrar azul, lila, rosa o violeta por acumulación de cromoproteínas fluorescentes en las células del coralito en crecimiento. La densidad de simbiontes modula el tono: a más nutrientes, más marrón; a más luz y menos nitrato, colores más claros pero mayor riesgo de palidez.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

La combinación crítica para A. tenuis no es un valor aislado sino la relación entre alcalinidad, nitrato y fosfato: con KH estable y NO₃ en 2-3 mg/L la coloración se mantiene, mientras que subir el KH por encima de 9 dKH con nutrientes bajos provoca quemazón en los ápices en 48-72 h. Mantén el magnesio por encima de 1300 mg/L antes de ajustar calcio y KH, y verifica el KH a la misma hora cada día para separar el consumo real de la fluctuación diaria por fotosíntesis. Un cambio de agua del 10 % semanal con sal de alcalinidad conocida simplifica el control en acuarios pequeños (<200 L), donde la dosificación manual es la principal fuente de inestabilidad.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocación. Sitúa la colonia en el tercio superior o medio, sobre roca firme y con la base ligeramente inclinada (10-20°) para que las ramas crezcan hacia el flujo y la luz, no contra la roca. Deja 8-10 cm libres alrededor: A. tenuis compite con digestión extracoelentérica y sus ramas se fusionan o se necrosan al contacto con otros SPS. Fija el fragmento con cianoacrilato gel y un punto de masilla epoxi, sin cubrir tejido vivo: la base debe encrustar por sí misma antes de que la colonia gane peso. Evita el contacto del coral con la arena y con la roca viva blanda, donde las bacterias del sedimento inician necrosis de base.

Crecimiento. En condiciones óptimas, una rama alarga 8-12 mm al mes y la base encrusta 1-2 cm en el mismo periodo; la ramificación se acelera cuando el ápice recibe entre 300 y 400 PAR con flujo intermitente. Tras el montaje, cuenta con 4-6 semanas de encrustación silenciosa antes de ver división apical. Cualquier parada de crecimiento superior a tres semanas obliga a revisar KH, flujo y presencia de ácaros o platelmintos.

Fragging. Usa alicate de huesos o cizalla limpia; corta fragmentos de 3-5 cm con al menos un ápice axial, y haz el corte en la zona media de la rama, nunca sobre el ápice. Pega por la superficie cortada, no por el lateral, para forzar un único frente de encrustación. Deja 5 mm de tejido sano alrededor del pegamento: el exceso de cianoacrilato sofoca el coenosteum y abre una vía de infección bacteriana.

Tras el corte, mantén el fragmento 60-90 minutos en agua del acuario para que el moco y el tejido se retraigan, y solo entonces realiza un baño de yodo suave (5-10 gotas de Lugol por litro, 15 min) o de CoralRx según prospecto. El baño inmediato sobre el corte fresco retrasa la regeneración; si el fragmento procede de un sistema ajeno, cuarentena de 6

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

• Montaje y cianoacrilato. El coenosteum de Acropora tenuis es de los más delgados del género: apenas 1-2 mm de tejido sobre un esqueleto poroso. Al pegar el fragmento, aplica gel solo en la base esqueletizada y no dejes que el adhesivo toque tejido vivo; un «glue burn» de 3 mm se convierte en banda necrótica en 48-72 h. Cura el corte 24 h en el sumidero antes de pegar.
• Inclinación de 40-50°. Montada perpendicular a la luz crece como un cuerno estrecho y autosombreado; inclinada forma la típica corona en abanico con ramas radiales expuestas. Es el factor que más condiciona la estética final de la colonia y su velocidad de crecimiento lateral.
• Es el «canario» del carbonato. Mantén 7,5-8,5 dKH con oscilación diaria inferior a 0,2-0,3 dKH. Un salto de 1 dKH en 24 h provoca STN desde la base en esta especie antes que en A. millepora o A. yongei. Dosifica con peristáltica y mide siempre a la misma hora (mejor al final del fotoperiodo).
• Flujo turbulento, nunca laminar. Busca 15-25 cm/s alternantes sobre la colonia. El flujo laminar constante deposita detritus en las axilas y desencadena bandas necróticas marrones por algas perforantes; el flujo excesivamente directo de una bomba a 10 cm provoca «tip burn» y desprendimiento de tejido en las puntas.
• Ventana de nutrientes. NO₃ 3-10 mg/L y PO₄ 0,03-0,08 mg/L. Con PO₄ < 0,02 y NO₃ < 1 mg/L la tenuis pierde el azul/violeta y se «ahuesa»; con PO₄ > 0,15 mg/L vira a marrón y coloniza de filamentosa la base muerta. Es más tolerante a nutrientes medios que a la inestabilidad.
• pH y calcificación. 8,1-8,4. Por debajo de 7,9 la tasa de calcificación cae y la tenuis muestra base blanca y crecimiento detenido. En invierno, con la casa cerrada, evita picos de CO₂: ventila el skimmer al exterior o usa lechada de cal.
• Baños contra AEFW (Amakusaplana acroporae). Revisa la cara inferior de las ramas con lupa 10× buscando mordidas circulares y placas translúcidas. Baño de Lugol 3 ml/L durante 10 min y repite a los 6 y 12 días: los adultos mueren, los huevos no. El KCl a 20 g/L es eficaz pero castiga el tejido fino de esta especie; resérvalo para casos confirmados.
• Red bugs y black bugs. Tegastes acroporanus es específico de Acropora: puntos amarillos de 0,5 mm, polipos retraídos y pérdida de color. Cuarentena obligatoria de 30 días para cualquier tenuis nuevo; el tratamiento con milbemicina exige prescripción veterinaria en España y nunca debe hacerse en el acuario principal.
• Iluminación. PAR 350-550 en la zona alta, con picos de 420 nm y 450-470 nm. Aclimata subiendo un 10 % semanal desde el 60 % del valor objetivo. Fotoperiodo de 10-12 h; más de 13 h con nutrientes bajos favorece la decoloración.
• Fragmentación. Corta esquejes de 3-4 cm con alicate de hueso limpio y seco, evitando ramas con base incipiente. Cicatriza en 10-14 días a 100-150 PAR; la tenuis es de las acropóridas que mejor soporta el corte, con crecimiento de 1-3 cm/mes por rama en condiciones óptimas.
• Alelopatía. Mantén al menos 15 cm de separación de Sinularia, Sarcophyton y zoantídeos; los exudados de blando frenan su crecimiento axial y provocan necrosis localizada en el punto de contacto.
• Registro fotográfico. Fotografía la colonia cada 15 días con luz fija y referencia métrica. La tenuis muestra el STN de base como una línea blanca de 1-2 mm que apenas se aprecia a simple vista pero es evidente en foto comparada.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

12. ✅ CONCLUSIÓN

Acropora tenuis no es difícil por exótica, sino por exigente con la constancia: es una especie de crecimiento rápido y tejido finísimo, lo que la convierte en el mejor indicador de estabilidad de un arrecife de acuario y, a la vez, en la primera víctima de cualquier descuido. Si dominas tres variables —oscilación de KH inferior a 0,3 dKH/día, flujo turbulento real de 15-25 cm/s y temperatura que nunca roce los 28 °C—, tendrás una colonia que crece 1-3 cm/mes, se fragmenta con facilidad y mantiene el azul, violeta o verde según el morfo. La iluminación de 350-550 PAR con pico en 420 nm y una ventana de nutrientes de NO₃ 3-10 mg/L y PO₄ 0,03-0,08 mg/L completan el cuadro y explican por qué tantos acuaristas ven cómo su tenuis se vuelve marrón o se «ahuesa» sin entender qué cambió. Añade cuarentena estricta frente a A. acroporae y Tegastes, montaje inclinado y registro fotográfico quincenal, y tendrás un coral que perdona poco pero recompensa mucho: es, con diferencia, la acropórida más agradecida para quien trata el acuario como un sistema químico antes que como una vitrina.

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

Acropora tenuis responde a un acoplamiento estricto entre alcalinidad y nutrientes que muchos acuaristas ignoran: por encima de 8,5 dKH con NO₃ inferior a 1 mg/L y PO₄ por debajo de 0,03 mg/L aparece necrosis apical («burned tips») en 48-72 h, aunque el resto de la colonia mantenga extensión de polipos normal. El rango operativo seguro es KH 7,2-8,0, Ca 420-440 mg/L, Mg 1320-1350 mg/L, K⁺ 390-410 mg/L y salinidad 35,0 ± 0,5 ppt; la deriva diaria de KH no debe superar 0,3 dKH. La salinidad condiciona la lectura de KH y Ca, de modo que un refractómetro descalibrado desplaza ambos parámetros simultáneamente. El potasio es determinante para la pigmentación azul-violeta de las puntas y no se corrige con cambios de agua al 10 % semanal. La estabilidad importa más que el valor absoluto: colonias mantenidas a 9 dKH estables crecen bien, mientras que oscilaciones de ±0,8 dKH en 24 h desencadenan recesión basal. Verifica siempre el kit de alcalinidad con solución de referencia antes de ajustar.

A. tenuis carece de tentáculos barredores potentes y compite mediante digestión extracorpórea: al entrar en contacto con Montipora digitata, Seriatopora o conspecíficos, extiende filamentos mesentéricos y digiere el tejido vecino en 24-48 h, dejando una línea de necrosis blanca de 3-5 mm que puede confundirse con una enfermedad. La amenaza real procede de corales con armamento químico: Sarcophyton, Sinularia y Lobophytum liberan diterpenos y terpenoides que reducen su tasa de calcificación hasta un 40 % y provocan bordes pálidos sin contacto físico. Galaxea y Hydnophora la superan con tentáculos de barrido de 10-15 cm. En sistemas mixtos mantén 10-15 cm de separación efectiva y usa carbón activado a 0,5-1 g/L renovado cada 15 días; el ozono (ORP 350-400 mV) ayuda a oxidar aleloquímicos. La colonia también libera compuestos que modulan su microbioma, por lo que trasplantar esquejes entre sistemas puede abrir ventanas de infección de 10-14 días.

Ante un cambio de iluminación, A. tenuis muestra respuesta bifásica: primero se produce pardea miento por proliferación de zooxantelas (Cladocopium) y descenso de proteínas fluorescentes, y a las 3-5 semanas recupera color si el PAR se mantiene entre 250 y 350 µmol/m²/s con picos de 400. Al pasar de T5 a LED o viceversa, rampa la intensidad un 10 % semanal durante 6-8 semanas y mide con PAR-metro: la densidad de pigmentos no indica tolerancia real. En flujo, el óptimo es turbulento y alternante, 20-30 cm/s con inversión de dirección cada 6-12 h; por debajo de 10 cm/s las ramas se alargan, adelgazan y los coralitos se separan. Con flujo excesivo y unidireccional aparece recesión basal y retracción permanente de polipos, signo que precede a la pérdida de tejido en 5-7 días. El aumento de flujo eleva la calcificación al reducir la capa límite de difusión, pero también el consumo de KH: vigila la alcalinidad 24 h después de cada cambio de bomba.

Los fallos poco frecuentes en A. tenuis tienen firmas diagnósticas propias. La necrosis limitada a la base suele deberse a acumulación de detrito en baja corriente, no a patógenos: sifona y aumenta el flujo antes de medicar. El gusano plano devorador de Acropora (Amakusaplana acroporae) deja marcas de mordisco brillantes y masas de huevos transparentes en la base; un baño de yodo (Lugol 5 ml/L, 5 min) elimina adultos pero no huevos, por lo que repites a los 7 y 14 días. Los copépodos parásitos Tegastes acroporanus se ven como puntos rojos móviles y requieren milbemicina en cuarentena, nunca en el acuario principal. La expulsión de polipos («polyp bailout») es respuesta a estrés osmótico o amoniaco y no se revierte. Ante un RTN que avanza 1 cm/h, fragmenta 1 cm por delante del frente necrótico, sumerge el corte en yodo diluido y traslada el esqueje a un sistema estable: es la única medida eficaz.

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

Acoplamiento a parámetros. Acropora tenuis tolera rangos absolutos amplios pero es extraordinariamente sensible al acoplamiento entre ellos. Mantengo dKH 7,0-7,8 con Ca 420-440 mg/L y Mg 1300-1350 mg/L; el punto crítico es que el dKH no supere 8,0 cuando NO₃ <2 mg/L y PO₄ <0,03 mg/L, combinación que en esta especie se traduce en necrosis basal y puntas quemadas en 48-72 h. La relación iónica pesa más de lo que se publica: K 380-420 mg/L sostiene azules y púrpuras, y valores <350 mg/L producen desprendimiento de tejido en la base sin ningún otro signo previo. Salinidad 35 ppt con variación máxima de ±0,5 ppt/día; un fallo de reposición que baje a 32 ppt provoca retracción de pólipos y pérdida de color en 24 h. Temperatura 25-26 °C, con 28 °C tolerables solo si el oxígeno disuelto se mantiene >6 mg/L mediante agitación superficial. No ajustéis dos parámetros mayores el mismo día: A. tenuis responde a la velocidad de cambio, no solo al valor final.

Competencia química entre corales. A. tenuis es un competidor débil en contacto directo pero agresivo por vía química. Frente a Montipora, Hydnophora o Galaxea pierde: la Montipora la sombrea y sobrecrece en 3-4 meses, y Galaxea la digiere con filamentos mesentéricos sin que tenuis oponga sweeper tentacles eficaces. Su defensa real son terpenoides y metabolitos disueltos que inhiben la calcificación de vecinos; el efecto se aprecia a 10-15 cm, no a 30. Con Sinularia, Lobophytum o Zoanthus la alelopatía va en sentido contrario: aparece palidez progresiva, reducción de la extensión de pólipos y crecimiento anormalmente compacto. Corro carbón activado 24/7 a 250-350 mL por 500 L, renovado cada 3-4 semanas, y ozono a ORP 350-380 mV cuando hay carga alta de corales blandos. Separad cada colonia al menos un diámetro de rama de la vecina y revisad los puntos de contacto semanalmente: la necrosis por contacto avanza 2-5 mm/día.

Respuesta a cambios de luz y flujo. En iluminación, A. tenuis modula densidad de zooxantelas y proteínas fluorescentes en 3-6 semanas. Partiendo de 150-200 µmol·m⁻²·s⁻¹, subo a 350-450 µmol·m⁻²·s⁻¹ en rampa de 5-6 semanas, con incrementos máximos del 10 % semanal; superar eso produce fotoinhibición con puntas blancas que se confunden con crecimiento. El pico debe estar en 420-460 nm: los azules y púrpuras responden al violeta, mientras que un exceso de 400-420 nm con nutrientes bajos blanquea las zonas apicales. Fotoperiodo de 10-11 h con 30 min de rampa. En flujo, 20-35 cm/s turbulento y alterno; por debajo de 10 cm/s las ramas engrosan, se acortan y se acumula detritus en las axilas, punto de partida de STN. Flujo laminar directo >50 cm/s provoca retracción permanente y erosión apical. La morfología es el mejor indicador: ramas finas y espaciadas indican flujo correcto; ramas gruesas, insuficiente.

Problemas poco frecuentes y su manejo. (1) AEFW (Amakusaplana acroporae): mordeduras circulares de 1-2 mm en la cara inferior; el baño de KCl a 3-5 g/L durante 5-6 min desprende adultos pero no huevos, así que repetid cada 6 días tres veces y mantened cuarentena 8 semanas. (2) Tegastes acroporanus (red bugs): pólipos cerrados con aspecto aterciopelado y pérdida de color; el milbemycin oxime exige tratar el sistema completo y mata crustáceos, valoradlo antes. (3) Polyp bailout por Vibrio tras envío: pólipos que se desprenden y flotan; no hay tratamiento, solo cortar 1 cm por debajo del frente de necrosis y fraccionar. (4) Erosión por cianoacrilato: el calor de curado mata 2-3 mm de tejido del esqueje; pegad sobre esqueleto seco y sin tejido vivo. (5) STN basal con dKH 8,5+, K bajo y yodo <0,03 mg/L: corregid K y yodo antes de tocar la iluminación.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Cómo distingo Acropora tenuis de otras acróporas?

Es una acrópora corymbosa a cespitosa, con ramas finas (8–15 mm de diámetro) que se dividen en un mismo plano. El rasgo diagnóstico está en los coralitos radiales: tubulares, pequeños, de abertura redondeada y dispuestos en hileras regulares y apretadas a lo largo de la rama, mientras el coralito axial es alargado y único en la punta. El coenesteo es reticulado y fino. No la identifiques por color: existe en marrón, verde, azul y lila. Separarla de A. yongei (ramas más largas y gruesas) y de A. microclados exige observar el esqueleto seco.

¿Qué parámetros de agua necesita exactamente?

Mantén calcio 420–440 mg/L, alcalinidad 7,5–8,0 dKH, magnesio 1.320–1.380 mg/L, salinidad 35 g/L (densidad 1,026), pH 8,1–8,3 y temperatura 25–26 °C, sin superar 28 °C ni bajar de 24 °C. Nitrato 2–5 mg/L y fosfato 0,03–0,06 mg/L: los valores indetectables la aclaran hasta el blanqueo. La clave no son los valores absolutos sino la estabilidad: no permitas oscilaciones de alcalinidad superiores a 0,5 dKH al día ni cambios de salinidad por encima de 1 g/L. Verifica calcio y KH a diario durante el primer mes tras el montaje.

¿Cuánta luz y corriente requiere?

Colócala en el tercio superior con PAR de 250–350 µmol·m⁻²·s⁻¹ (tolera 200–450 con aclimatación progresiva) y fotoperiodo de 10–12 horas, con predominio de azul 420–480 nm. La corriente debe ser turbulenta y alterna, con renovación de 20–30 veces el volumen del acuario por hora, evitando el chorro laminar directo sobre el coralito axial, que provoca crecimiento deformado y necrosis en la punta. Deja 10–15 cm de separación respecto a otras acróporas para evitar alelopatía y sombreado.

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