Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia
📋 ÍNDICE DEL ARTÍCULO
- 1. 🌏 INTRODUCCIÓN
- 2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
- 3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
- 4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
- 5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
- 6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
- 7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
- 8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES
- 10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
- 11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
- 12. ✅ CONCLUSIÓN
1. 🌏 INTRODUCCIÓN
Pocillopora damicornis (Linnaeus, 1758) es el escleractinio ramificado más abundante y de distribución más amplia del Indo-Pacífico, y en acuariofilia se comercializa como «coral coliflor» (no confundir con el «cuerno de ciervo», Acropora cervicornis). Su colonia es cespitosa-coricmbosa: ramas cilíndricas de 1-3 cm de grosor, a menudo aplanadas en la base, recubiertas por verrucae —proyecciones verrugosas digitiformes— que le dan una textura áspera inconfundible al tacto. Los cálices miden 1-2 mm de diámetro, con 12 septos en dos ciclos y columela papilosa; la coloración oscila entre rosa salmón, malva, crema verdoso y marrón, con las puntas más pálidas en ejemplares en crecimiento activo.
Lo que la hace biológicamente singular es su estrategia reproductiva: es una de las pocas escleractinias que incuba planulas en la cavidad gastrovascular y las libera durante todo el año en poblaciones del Indo-Pacífico occidental. Además de la reproducción sexual, produce planulas por partenogénesis y presenta polyp bail-out (desprendimiento de pólipos viables ante estrés). En acuario esto se traduce en un hecho práctico: aparecerán colonias nuevas a decenas de centímetros del coral madre, sobre roca viva o cristal, sin que el acuarista haya fragmentado nada. Es útil para poblar roca desnuda y problemático si se busca un paisaje controlado, porque actúa como especie r-estratega, pionera y colonizadora rápida tras perturbaciones.
Un aviso taxonómico imprescindible: P. damicornis es un complejo de especies crípticas. Schmidt-Roach y colaboradores (2014) demostraron mediante morfología y marcadores moleculares que el nombre se aplicaba a linajes distintos, y restringieron P. damicornis sensu stricto a la localidad tipo del Índico («Mare Indico»), separando linajes como P. acuta o los tipos β/λ del Indo-Pacífico. Muchos ejemplares del comercio, con fenotipos más delicados y ramas finas, corresponden en realidad a P. acuta. Consecuencia práctica: no fijes parámetros por el nombre comercial; ajusta según el fenotipo real de tu fragmento.
Su tolerancia a nutrientes elevados, a oscilaciones térmicas y a sedimentación la convierten en la SPS recomendada para iniciarse en piedra muerta colonizada: soporta lo que mataría a un Acropora, aunque pierde color (pardea) con NO₃ sostenidos por encima de 20 mg/L.
2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
| Categoría | Clasificación | Observaciones |
|---|---|---|
| Dominio | Eukaryota | Holobionte: cnidario + zooxantelas + bacterias |
| Reino | Animalia | Metazoo colonial sésil |
| Filo | Cnidaria | Nematocistos en tentáculos y filamentos mesentéricos |
| Clase | Anthozoa | Pólipo con cavidad gastrovascular tabicada por mesenterios |
| Subclase | Hexacorallia | Simetría hexámera; 12 septos en el cáliz |
| Orden | Scleractinia | Esqueleto de aragonito secretado por el ectodermo calicoblástico |
| Familia | Pocilloporidae | Coenosteum poroso y espinoso; incluye Stylophora, Seriatopora y Palauastrea |
| Género | Pocillopora | Verrucae con o sin cálices; sin coenosteum reticulado |
| Especie | Pocillopora damicornis | Linnaeus, 1758 (descrita como Madrepora damicornis) |
| Sinónimos | P. brevicornis, P. ocellata, P. cespitosa | Sinonimia parcial; revisada por Veron & Pichon |
| Localidad tipo | «Mare Indico» | Neotipo designado en la revisión de 2014 |
| Zooxantelas | Durusdinium (clado D) dominante; Cladocopium (clado C) accesorio | El clado D confiere tolerancia térmica; explica su resistencia a picos de 30-31 °C |
El esqueleto es extremadamente poroso y ligero (densidad aparente baja), lo que explica dos cosas: su rápido crecimiento en extensión y su fragilidad extrema al manipularlo. Los fragmentos se rompen con la uña y se cementan con facilidad, pero la superficie de fractura es un punto de entrada para infecciones bacterianas y necrosis rápida (RTN) si no se sella con resina o cianoacrilato gel.
3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
Su área de distribución abarca aproximadamente 35° N-35° S: desde el mar Rojo y África oriental (Kenia, Tanzania, Madagascar, Seychelles) por todo el Índico hasta el Indo-Malayo, Australia, Micronesia, Hawái y la Polinesia Francesa. Está ausente del Atlántico y el Caribe; las citas del Pacífico oriental tropical corresponden a linajes hoy reconocidos como especies distintas del complejo. En Hawái es una de las tres especies dominantes de los arreceles someros, y en el Indo-Pacífico central forma franjas monoespecíficas en crestas de arrecife batidas por el oleaje.
Es una especie de arrecife plano y laguna somera: vive entre 0 y 5 m de profundidad en la mayoría de las poblaciones (hasta 15 m en aguas claras, siempre con menor densidad), sobre escombros coralinos, roca caliza y corales muertos, cementada con una base incrustante. Tolera condiciones que excluyen a otras SPS: emersión parcial durante las mareas vivas (soporta picos de 32 °C y salinidades de 25-26 durante episodios de lluvia en arrecifes insulares), turbidez elevada en arrecifes interiores de la Gran Barrera con >10 mg/L de sedimento en suspensión, y fluctuaciones de pH de 7,8 a 8,3 en ciclos de marea. Su óptimo, sin embargo, es agua oligotrófica bien agitada: 24-27 °C, salinidad 34-35, alcalinidad 7,0-8,5 dKH y Ca 400-440 mg/L.
En el arrecife ocupa el estrato de exposición máxima: cresta arrecifal con flujo oscilatorio de 15-30 cm/s y alta irradiancia (PAR superficial de 400-800 µmol·m⁻²·s⁻¹). Esa combinación es la que hay que replicar en acuario: colocación en la zona alta, PAR de 250-450 µmol·m⁻²·s⁻¹ y movimiento turbulento e intermitente de 20-30× el volumen del tanque por hora, alternando bombeo cruzado. Con luz insuficiente (<150 PAR) pierde la coloración rosada y se vuelve marrón uniforme; con flujo débil acumula detrito en las verrucae y developa necrosis basal.
Su ecología trófica es marcadamente autótrofa, con aporte de bacterioplancton y materia orgánica disuelta; la alimentación particulada es opcional y de partículas de 0,2-1 mm (nauplios, rotíferos, Mysis triturada). Es hospedadora habitual de cangrejos del género Trapezia y de gambas del género Alpheus y Palaemon, que la defienden de depredadores como Drupella y el estrella de mar Acanthaster planci; en acuario se sustituye esa función con observación manual, ya que Drupella puede arrasar una colonia en días. Su tasa de calcificación en la naturaleza ronda 1-3 cm de extensión lineal anual, claramente superior en cautividad con alcalinidad estable. Está incluida en el Apéndice II de CITES, y la mayor parte del material del comercio procede de fragmentos maricultivados.
Un detalle ecológico relevante para el acuario de arrecife mixto: P. damicornis es alelopática y de crecimiento agresivo frente a SPS más lentas, pero muy susceptible a la competencia por sombreado de corales de mayor talla y a la necrosis por contacto con zoantídeos y Galaxea. Mantenla separada 8-10 cm de cualquier vecino con tentáculos largos.
4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
Forma colonial. Pocillopora damicornis (Linnaeus, 1758), familia Pocilloporidae, construye colonias cespitosas de ramificación dicotómica irregular, con ramas de 1–2,5 cm de grosor y 10–40 cm de diámetro (hasta 1 m en el medio natural). El carácter diagnóstico frente a otros Pocillopora son las verrucae: protuberancias verrugosas de punta roma que cubren densamente el cenénquima y entre las cuales se intercalan los cálices, sin que estos formen series lineales ni se limiten a un lado de la rama.
Cálices y pólipos. Los cálices son pequeños (0,7–1,2 mm de diámetro), inmersos, de contorno redondeado a elíptico, con 12 septos en dos ciclos (el segundo muy reducido), columela prominente y borde que no sobresale del cenénquima. Los pólipos miden 1–2 mm extendidos, con 12 tentáculos cortos, cónicos y de ápice redondeado, sin disco oral diferenciado. A diferencia de la mayoría de SPS, extienden los pólipos de día y de noche, lo que da a la colonia un aspecto «peludo» inconfundible; la retracción ante un estímulo es muy rápida.
Esqueleto. Aragonito de alta porosidad y baja densidad, con cenénquima espinuloso-granuloso al tacto. Esta arquitectura ligera explica dos cosas: una tasa de extensión alta (2–6 cm/año por rama en acuario, más en el medio natural) y una fragilidad extrema: las ramas se parten con un chasquido limpio con una simple presión de los dedos, lo que condiciona todo el manejo y el fragging.
Zooxantelas. Aloja Symbiodinium del clado C, fundamentalmente C1/C1b (con C42 y, en algunas poblaciones, tipos del clado D). La densidad típica ronda 1–3 × 10⁶ células/cm² de tejido. Es una especie incubadora (brooder) y hereda las zooxantelas verticalmente vía planulas maternas, por lo que no depende de la adquisición ambiental de simbiontes: en acuario esto se traduce en que las colonias pueden liberar planulas que se asientan en cristales, roca y rebosadero. Está documentada la producción de planulas por vía partenogenética, lo que genera colonias genéticamente idénticas.
Pigmentación. Debe su color a pociloporinas (cromoproteínas hidrosolubles rosas/magentas) y a proteínas fluorescentes verdes, con función fotoprotectora. La expresión es dependiente de la luz: a alta irradiancia domina el rosa pálido; a baja, el marrón por densidad de zooxantelas. Finalmente, P. damicornis es un complejo de especies crípticas (varias líneas α, β, γ…), con diferencias en ramificación y modo reproductivo; el comercio mezcla linajes bajo el mismo nombre.
5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
| Parámetro | Valor óptimo | Observaciones |
|---|---|---|
| Temperatura | 24–27 °C | Tolera 22–29 °C; por encima de 30 °C blanquea rápido. Es más termotolerante que Acropora, pero su umbral de blanqueamiento sigue siendo bajo. |
| Salinidad | 34–35 ‰ (1.025–1.026) | Evitar descensos bruscos por relleno de agua dulce; tolera 33 ‰ de forma estable. |
| pH | 8,1–8,4 | Oscilación diurna admisible de 0,1–0,2; por debajo de 7,9 se frena la calcificación. |
| KH (alcalinidad) | 7–9 dKH (2,5–3,2 meq/L) | El parámetro crítico. Con crecimiento activo el consumo es alto: mide a diario y mantén la desviación por debajo de ±0,5 dKH. |
| Calcio | 420–450 mg/L | Consumo paralelo al KH; no bajar de 400 mg/L. |
| Magnesio | 1290–1350 mg/L | Por debajo de 1250 mg/L el KH se desestabiliza y cuesta mantenerlo. |
| Nitratos (NO₃) | 1–5 mg/L | Tolera 10–20 mg/L con pardamiento; en ULNS (<0,5 mg/L) palidece y es más vulnerable a banda blanca. |
| Fosfatos (PO₄) | 0,02–0,06 mg/L | Hasta 0,1 mg/L sin problema; por encima, bloqueo de calcificación y proliferación de algas en la base. |
| Iluminación | PAR 250–450 µmol·m⁻²·s⁻¹ | Aclimata desde 150 µmol durante 3–4 semanas. Más luz = ramas más compactas y rosa más intenso; exceso = puntas pálidas y pólipos retraídos. |
| Flujo | 20–30× volumen/h, turbulento y aleatorio | Flujo laminar provoca necrosis basal por acumulación de sedimento; un chorro directo a menos de 5 cm arranca tejido. |
La clave con esta especie no es el valor absoluto sino la estabilidad: soporta mejor un nitrato de 10 mg/L estable que un KH que oscila entre 6 y 9 dKH en una semana. Durante las fases de crecimiento rápido el consumo de alcalinidad y calcio se dispara, así que ajusta el reactor o el balling con medición diaria de KH y semanal de Ca/Mg. En sistemas con NO₃ y PO₄ indetectables, sube la alimentación o dosifica nitrato antes que forzar resinas antifosfato: las colonias pálidas de P. damicornis en ULNS son candidatas a infecciones bacterianas oportunistas.
6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
Colocación. Tercio medio-alto del acuario, con la colonia a 20–40 cm de la superficie bajo 250–450 µmol·m⁻²·s⁻¹ y en la salida de una bomba de movimiento. Reserva 10–15 cm libres alrededor: crece hacia el vecino y lo soterra por crecimiento, no por alelopatía agresiva. Fíjala sobre roca viva con cianoacrilato en gel o una porción mínima de epoxy (el epoxy en exceso genera calor y necrosis en la base). Es una
7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
Pocillopora damicornis no es un SPS pasivo. Sus pólipos poseen nematocistos potentes y, ante el contacto con un competidor, desarrolla tentáculos barredores (pólipos modificados que se alargan hasta 3-6 cm) capaces de necrosar tejido de Acropora, Montipora e incluso de LPS de tentáculos cortos. A esto se suma una tasa de crecimiento lineal de 1-3 cm/mes en ramas y una sombra progresiva sobre el sustrato vecino. En la práctica, deja 15-20 cm de separación respecto a otros corales pétreos y revisa las noches posteriores al encolado: los barredores suelen aparecer 48-72 h después del estrés de manipulación.
Peces compatibles. Es un coral «nodriza» clásico. Dascyllus aruanus y D. trimaculatus establecen territorios entre sus ramas; Paragobiodon echinocephalus vive casi exclusivamente en colonias de Pocillopora (a diferencia de Gobiodon, ligado a Acropora). Los lábridos limpiadores (Labroides), Lysmata amboinensis y la mayoría de gobios, blenios y cirujanos ignoran el coral. Los Cirrhitichthys y otros halcones se posan sobre las ramas y las parten con su peso, más por daño mecánico que por depredación.
Peces a evitar. Cualquier corallívoro obligado o facultativo: Oxymonacanthus longirostris, la mayoría de Chaetodon (especialmente C. trifasciatus, C. lunulatus, C. ornatissimus), Pomacanthus y Pygoplites adultos, Canthigaster, Balistoides y lábridos del género Thalassoma. En acuarios pequeños, los damiselas territoriales pueden «jardinear» algas sobre tejido muerto y acelerar la necrosis de la base.
Invertebrados simbiontes (deseables). La colonia alberga una fauna mutualista que la defiende de depredadores: cangrejos Trapezia flavopunctata, T. cymodoce y T. digitalis, el alfeido Alpheus lottini y el cangrejo agallador Haapalocarcinus marsupialis (este último deforma ramas pero rara vez mata). No los extraigas: su presencia reduce el consumo por Drupella y por la corona de espinas.
Invertebrados problemáticos. Caracoles Drupella cornus, D. margariticola, Coralliophila spp., el cipreido Jenneria pustulata (Pacífico oriental), nudibranquios aeolidáceos, estrellas como Protoreaster nodosus y Acanthaster planci. Cangrejos ermitaños grandes, erizos Echinometra y Diadema erosionan la base; las anémonas errantes (Heteractis, Stichodactyla) y los LPS con barredores largos (Galaxea, Euphyllia, Physogyra) lo matan por contacto directo.
8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES
Blanqueamiento. P. damicornis es un bioindicador por su umbral térmico bajo: pierde simbiontes tras 1-2 semanas sostenidas por encima de 30-31 °C, y en el Indo-Pacífico se registra mortalidad masiva en eventos El Niño. Mantiene comunidades mixtas de Cladocopium y Durusdinium; la reorganización hacia Durusdinium trenchii confiere tolerancia térmica pero reduce la tasa de calcificación. En acuario, un blanqueamiento rápido con pólipos retraídos apunta a choque térmico, salinidad fuera de 34-35 ‰ o un salto de iluminación (subidas de PAR superiores al 30 % de golpe).
RTN y necrosis bacteriana. La necrosis rápida de tejido es la patología más frecuente y avanza de 1 a 3 cm/h desde la base o desde las puntas, dejando esqueleto blanco limpio. El patógeno de referencia es Vibrio coralliilyticus, descrito precisamente sobre esta especie: su virulencia se activa por encima de 27 °C mediante una metaloproteasa de zinc, de modo que un pico térmico de 24-48 h puede desencadenar un brote. El manejo exige fragmentar inmediatamente por delante del frente de necrosis (con corte limpio en tejido sano), baño de yodo a 10-25 mg/L durante 5-10 min y descartar amonio/nitrito elevados.
Banda erosiva del esqueleto (SEB). El ciliado Halofolliculina corallasia</em
10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
Pocillopora damicornis no es un coral de exposición: es un colonizador de estrategia r, y entenderlo así cambia por completo la forma de mantenerlo. Estos son los puntos que marcan la diferencia entre una colonia que dura años y un esqueje que se pierde en seis semanas.
- Es tu indicador más rápido de alcalinidad. Antes que un Acropora, P. damicornis muestra necrosis en la base y ápices blanquecinos cuando el KH oscila más de 1 dKH en 24 h. Mantenlo entre 7,0 y 8,0 dKH con test de precisión semanal; si aparece tejido retraído en la base, mide KH antes de tocar cualquier otra cosa.
- Se reproduce solo, y eso es un arma de doble filo. Es un coral incubador: libera planulas viables cada 3-5 semanas (ligadas al ciclo lunar) y practica polyp bail-out bajo estrés. Encontrarás colonias diminutas en cristal, rebosadero y sump. El bail-out —pólipos desprendiéndose del esqueleto— es una señal de alarma, no un fenómeno curioso: revisa temperatura y KH de inmediato.
- Revisa base y axilas con lupa en la cuarentena. Sus ramas densas y verrugosas son el escondite perfecto de caracoles piramidélidos (ectoparásitos succionadores que provocan pérdida de tejido difusa) y de Drupella. Un baño de yodo comercial de 10-15 min y una inspección manual bastan; no raspes las verrugas.
- Conserva a sus inquilinos. Cangrejos Trapezia, gambas Alpheus lottini y góbidos Gobiodon son simbiontes que defienden la colonia de Drupella y de estrellas de mar. Su presencia es un plus, no una plaga.
- Flujo turbulento y alternante, no laminar. Apunta a 15-20 cm/s en la superficie de la colonia, con cambio de dirección cada 6-8 h (bombas en modo aleatorio). La acumulación de detritos entre ramas es la primera causa de necrosis basal en acuario.
- Es agresiva por crecimiento, no por tentáculos. Desarrolla tentáculos barridos y filamentos mesenteriales, pero su daño real es la sobreposición: calcifica por encima de zoantídeos y de la base de Acropora. Deja 10-15 cm de separación y revisa el contacto basal cada mes.
- Luz: 250-450 PAR según morfo. Los morfos marrones y verdes aguantan 150 PAR sin problema; los rosas y verde metálico exigen 400+ PAR con espectro completo. Aclimata bajando un 40 % la intensidad las tres primeras semanas; subir demasiado rápido provoca fotoblanqueo de ápices en 5-7 días.
- Tolera «agua sucia», pero no indefinidamente. NO₃ 2-10 mg/L y PO₄ 0,03-0,10 mg/L le van bien; por encima de NO₃ 20 mg/L se vuelve marrón opaco y pierde contraste. Por debajo de NO₃ 1 mg/L con 400 PAR aparece palidez y riesgo de RTN.
- Esqueja sin miedo, pero con orden. Corta ramas de 2-3 cm con cortapernos, enjuaga la mucosidad en agua del acuario y pega con cianoacrilato gel fuera del agua. Cicatriza en 7-10 días. Es uno de los SPS más fáciles de fragmentar: aprovecha para renovar la colonia cada 12-18 meses, porque la base vieja se necrosa por sombreado.
- Temperatura: 25-26 °C, sin excusas. A 29 °C sostenidos 48 h pierde zooxantelas y blanquea; a 30 °C aparece RTN en 24-36 h. Es más tolerante que un Acropora, pero no es un coral «duro» frente al calor.
- Ojo con la identificación. Muchos «damicornis» marrones del comercio son en realidad Pocillopora acuta (ramas más finas, sin verrugas marcadas). No cambia el manejo, pero sí la expectativa de color: P. damicornis auténtica rara vez alcanza los rosas intensos que se ven en foto.
11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
Calendario para hemisferio norte, acuario estable con temperatura controlada. La clave es anticipar: el consumo de carbonatos se dispara en primavera-verano y cae en invierno, y con él la dosis de balling o reactor.
| Estación | Iluminación y fotoperiodo | Química del agua | Alimentación y flujo | Mantenimiento y revisión | Riesgos principales |
|---|---|---|---|---|---|
| Primavera (mar-may) | Subida gradual: +5 % de intensidad cada 2 semanas hasta 12 h de fotoperiodo | KH 7,5-8,0 dKH; Ca 420-440 mg/L; Mg 1300-1350 mg/L; test semanal | Sube a 2-3 tomas semanales de zooplancton de 50-200 µm; flujo 15-20 cm/s alternante | Recalibra dosificadoras; limpieza de bombas; esqueje de renovación | Pico de consumo de KH al aumentar la fotosíntesis |
| Verano (jun-ago) | 12 h máximas; revisa PAR real a la altura de la colonia | Temperatura máxima 26,5 °C; KH 7,5-8,0 estable; NO₃ 2-8 mg/L | Alimentación 3 veces por semana; flujo máximo con modo aleatorio nocturno | Ventiladores o enfriador; reposición de evaporación diaria; control de detritos entre ramas | Ola de calor y blanqueo; proliferación de algas por PO₄ alto |
| Otoño (sep-nov) | Bajada gradual a 11 h; reduce un 10-15 % la intensidad | KH 7,0-7,5 dKH; ajusta dosis al consumo real medido | 2 tomas semanales; flujo moderado-alto constante | Inspección con lupa de caracoles piramidélidos; revisa planulas en sump | Exceso de dosificación tras el descenso de consumo |
| Invierno (dic-feb) | 10-11 h; sin cambios bruscos de espectro | Temperatura mínima 24,5 °C; KH 7,0 dKH; Mg 1300 mg/L | 1-2 tomas semanales; flujo alto para compensar menor fotosíntesis | Revisión de calentador y termostato de seguridad; test de Mg mensual | Fallos de calentador; necrosis basal por sombreado y detritos |
12. ✅ CONCLUSIÓN
Pocillopora damicornis es el SPS de transición perfecto y, a la vez, el coral que más acuaristas subestiman. Perdona errores que un Acropora no perdona —nutrientes altos, fluctuaciones puntuales de salinidad, iluminación moderada— pero castiga con necrosis cualquier inestabilidad de KH o un pico térmico de 48 horas. Su crecimiento rápido, su facilidad de esqueje y su reproducción asexual continua lo convierten en una fuente casi inagotable de fragmentos y en una herramienta excelente para validar la madurez de un acuario antes de introducir corales más exigentes.
El mantenimiento a largo plazo se resume en tres rutinas: KH estable entre 7,0 y 8,0 dKH medido semanalmente, temperatura nunca por encima de 26,5 °C y flujo turbulento que impida la acumulación de detritos en la base. Añade cuarentena con inspección de caracoles parásitos, separación de 10-15 cm respecto a otros cor
❓ PREGUNTAS FRECUENTES
¿Por qué mi Pocillopora damicornis expulsa pólipos o libera planulae sin causa aparente?
Lo que observas suele ser polyp bail-out, descrito precisamente en esta especie por Sammarco (1982): ante un estrés agudo —caída de KH >0,7 dKH en 24 h, salinidad fuera de 34–36, temperatura por encima de 29 °C, hipoxia nocturna o sombreado por competencia— los pólipos se desprenden del esqueleto con filamentos basales y se reasientan en el sustrato. El coral queda con zonas de esqueleto blanco desnudo, que luego recoloniza desde los márgenes. No confundas esto con la liberación normal de planulae: P. damicornis es incubadora y libera larvas competentes con periodicidad lunar, con picos en torno a la luna nueva (Richmond & Jokiel, 1984). Si aparecen colonias pequeñas en cristales y roca viva sin haberlas pegado, es planulación, no plaga.
¿Qué parámetros exactos necesita en acuario?
PAR 150–350 µmol·m⁻²·s⁻¹ (tolera hasta ~450 en fotoperiodo de 10–12 h), flujo turbulento y alterno de 15–25 veces el volumen del tanque por hora, con corrientes que muevan las ramas sin doblarlas. Química: KH 7,5–8,5 dKH con oscilación máxima de 0,3 dKH/día, Ca 420–440 mg/L, Mg 1300–1350 mg/L, salinidad 35 g/L, temperatura 24–26,5 °C, pH 8,1–8,3, NO₃ 2–10 mg/L y PO₄ 0,03–0,08 mg/L. Es más tolerante a nutrientes altos que un Acropora, pero muy sensible a la inestabilidad de KH: la necrosis basal en esta especie casi siempre es química, no lumínica. Mantén el yodo en 0,06 mg/L si podas con frecuencia.
¿Cómo la diferencio de Pocillopora eydouxi o P. acuta?
P. damicornis presenta ramas subdicotómicas gruesas, con vérrugas (verrucae) densas y prominentes que le dan textura nodular, y ramas de hasta 3–4 cm de diámetro en colonias maduras; los ápices son romos y con frecuencia blanquecinos por crecimiento activo. P. acuta tiende a ramificación más fina, digitiforme y con ápices puntiagudos; P. eydouxi forma colonias más compactas y cespitosas con vérrugas pequeñas. El complejo fue revisado por Schmidt-Roach et al. (2014): la morfología sola no basta, y buena parte de lo que circula en el hobby como «damicornis» son en realidad P. eydouxi o híbridos. Para afinidad real necesitas identificación genética (mtORF/ITS2).
¿Se reproduce en el acuario?
Sí, y por dos vías. La sexual es por incubación: colonias hermafroditas liberan planulae de 1–2 mm que asientan en 24–72 h sobre cualquier superficie rugosa. La asexual incluye planulación partenogenética documentada en poblaciones de arrecife (Stoddart, 1983) y fragmentación por rotura de ramas. Por eso reaparece en zonas donde no la colocaste y puede volverse dominante: su tasa de extensión lineal (1,5–4 cm/año) y su capacidad de asentamiento masivo le permiten tapizar el sustrato libre antes que corales más lentos.
¿Cómo la podo y fijo esquejes sin provocar necrosis?
Corta con cizalla de hueso limpia, siempre por encima de la base y dejando 1 cm de rama bajo la bifurcación; evita cortar en ramas con ápice blanco recién formado. Haz el corte fuera del agua el mínimo tiempo y sumerge el esqueje 10–15 min en Lugol’s diluido (5 ml/L) o yodo 0,5 ml/L. Fija con cianocrilato en gel sobre el lateral del fragmento, nunca sobre el corte apical, y coloca en flujo medio y luz media 4–5 días. El error típico es pegar la base plana: el tejido basal se necrosa por falta de flujo y la necrosis asciende. Poda en dos tandas separadas 3 semanas y no toques el KH ese día.
¿Qué plagas y patógenos la atacan?
El gasterópodo coralívoro Coralliophila abbreviata deja cicatrices blancas en franjas y debe retirarse mecánicamente. El trematodo Podocotyloides stenometra produce nódulos rosados o blanquecinos («pink spots») en las ramas de poblaciones hawaianas: son quistes de cercarias, no huevos, y no se tratan en acuario. Vigila también gusanos planos y la necrosis bacteriana de banda blanca tras heridas de poda. Conserva los simbiontes: cangrejos Trapezia y gambas Alpheus defienden la colonia de depredadores y su presencia es señal de buena aclimatación.
📚 REFERENCIAS
- Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, Vol. 2. Australian Institute of Marine Science, Townsville.
- Schmidt-Roach, S., Miller, K.J., Lundgren, P. & Andreakis, N. (2014). With eyes wide open: a revision of species within and closely related to the Pocillopora damicornis species complex using morphology and genetics. Zoological Journal of the Linnean Society 170: 1–33.
- Stoddart, J.A. (1983). Asexual production of planulae in the coral Pocillopora damicornis. Marine Biology 76: 279–284.
- Richmond, R.H. & Jokiel, P.L. (1984). Lunar periodicity in larva release in the reef coral Pocillopora damicornis at Enewetak and Hawaii. Bulletin of Marine Science 34(2): 280–287.
- Sammarco, P.W. (1982). Polyp bail-out: an escape response to environmental stress and a new means of reproduction in corals. Marine Ecology Progress Series 10: 57–65.
- Borneman, E.H. (2001). Aquarium Corals: Selection, Husbandry, and Natural History. TFH Publications, Neptune City.
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia
© 2026 Roberto Parra Jiménez – Biólogo Marino (UH Mānoa). Todos los derechos reservados.
Deja una respuesta