Montipora tuberculosa

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Montipora tuberculosa (Lamarck, 1816) es un escleractinio colonial de la familia Acroporidae que llega al acuario con notable frecuencia bajo etiquetas comerciales vagas («monti incrustante», «monti marrón», «monti verrugosa»). Su morfología típica es incrustante y nodular: la colonia se expande sobre el sustrato y desarrolla lóbulos verticales cortos y placas horizontales finas que se superponen en capas sucesivas, dejando cámaras y salientes que crecen con la edad. El rasgo diagnóstico es la superficie del coenosteum, densamente cubierta de verrugas o tubérculos redondeados (verrucae) de 0,5–1,5 mm, separados de forma más o menos regular, que le confieren un aspecto granuloso o «ampollado» muy visible con luz actínica y al observar la colonia en escorzo. Los cálices son diminutos (0,5–0,9 mm de diámetro), inmersos en el coenosteum, sin coralito axial y con disposición irregular; de día los pólipos permanecen retraídos y la colonia aparece lisa y mate, mientras que de noche se expanden y adquiere un aspecto difuso y peludo. La coloración más común es marrón canela, verde oliva, crema o púrpura, con frecuencia con el borde de crecimiento más pálido; existen morfos verde fluorescente y púrpura intenso en el comercio de acuariofilia, pero la identificación como M. tuberculosa debe basarse en la textura verrugosa, no en el color.

Es, junto a Montipora digitata, una de las especies de SPS más indicadas para la transición desde corales blandos y LPS. Tolera niveles de nitrato de 5–15 mg/L y fosfato de 0,05–0,15 mg/L sin perder color de forma apreciable, admite sedimentación moderada y variaciones térmicas de 1–2 °C. Sus límites son otros: no soporta oscilaciones de alcalinidad superiores a 1 dKH en 24 h, es muy sensible a los cambios bruscos de salinidad (por ejemplo, por reposición de agua dulce mal controlada) y muestra predilección por sustratos inestables si no se fija correctamente. En cuanto a patógenos, es susceptible al «síndrome blanco de Montipora» (MWS), que avanza como una banda de tejido blanco desde la base o desde los bordes, y a la depredación por caracoles Drupella, pequeños nudibranquios de la familia Tergipedidae y platelmintos acelos que se refugian en las cámaras entre placas. Frente a Acropora, muestra menor propensión a la necrosis rápida de tejido (RTN) por estrés de transporte, lo que la convierte en una especie robusta para acuarios consolidados pero de parámetros no perfectos.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

La especie fue descrita por Lamarck en 1816 como Porites tuberculosa y transferida posteriormente al género Montipora. El género agrupa a más de un centenar de especies descritas y su identificación morfológica es notoriamente conflictiva; en el comercio se confunde con M. aequituberculata, M. incrassata, M. venosa y M. monasteriata, todas ellas con coenosteum verrugoso. La clave práctica es la combinación de crecimiento incrustante-nodular, verrugas pequeñas y regulares y cálices inmersos sin disposición en hileras marcadas, rasgo que sí aparece en M. venosa.

La ausencia de coralito axial la separa de Acropora dentro de la misma familia; la posición inmersa de los cálices y la textura verrugosa la separan de M. capitatа, de cálices mayores y colonias más estrictamente placaformes. Los análisis moleculares han demostrado que la taxonomía morfológica del género subestima la diversidad real, por lo que las citas de «M. tuberculosa» en el hobby deben tomarse como identificación probable, no definitiva.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Su distribución abarca el Indo-Pacífico tropical: desde el mar Rojo y la costa oriental de África (Kenia, Tanzania, Madagascar) hasta las islas Ryukyu en Japón, el archipiélago indonesio, la Gran Barrera de Coral, el mar del Coral y la Polinesia Francesa. Es frecuente y localmente abundante, aunque rara vez dominante en el arrecife. Ocupa un intervalo batimétrico amplio, desde el intermareal inferior hasta unos 30 m, con máximo de abundancia entre 1 y 15 m.

Su nicho ecológico es característico de ambientes marginales: llanuras arrecifales, lagunas, zonas de back reef, charcas de marea y fondos someros con turbidez y sedimentación estacional. Tolera fluctuaciones de temperatura de 24 a 31 °C, salinidades ligeramente reducidas por escorrentía y niveles de luz moderados; por ello se instala a menudo en paredes verticales, bajo salientes, sobre cascotes de coral muerto y en superficies colonizadas por tapices de algas calcáreas, donde la competencia con Acropora es menor. En zonas de fuerte oleaje queda relegada a grietas y caras protegidas. Esta plasticidad explica su rusticidad en cautividad: es una especie de arrecife «tolerante», no una especie de aguas oligotróficas cristalinas.

Para el acuario se traduce en una ubicación de compromiso: tercio medio del tanque, con PAR de 150–250 µmol·m⁻²·s⁻¹ (admite hasta 350 si la aclimatación es lenta) y flujo medio, turbulento y aleatorio, con renovación de 15–25 veces el volumen por hora sin impacto directo y laminar sobre el tejido. Parámetros de referencia: temperatura 25–27 °C, salinidad 35 g/L, alcalinidad 7,5–8,5 dKH, calcio 420–450 mg/L, magnesio 1300–1350 mg/L, nitrato 2–10 mg/L y fosfato 0,03–0,10 mg/L. La colonia debe fijarse con adhesivo epoxi sobre roca estable: al crecer en placas finas, las esquirlas mal pegadas se desprenden y acaban sepultadas en la arena, donde la necrosis por asfixia es rápida. Deja 5–8 cm de margen frente a zoántidos y algas filamentosas, sus competidores más problemáticos en cultivo.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Montipora tuberculosa (Lamarck, 1816) es un acropórido de morfología engañosa: rara vez desarrolla ramas erectas y casi nunca se reconoce por su silueta. La colonia tipo es incrustante, con contorno irregular que avanza sobre la roca, y en su zona central —más antigua— desarrolla nódulos y crestas bajas de 3–10 mm de altura que le dan el epíteto específico. En colonias viejas y bien iluminadas esos nódulos se fusionan y forman una superficie multilobulada, gruesa, que puede levantar 2–3 cm sobre el sustrato sin llegar a constituir una rama verdadera.

El rasgo diagnóstico está en el coenosteo: está cubierto de papilas y túberas finas, de 0,2–0,5 mm, que producen una textura de «papel de lija grueso», perfectamente palpable en la zona muerta o en el borde seco de un frag. Los coralitos son pequeños (0,6–1,0 mm de diámetro), inmersos, con 6–12 septos rudimentarios y sin murallas elevadas ni costas marcadas; a simple vista se distinguen mal, y solo con lupa se aprecia que no forman un reticulado cerrado como en M. undata o M. nodosa. Confusiones habituales: M. incrassata (nódulos más gruesos y coralitos mayores) y M. nodosa (papilas del coenosteo más gruesas y espaciadas).

La coloración es variable y no diagnóstica: marrones verdosos, crema, morado oscuro y, en morfos de acuario bien estabilizados, azul cobalto o verde metálico con centros de coralito pálidos. El color lo definen dos componentes: la densidad de zooxantelas (aporta el tono pardo) y las proteínas fluorescentes del coenosteo (aportan cian, verde y a veces rosa en los bordes). El margen de crecimiento muestra siempre una franja pálida de 1–2 mm, blanquecina o azulada, que es el indicador más fiable de que la colonia crece.

Los pólipos miden 1–2 mm, con tentáculos cortos y gruesos; se expanden de noche y en las primeras horas de iluminación, y permanecen retraídos en la mayor parte del fotoperiodo. El tejido es fino (1–2 mm sobre el esqueleto) y muy friable: un roce con la mano o el imán de algas deja una línea de necrosis que en 48 h puede avanzar varios centímetros. Aloja dinoflagelados del género Cladocopium, con poblaciones estables y escasa plasticidad de cambio de clado, lo que explica su recuperación lenta tras un blanqueamiento: la colonia puede mantener color pardo durante semanas y perderlo de golpe si la temperatura sube de 28,5 °C.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Luz. Es una especie de arrecife somero —crestas y parte alta del talud—, por lo que soporta PAR alto, pero las colonias de acuario proceden casi siempre de entornos con 150–250 µmol·m⁻²·s⁻¹ y se queman con facilidad si se suben de golpe. Aclimatación correcta: empezar al 50–60 % de la intensidad final y subir un 10 % semanal durante 5–6 semanas. Un morfo azul mantenido a PAR bajo se vuelve marrón en 3–4 semanas; el mismo morfo a 350 µmol·m⁻²·s⁻¹ y NO₃ en 2–3 mg/L recupera el azul en 6–8 semanas. Espectro: 380–480 nm y 420 nm de fluorescencia son los que más rentabiliza; el exceso de rojo (600–700 nm) solo calienta el tejido.

Flujo. Necesita movimiento fuerte pero no unidireccional: dos bombas cruzadas con control aleatorio, de modo que el agua barra las túberas y no deje sedimento en las depresiones. Las colonias incrustantes acumulan detrito en la base y en el espacio entre nódulos; ahí empieza la necrosis por asfixia bacteriana. Señal de flujo insuficiente: la franja de crecimiento se engrosa y palidece, y aparecen hilos de moco con detrito sobre la superficie.

Estabilidad. El KH es el factor que más colonias mata: una caída de 2 dKH en 24 h produce recesión basal (tejido que se despega dejando esqueleto blanco) en 3–5 días. Mantén Ca/KH con dosificación continua (peristáltica) antes que con aditivos manuales, y nitrato y fosfato en proporción (~100:1). Es más tolerante a nutrientes que Acropora, lo que lo convierte en un SPS de entrada sólido, pero no en un coral para sistemas con NO₃ sostenido por encima de 15 mg/L.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocación. Sobre roca viva, nunca sobre arena ni en contacto con el cristal. Al ser incrustante, avanza horizontalmente y ahoga lo que encuentra: deja 5–10 cm de roca libre en todo el perímetro, o colócalo en una roca aislada que puedas controlar. Evita fisuras donde se acumule detrito y zonas de sombra bajo salientes. Posición recomendada: tercio medio-alto, 20–30 cm bajo la superficie con LED de 250–350 µmol·m⁻²·s⁻¹. No lo pongas en contacto con Acropora ni con LPS agresivos (Hydnophora, Galaxea): pierde tanto por competencia de mesenterios como por sombreado.

Crecimiento. En condiciones óptimas expande 5–12 mm de radio al mes por el margen pálido; los primeros nódulos aparecen a los 3–6 meses y la colonia se engrosa a partir del año. Una placa de 3 cm puede cubrir 20–30 cm de roca en 18–24 meses. El crecimiento es más rápido en la horizontal que en la vertical, y se acelera con KH estable en 8,0 dKH, Ca 430 mg/L y alimentación indirecta de fitoplancton de 5–20 µm dos veces por semana (no es imprescindible, pero mejora la densidad de tejido).

Fragmentación. Usa cizalla de hueso o Dremel con disco de diamante; corta fragmentos de 2–3 cm que incluyan nódulos y, a ser posible, una porción de margen de crecimiento. El tej

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

Identifícala antes de comprarla. Montipora tuberculosa (Ehrenberg, 1834), descrita originalmente como Porites tuberculosa, forma colonias incrustantes que con el tiempo desarrollan lóbulos laminares horizontales, nunca ramas verticales digitadas. Su rasgo diagnóstico es la presencia de tubérculos cónicos de 0,3–0,6 mm dispersos por el coenosteo entre coralitos inmersos de apenas 0,6–0,9 mm de diámetro. Con una lupa de 10× y la luz apagada salta la diferencia frente a M. capricornis o M. danae, con las que se confunde sistemáticamente en el comercio bajo la etiqueta genérica de «Montipora placa». Rechaza cualquier fragmento con borde blanco en retroceso o con mordiscos circulares de 1–2 mm: son signos de depredación activa, no de aclimatación.

• Estabilidad de la alcalinidad por encima de todo. Las Montipora encrustantes toleran peor la deriva de KH que la mayoría de Acropora. Fija el objetivo en 7,8–8,3 dKH con una variación máxima de 0,3 dKH al día. Si empleas reactor de calcio, añade una bomba peristáltica de respaldo y verifica con ICP trimestral: los desajustes de magnesio precipitan carbonato en la cara superior de la lámina y abren necrosis focal.
• No la sometas a nutrientes ultrabajos. Con NO₃ por debajo de 0,5 mg/L se decolora a beis pálido en dos o tres semanas y su tasa de crecimiento se hunde. Rango operativo: NO₃ 2–5 mg/L, PO₄ 0,03–0,06 mg/L. Es un coral fundamentalmente autótrofo, pero absorbe DOM y bacterias; una dosis semanal de aminoácidos y fitoplancton de 5–20 µm mantiene el color púrpura o verdoso característico.
• Flujo turbulento y alternante de 25–35 veces el volumen del tanque por hora. La cara superior de las placas retiene detrito con facilidad; la sedimentación crónica es la primera causa de necrosis lineal en esta especie. Orienta dos bombas enfrentadas con controlador de oleaje.
• Iluminación de 250–400 µmol/m²/s de PAR, fotoperíodo de 10–12 h y aclimatación de tres semanas al 40 % de la intensidad final. En la naturaleza coloniza arrecifes someros y planicies de arrecife entre 0 y 15 m, así que tolera luz alta, pero no el salto brusco desde un tanque con lámparas fluorescentes.
• Busca el nudibranquio Phestilla sp. en la cara inferior. Está camuflado con el color exacto del coral y pasa desapercibido. Ilumina con linterna al apagar las luces y revisa el reverso de cada placa. Sus puestas, en espiral blanquecina, eclosionan en 7–10 días: aplica tres baños de iodo (15 min, dosis de etiqueta) separados por una semana, no uno solo. Aspira los platelmintos asociados con pipeta de 5 mL.
• Propagación. Corta con sierra de banda fragmentos de 2–3 cm tomados de la periferia con tejido sano, sin incluir jamás el margen blanco de crecimiento. Fija con cianoacrilato en gel sobre esquirla de roca viva y mantén en zona de flujo moderado: la adhesión completa tarda 15–25 días. Su extensión lineal ronda 2–4 mm al mes, bastante más lenta que M. capricornis.
• Distancia de seguridad. Su crecimiento incrustante invade roca y asfixia zoántidos y pequeños LPS. Deja 10–15 cm frente a Hydnophora, Galaxea y Euphyllia, cuyos tentáculos barredores superan los 10 cm.
• Cuarentena de 30 días en tanque separado con luz moderada antes de introducirla en el sistema principal. Es la única medida realmente eficaz contra el nudibranquio y los platelmintos.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

El calendario asume un acuario de arrecife mixto con control de temperatura y ósmosis con rellenador automático. Las labores marcadas como críticas no son aplazables: en M. tuberculosa una sola semana de descuido en verano puede costar la colonia entera.

Registra cada medición en una libreta o aplicación: la serie temporal de dKH y temperatura explica el 90 % de las necrosis que verás en esta especie. Un cambio del 30 % de agua con dos grados de diferencia térmica basta para desencadenar un desprendimiento de tejido en 24 horas.

12. ✅ CONCLUSIÓN

Montipora tuberculosa es un SPS excelente para quien ya domina la estabilidad química y busca una especie incrustante de perfil bajo, pero castiga la improvisación más que otras Montipora. Su éxito se reduce a cuatro variables: alcalinidad con deriva inferior a 0,3 dKH/día, temperatura contenida por debajo de 26,5 °C, nutrientes en rango mesotrófico (NO₃ 2–5 mg/L) y flujo turbulento que impida la sedimentación sobre la lámina. Añade una cuarentena rigurosa y tres baños de iodo espaciados para romper el ciclo del nudibranquio Phestilla, y tendrás una colonia que en dos años cubrirá varios decímetros cuadrados de roca con su textura tuberculada. La recompensa no es el crecimiento rápido —no lo es— sino la solidez de una pieza que, bien asentada, sobrevive a la mayoría de los errores que sí matarían a una Acropora.

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

Montipora tuberculosa no responde a parámetros aislados, sino a su acoplamiento. El eje carbonato es el crítico: mantén KH entre 7,5 y 8,5 dKH, Ca 420-440 mg/L y Mg 1320-1350 mg/L, porque un magnesio por debajo de 1250 mg/L precipita carbonato y desestabiliza el KH aparente. Una deriva superior a 0,5 dKH en 24 h produce necrosis basal en colonias encrustantes, casi siempre en la cara inferior y no en la superficie iluminada. Vincula la alcalinidad al pH medido a la misma hora: lecturas de 7,9-8,0 con KH alto delatan exceso de CO₂ ambiental, no déficit de carbonatos, y añadir buffer solo acelera la precipitación. En nutrientes tolera NO₃ 5-15 mg/L y PO₄ 0,05-0,10 mg/L con coloración más parda pero crecimiento acelerado; con NO₃ inferior a 2 mg/L y K por debajo de 380 mg/L aparece palidez en los tubérculos. Mantén 35 ppt con refractómetro calibrado, ya que un error de 1,5 ppt altera el KH efectivo cerca de un 3 %.

En contacto directo, M. tuberculosa cede casi siempre: carece de tentáculos barredores y sus filamentos mesentéricos son poco agresivos, con digestión extracoelentérica lenta. Pierde frente a Galaxea, Hydnophora, Euphyllia y contra Acropora de crecimiento rápido que la sombrean y la necrosan en el borde de contacto. El riesgo real es alopático e invisible: Sarcophyton, Sinularia y Lobophytum liberan terpenos que inhiben la calcificación a distancia, y las colonias de Zoanthus aportan palitoxina que reduce la extensión de pólipos días antes de cualquier lesión. Dos morfotipos distintos de Montipora en el mismo sistema generan zonas de guerra con necrosis lineal recurrente. Corrige con carbón activado a 100-150 g/1000 L renovado cada 3-4 semanas, ozono suave con ORP 300-350 mV y separación física mínima de 8-10 cm. No interpretes la ausencia de lesión como ausencia de competencia: mide el avance marginal mensual sobre la roca; menos de 0,5 mm/mes con química correcta indica presión química.

M. tuberculosa tolera rangos amplios de luz y flujo, pero responde mal a las transiciones bruscas. En iluminación, el intervalo útil es PAR 150-400 µmol/m²/s; por encima de 450 los tubérculos se retraen y aparecen bandas pálidas orientadas a la fuente, mientras que por debajo de 100 el tejido persiste pero pierde pigmento y capacidad de calcificar. Al estrenar LED, sube un 10-15 % de PAR por semana partiendo de lectura real con PARmetro, nunca de la potencia nominal del aparato. En flujo necesita movimiento turbulento y alternante, 25-35 renovaciones/hora con inversión de dirección cada 6-8 h; el laminar continuo erosiona el borde de crecimiento y el insuficiente acumula detritus bajo las placas, disparando cianobacterias y necrosis basal. Como forma placas que se auto-sombrean, dirige una bomba al espacio subyacente. Tras cada cambio, espera 10-14 días antes de valorar: el color va retrasado respecto a la extensión de pólipos.

El error diagnóstico más frecuente es atribuir a la química lo que es depredación críptica. Phestilla melanobrachia y P. subodiosa imitan el color del coral y se confunden con pólipos retraídos, dejando trazas de tejido blanco en media luna. Un baño de Lugol a 40 mg/L durante 8-10 minutos y revisión con lupa de los bordes cada 3 días durante 6 semanas es obligatorio: los huevos sobreviven al baño. Otras causas poco habituales: fusión fallida entre dos colonias de genotipo distinto, que genera una línea necrótica que avanza 1-2 mm/día y exige separación con dremel; reacción al cianoacrilato en el punto de pegado, con retroceso de 3-5 mm que se detiene solo; bailout de pólipos tras shock osmótico o térmico; y esponjas perforadoras del género Cliona, visibles como puntos oscuros internos. Ante necrosis sin causa clara, revisa primero temperatura nocturna y picos de KH, después fauna críptica, y solo entonces ajusta química.

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

M. tuberculosa calcifica con un coenosarcio muy fino sobre la trabécula, y eso hace que su demanda de carbonato sea desproporcionada respecto a su biomasa: en un cultivo activo puede consumir 1,5–2 dKH/día con Ca de apenas 15–20 ppm/día, lo que rompe el equilibrio iónico si dosificas CaCl₂ y NaHCO₃ por separado. Mantén KH 7,0–7,8 dKH, Ca 420–440 ppm, Mg 1320–1380 ppm y K 390–410 ppm; por encima de 9 dKH y con NO₃ <2 ppm aparece necrosis marginal en las placas jóvenes, un patrón muy característico de esta especie. Tolera nutrientes que comprometerían a un acropórido: NO₃ 5–15 ppm y PO₄ 0,05–0,12 ppm son compatibles con coloración estable si el yodo se mantiene detectable (0,03–0,06 ppm) y el estroncio no se dispara. Verifica salinidad 35,0 ±0,5 con refractómetro calibrado; una desviación de una unidad altera la relación alcalinidad-calcio lo suficiente para detener el borde de placa durante semanas.

En competencia química, M. tuberculosa es una estratega r: coloniza rápido sustrato muerto y gana por ocupación, no por agresión. No posee filamentos barrenderos eficaces y cede terreno ante Galaxea, Lobophyllia o Euphyllia, cuyos filamentos mesentéricos digieren su coenosarcio en 24–48 h. El riesgo real en acuario proviene de los aleloquímicos de octocorales: Sarcophyton, Sinularia y Briareum liberan terpenos que inhiben su calcificación y provocan decoloración difusa antes de cualquier necrosis visible. Palythoa y Zoanthus la sobrecrecen físicamente y además acidifican el microambiente. Si mantienes mixto, interpone 15–20 cm de roca viva y carbón activado a 0,5–1 ml/L renovado cada 15 días; el ozono aporta poco frente a terpenos y el carbón es más eficaz. En sistemas con muchos blandos, la señal de alarma es un borde de placa pálido y sin crecimiento: antes de culpar a la luz, cambia el carbón y observa 10 días.

Su respuesta a la luz está mediada por la densidad de zooxantelas y por la pigmentación de las tuberculae. Ante un cambio de 150 a 350 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR) la colonia aclimata en 18–25 días: primero se aclara el centro, luego aparecen tonos verdes o rosados en las crestas y el borde retoma crecimiento. Un descenso brusco a <100 µmol dispara la densidad de clorofila a y la colonia se vuelve marrón oscura en 3–4 semanas sin que exista patología. El flujo ideal es turbulento moderado, 15–25 cm·s⁻¹ con alternancia; por debajo de 8 cm·s⁻¹ el detritus se deposita sobre la placa y genera necrosis bajo el sedimento, mientras que una corriente laminar directa superior a 40 cm·s⁻¹ erosiona el coenosarcio de las tuberculae expuestas. Inclina la placa 30–45° respecto al flujo para evitar acumulación y favorecer el intercambio de gases en la cara inferior, la primera en receder.

Cuando todos los parámetros están en rango y la colonia sigue perdiendo tejido, sospecha de causas poco frecuentes. El nudibranquio depredador de Montipora (Phestilla sp.) mide 2–4 mm, es translúcido y mimético; deja cicatrices blancas de contorno irregular y se refugia en la cara inferior de la placa: inspecciona con lupa tras apagar la luz y aspira los ejemplares. La esponja perforante Cliona, excavada en el esqueleto, explica placas que se desprenden o agrietan sin causa aparente; retira la zona afectada, porque el daño estructural no se recupera. Los vermétidos próximos generan hilos de moco que necrosan puntos concretos del borde. En ICP, valores de estaño superiores a 2–3 µg/L producen necrosis en Montipora con independencia del resto de parámetros: revisa bombas y tuberías de plástico reciclado. Un baño de yodo a 12,5 mg/L durante 8–10 min con movimiento fuerte elimina adultos, no huevos: repite a los 7 y 14 días.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Cómo distingo Montipora tuberculosa de otras montíporas del comercio?

Descrita por Lamarck en 1816, forma colonias incrustantes que desarrollan bordes laminares cuando disponen de roca libre y luz. Su rasgo diagnóstico son las verrugas cónicas (túberculos) de 0,5–1,5 mm distribuidas de forma irregular sobre un coenosteo reticulado, con coralitos inmersos de menos de 1 mm de diámetro y sin columela. En acuario se reconoce como una costra nudosa marrón, crema o verde, con pólipos pequeños que se extienden sobre todo de noche. Separarla de M. danae o M. confusa exige examinar el esqueleto; en el mercado se etiquetan indistintamente.

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