Stylaster sanguineus

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Stylaster sanguineus no es un coral pétreo. Aunque el comercio lo etiqueta como «SPS» —y lo tratamos aquí dentro de esa categoría por comparación operativa de cuidados—, es un hidrocoral: un hidrozoo colonial (clase Hydrozoa) que secreta un esqueleto de aragonito independiente del de los Scleractinia. Esta distinción no es un tecnicismo: explica por qué la mayoría de ejemplares mueren en acuario en tres o cuatro meses pese a parámetros químicos impecables.

La colonia es pequeña, de 3 a 10 cm, con morfología variable —incrustante, ramificada o flabeliforme— y coloración rojo carmín a rosado-anaranjado, a veces con ápices blancos. Toda la superficie está tapizada de ciclosistemas de 0,4–0,8 mm de diámetro: un poro central (gastrozoide) rodeado por 5–9 poros de dactilozooides. Los dactilozooides carecen de boca, portan nematocistos y son los responsables de capturar presas y de la defensa territorial; los gastrozooides digieren. En ramas maduras aparecen ampollas hemisféricas de 0,5–1 mm, cámaras de incubación donde se desarrollan las planulas.

El punto crítico: S. sanguineus es azooxantelado. No alberga Symbiodiniaceae, no fotosintetiza y obtiene el 100 % de su energía del plancton. La luz, por tanto, no solo es innecesaria sino contraproducente: favorece la película algal sobre un esqueleto que no puede defenderse con tejido fotoprotector. En la práctica, la causa número uno de pérdida es la inanición, con recesión de tejido desde la base y exposición del coenostemo blanco; la segunda es el enterramiento por sedimentos y algas; la tercera, temperaturas sostenidas por encima de 26 °C.

Su tenencia está además regulada: toda la familia Stylasteridae figura en el Apéndice II de CITES, por lo que debe adquirirse con documentación de origen legal.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

La identificación a nivel específico dentro de Stylaster exige caracteres que no se ven a ojo desnudo: número y disposición de dactiloporoes por ciclosistema, forma del estilo central, posición de las ampollas (superficiales o inmersas) y ornamentación del coenostemo, a menudo con microscopía electrónica. El material del comercio se asigna rutinariamente a S. sanguineus sin comparación con material tipo, y es muy probable que bajo ese nombre circulen varias especies —o incluso un complejo— del Indo-Pacífico. Para el acuarista esto tiene una consecuencia práctica: la tolerancia térmica y el tamaño de presa pueden variar entre lotes, así que conviene ajustar por observación y no por ficha cerrada.

Dentro de la familia, Stylaster se distingue por ciclosistemas completos y simétricos sobre un coenostemo reticulado, frente a los poros alineados en hileras de Distichopora o el esqueleto masivo con poros de dos calibres de Millepora.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

El material asignado a esta especie procede del Indo-Pacífico central y occidental: Indonesia, Filipinas, Papúa y archipiélagos del Índico. Es un habitante críptico: aparece en paredes verticales, techos de cuevas, caras inferiores de cornisas y flancos profundos sombreados, típicamente entre 5 y 40 m, con mayor densidad por debajo de los 15 m, donde la irradiancia queda por debajo del 10 % de la superficial. Nunca se le encuentra en cresta arrecifal expuesta al sol.

El sustrato preferente es roca desnuda, esqueleto muerto de coral y bases de gorgonias, siempre en zonas barridas por corriente. Es un filtrador pasivo de flujo laminar a turbulento (del orden de 10–20 cm/s): orienta los ciclosistemas perpendicularmente al vector de corriente para maximizar el encuentro con copépodos, larvas y material en suspensión. En el arrecife ocupa microhábitats con baja competencia, porque pierde sistemáticamente frente a algas filamentosas, esponjas incrustantes y briozoos: necesita superficies libres o fauna que controle el crecimiento algal.

Traslación al acuario, derivada de lo anterior:

• Luz: zona sombreada o gruta artificial, inferior a 50 PAR; cualquier exposición directa a LED de arrecife acelera la colonización algal del coenostemo.
• Flujo: fuerte pero no laminar concentrado; dos bombas cruzadas con vaivén, sin apuntar directamente a la colonia (evita desgarro de tejido y acumulación de detritus en las ampollas).
• Temperatura: 22–24 °C; no mantener por encima de 26 °C de forma sostenida. Salinidad 34–35, alcalinidad 7–9 dKH, Ca 400–450 ppm, Mg 1250–1350 ppm, NO₃ < 5 ppm, PO₄ < 0,05 ppm.
• Alimentación (obligatoria): 3–5 veces por semana, de noche o con luz apagada, cuando los dactilozooides están extendidos. Partículas de 0,2–1 mm: nauplios de Artemia recién eclosionados, copépodos (Tisbe, Tigriopus), rotíferos enriquecidos y cíclope congelado. Alimentación dirigida con pipeta y skimmer apagado 30–45 minutos; la alimentación «al bote» no le llega.
• Manejo: no exponer al aire, no cepillar el esqueleto, no ubicar en zonas de sedimento fino. Revisar semanalmente la base: una línea blanca de esqueleto desnudo indica inanición incipiente.

Es, en definitiva, una especie apta para acuarios de azooxantelados con rutina de alimentación estricta, no para un arrecife mixto de altas luces.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Advertencia taxonómica imprescindible: Stylaster sanguineus no es un coral escleractinio. Pertenece a Cnidaria > Hydrozoa > Anthoathecata > Filifera > Stylasteridae. Es, por tanto, un hidrocoral: un hidrozoo colonial con esqueleto calcáreo. La etiqueta comercial «SPS» solo describe su esqueleto pequeño y rígido, no su biología. Esto no es un detalle académico: implica que carece por completo de zooxanthellae y que su fisiología, alimentación y tolerancia a la luz difieren radicalmente de un Acropora o un Seriatopora.

Arquitectura colonial. Forma colonias ramificadas o incrustantes de 5-15 cm, con ramas de 2-5 mm de diámetro, sección redondeada y ápices romos (nunca afilados como en Distichopora). La superficie del cenesteo está cubierta por un retículo de crestas espinulosas y gránulos que le da un aspecto de encaje o filigrana. Las colonias del Indo-Pacífico llegan con frecuencia como captura accidental sobre roca viva; su color rojo sangre-anaranjado, que da nombre a la especie, procede de pigmentos del cenesteo y del tejido, no de simbiontes.

Ciclosistema: la unidad estructural diagnóstica. En el centro hay un gastróporo (0,3-0,5 mm) que aloja un gastrozooide nutridor, con una espina central o gastrostyle en su interior. Alrededor, un anillo de 5-9 dactilóporos aloja dactilozooides defensivos, sin boca, provistos de nematocistos y de finos tentáculos filiformes que la colonia extiende para capturar presas y defenderse. Entre ciclosistemas aparecen diastemas (hendiduras) y, de forma estacional, ampollas reproductivas que abomban el cenesteo. Esta disposición anular distingue a Stylaster de Distichopora (poros alineados en hileras a lo largo de las ramas) y de Millepora (hidrocoral zooxantelado, con ciclosistemas más pequeños y crecimiento en láminas o ramas aplanadas y claras).

Esqueleto: aragonito con zonas de calcita magnesiana, extraordinariamente frágil frente a la abrasión. No soporta el pisoteo de caracoles grandes ni el roce de peces que pastan. Los pólipos se retraen dentro de los poros cuando se estresan, de modo que una colonia «lisa» puede estar viva y una blanca y erizada puede estar muerta: comprueba siempre la retracción activa y la presencia de tentáculos al alimentar.

Nutrición: heterótrofa obligada. Sin zooxanthellae, toda su energía procede de la captura de partículas de 50-500 µm (rotíferos, nauplios de copépodo, ciclops congelado, huevos de ostra). Su tasa metabólica es alta y la inanición es la causa principal de mortalidad en acuario: una colonia sin alimentación continuada degenera en 4-10 semanas, perdiendo tejido desde las bases.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Matices de iluminación y flujo. En la naturaleza ocupa paredes verticales, extraplomos y techos de cuevas, donde la luz es escasa pero la renovación de agua es constante. En acuario, colócalo en zonas con sombra estructural y fotoperiodo irrelevante (6-8 h de luz ambiental es suficiente). El flujo debe renovar el agua entre las ramas sin doblarlas: un flujo insuficiente permite la sedimentación y la necrosis basal; uno demasiado directo impide la extensión de los dactilozooides y bloquea la captura.

Alimentación (el factor limitante). Cuatro a seis tomas diarias de alimento fino, con bomba y skimmer parados 20-30 minutos. Mezcla rotíferos, nauplios de Artemia, copépodos y ciclops de 0,2-0,5 mm; el fitoplancton solo no lo sostiene. Aplica con pipeta o goteo dirigido a contracorriente, nunca en bolus concentrado sobre la colonia.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocación. Fija la colonia con cianoacrilato en gel sobre una base de roca rugosa, en pared vertical o bajo un extraplomo, con la superficie de poros orientada al flujo. Evita la arena (abrasión y sedimentación) y el contacto con LPS de tentáculos largos, Euphyllia, anémonas y Millepora: sus nematocistos son potentes para su tamaño y, a la vez, su cenesteo fino se necrosa con facilidad ante el roce de corales agresivos. Mantenlo lejos de peces que picotean estructuras finas (Centropyge, algunos Chaetodon).

Crecimiento. Lento: 0,5-2 cm anuales en ramas, tras una fase inicial de expansión incrustante del cenesteo sobre la roca. La calcificación depende de la estabilidad de KH y magnesio, no de la luz. Las ampollas reproductivas aparecen en ciclos y su presencia indica colonia bien alimentada. Vigila la aparición de algas filamentosas en la base: son el primer signo de flujo insuficiente.

Fragging. Procedimiento delicado y con mortalidad apreciable. Usa cortaperros de hueso o Dremel con disco de diamante a baja velocidad y refrigeración con agua del acuario; corta secciones de al menos 2-3 cm con ápice y varios ciclosistemas completos. Seca solo la base de corte, aplica gel de cianoacrilato y presiona 20-30 segundos fuera del agua; sella la unión con un cordón fino de masilla epoxi. No sumerjas el fragmento en baños de yodo o productos agresivos: el tejido hidrozoario es muy sensible. Curación en 2-4 semanas en la misma zona sombreada y con flujo alto; descarta bajas de rendimiento si el fragmento blanquea desde el corte.

Parásitos y mantenimiento. Revisa el cenesteo en busca del gasterópodo ovúlido Pedicularia, ectoparásito específico de estilastéridos que devora tejido y deja zonas blanquecinas, y de pólipos competidores y esponjas incrustantes en la base. Retíralos manualmente con pinzas. Con alimentación pluridiaria, sombra, flujo alto y química estable, la colonia se mantiene años; sin ese régimen, la esperanza realista en acuario rara vez supera los 6-12 meses.

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Antes de valorar la compatibilidad hay que corregir una premisa habitual: Stylaster sanguineus (Valenciennes, 1856) no es un SPS escleractinio, sino un hidrocoral de la familia Stylasteridae (Hydrozoa), azooxantelado y de aguas frías a templadas. Sus ramas calcáreas, de apenas 2–4 mm de diámetro y esqueleto muy poroso, son extremadamente frágiles, y su defensa —los dactilozoides con cnidocitos— es mucho más débil que la de un Acropora. Por eso la mayoría de los fracasos en acuario son mecánicos o alimentarios, no de agresión química. Su mantenimiento realista es en tanque monoespecífico o en un sistema NPS/azooxantelado dedicado.

Peces incompatibles. Cualquier pez que picotee tejido blando lo destruye en días: Oxymonacanthus longirostris (consumidor obligado de pólipos), los Chaetodon corallívoros (C. ornatissimus, C. meyeri, C. larvatus) y los grandes Pomacanthus. Los balístidos, tetraodóntidos, ostrácidos y escáridos no lo comen, pero lo trituran al morder la roca o al ramonear algas. Los peces que se posan son un riesgo silencioso: Cirrhitichthys oxycephalus, blénidos grandes y gobios del género Gobiodon rompen ramas al apoyarse o al buscar refugio entre ellas. También los lábridos grandes (Coris, Cheilinus) y los cirujanos al moverse en cardumen. Un caso específico y poco citado: los caballitos de mar (Hippocampus) usan la cola prensil y parten las ramas al anclarse; nunca deben compartir tanque.

Peces compatibles. Microdepredadores tranquilos que ocupan la columna de agua y no interactúan con el sustrato: apogónidos (Ostorhinchus, Zoramia), Liopropoma, Assessor, Serranocirrhitus latus, Nemateleotris y gobios pequeños de roca. Todos ellos, sin embargo, elevan la carga de alimentación: compiten por el mismo plancton fino que el hidrocoral.

Invertebrados. Erradica cangrejos (incluidos Mithraculus y Percnon) y ermitaños (Calcinus, Clibanarius): aplastan y arrancan ramas al desplazarse. Las anémonas errantes (Entacmaea quadricolor, Macrodactyla doreensis) matan por contacto. Los corales blandos —Sinularia, Sarcophyton, Lobophytum, Briareum— lo dañan por alelopatía y crecimiento, y zoántidos y Palythoa lo cubren en semanas. Los tentáculos barredores de Galaxea o Euphyllia arrasan una colonia en una noche. Los suspensívoros azooxantelados (Dendronephthya, gorgonias NPS, sabélidos, crinoideos) son competidores directos por alimento particulado. Los camarones limpiadores (Lysmata) son inocuos pero roban comida; Stenopus es territorial y puede desgarrar tejido. Los erizos (Diadema) raspan el cenosarco al pastorear.

8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES

Pérdida de tejido («blanqueamiento»). En una especie sin zooxantelas no existe blanqueamiento por expulsión de simbiontes. Lo que se observa es recesión del cenosarco: el tejido rosado-rojizo se retrae y deja el esqueleto blanco y desnudo. Causas típicas, en orden de frecuencia: inanición, sedimentación y flujo insuficiente. La recesión avanza desde la base hacia las puntas si el problema es de alimento, y desde las puntas hacia la base si es de corriente o de estrés térmico.

Inanición. Es la primera causa de muerte en acuario. S. sanguineus captura presas de 50–500 µm (nauplios de Artemia, copépodos harpacticoideos, rotíferos enriquecidos, plancton marino congelado) y necesita alimento varias veces al día con el sistema de circulación detenido. Un coral que no muestra dactilozoides extendidos durante la alimentación está ya en déficit energético.

Necrosis rápida (RTN) y podredumbre bacteriana. Menos frecuente que en escleractinios, pero letal: tras una fractura, una mala captura o una acumulación de materia orgánica, el tejido se vuelve marrón-grisáceo y se desprende en jirones en 24–48 h. Es una infección bacteriana oportunista

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

Antes de nada: no es un escleractinio. Aunque el comercio lo etiqueta como «SPS duro», Stylaster sanguineus es un hidrocoral del orden Anthoathecata (familia Stylasteridae). Su esqueleto es aragonítico, pero su organización es dimórfica: gastróporos (pólipos tróficos) y dactilóporos (defensivos) perforan un cenosteum de superficie finamente reticulada. Esto explica por qué reacciona de forma distinta a cualquier Acropora: no tiene zooxantelas, no tolera la exposición al aire y su metabolismo depende exclusivamente de la captura de plancton.

• Cero exposición al aire. Los gastróporos abiertos retienen burbujas que obstruyen la captura de alimento y provocan necrosis local en 48-72 h. Traslada siempre la colonia sumergida en un recipiente, nunca «escurrida» sobre papel de periódico.
• Diferenciación rápida en la tienda. Distichopora —el género con el que más se confunde— muestra los poros alineados en hileras sobre ramas aplanadas; Stylaster los distribuye de forma difusa por toda la circunferencia de la rama. Si los poros forman peines, no es tu especie.
• Tamaño de partícula crítico. Captura preferentemente presas de 50-200 µm. Lo que funciona de forma comprobada: nauplios de copépodo (Tisbe, Apocyclops), rotífero enriquecido con Selco, huevos de langosta congelados y caldo de mysis tamizado. Las mezclas comerciales tipo «polvo de coral» con granulometría <30 µm son prácticamente ignoradas.
• Flujo intermedio-alto y no laminar. Necesita renovación constante para que el plancton impacte en los poros, pero el chorro directo de una bomba de 10.000 l/h desgarra el cenosteum. Objetivo: 15-20 cm/s de velocidad media con movimiento alterno; colócalo en la salida de un giro de corriente, no en frente de la tobera.
• Luz muy baja. PAR 20-50 µmol/m²/s, en zona de sombra o cueva artificial. Con más de 80 µmol/m²/s aparecen colonias de algas filamentosas en las ramas muertas y el hidrocoral se retrae de forma permanente.
• Temperatura de agua fría. Rango 20-23 °C, con pico máximo tolerado de 24,5 °C y nunca sostenido. Es un animal de talud profundo: 26 °C durante cuatro días suele desencadenar necrosis apical irreversible.
• Vigila Pedicularia. Los caracoles ovúlidos del género Pedicularia son ectoparásitos obligados de estilastéridos: se camuflan como ampollas del propio coral. Revisa con lupa cada 3-4 semanas, especialmente la base y las axilas de las ramas.
• Nutrientes contenidos pero no estériles. NO₃ 2-5 mg/l y PO₄ 0,02-0,05 mg/l. El conflicto es real: alimentar mucho eleva los nutrientes, así que necesitas exportación agresiva (skimmer sobredimensionado, resinas, refugio de macroalgas) para poder mantener 3-4 tomas diarias.
• Química estable. KH 7-8 dKH, Ca 420-440 mg/l, Mg 1320-1350 mg/l, salinidad 34-35 g/l. La alcalinidad oscilante (>1 dKH de variación diaria) provoca puntas blanquecinas por detención del crecimiento.
• Fragmentación delicada. Las ramas se rompen con mirarlas. Corta con cizalla limpia un ápice de 2-3 cm, fíjalo con cianoacrilato en gel sobre roca viva curada y mantenlo en zona de flujo suave 10 días. No uses epoxi: el calor de curado daña el tejido.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

12. ✅ CONCLUSIÓN

Stylaster sanguineus es un animal de acuario de especialista, no un coral de arrecife mixto. Su éxito depende de tres condiciones no negociables: agua fría y estable (20-23 °C), alimentación de partículas finas varias veces al día y una zona de sombra con corriente alterna. Un sistema de arrecife convencional a 25-26 °C con iluminación potente lo mata en semanas, con independencia de la calidad del resto de parámetros.

Tampoco es un animal de «probar»: la supervivencia a 12 meses en un acuario doméstico ya es un indicador de manejo correcto, y la reproducción mediante ampollas —visible como abultamientos esféricos en las ramas— es la señal definitiva de que el hidrocoral está bien alimentado y estable. Si puedes ofrecerle un biotopo dedicado a azooxantelados, con cueva artificial, enfriador y cultivo propio de copépodos, tendrás una de las piezas más singulares de la afición marina. Si no, déjalo pasar: es escaso en el comercio, se recolecta con permiso en la mayoría de los países de origen y su fragilidad no admite ensayos.

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

El acoplamiento de Stylaster sanguineus debe hacerse sobre una línea base medida, no sobre los valores nominales del sistema donante. Trabaje en 34,5–35,0 ‰ (1.025–1.026), 23–24 °C, KH 7,5–8,0 dKH, Ca 410–430 mg/L, Mg 1280–1350 mg/L, NO₃ 2–5 mg/L y PO₄ < 0,03 mg/L; al ser un hidrocoral azooxantelado, su calcificación depende directamente de la saturación de aragonito y no de un aporte fotosintético, de modo que una caída de 0,7 dKH en 24 h provoca recesión de la coenosarca apical en 48–72 h. Aclimataré por goteo durante 120 minutos, igualando primero la temperatura con el recipiente cerrado, y trasvasando el coral con cuchara o con su propio fragmento de roca: nunca lo exponga al aire, porque las cámaras gastrovasculares retienen burbujas que desencadenan necrosis localizada. Registre a diario la densidad con refractómetro calibrado y evite cambios superiores a 1 ‰ o 0,3 dKH al día durante las dos primeras semanas.

La competencia química es probablemente la primera causa de pérdida silenciosa de esta especie. S. sanguineus no produce defensas alelopáticas potentes frente a Sinularia, Sarcophyton, Briareum o Palythoa; los terpenos y prostaglandinas liberados por octocorales próximos inducen retracción de los pólipos y exposición del esqueleto blanquecino, que en dos semanas se cubre de algas y cianobacterias. Instale carbón activado a razón de 250–300 mL por 100 L, renovado cada 14 días, y sitúe la colonia aguas arriba de cualquier blando en la trayectoria del flujo, con separación mínima de 15 cm respecto a zoantídeos y gorgonias. También compite mal contra hidrocorales del género Millepora y contra los tentáculos barredores de Euphyllia, cuyo alcance supera los 20 cm. Añada el factor trófico: en tanques con muchos filtradores rápidos el coral recibe una fracción mínima del alimento; alimente de forma dirigida con campana y bombas apagadas 20 minutos. Revise los hidroides epibiontes (Obelia, Hydractinia): llegan como polizones y compiten por espacio sin detectarse a simple vista.

Al ser azooxantelado, la luz no le aporta energía y actúa solo como factor de estrés: mantenga la colonia en un voladizo o zona sombreada con PAR inferior a 50 µmol/m²/s. Un incremento brusco de iluminación —por ejemplo, al pasar a una pantalla LED de mayor potencia— desencadena en 5–10 días una película de algas sobre el cenénquima y la retracción de los pólipos, con recesión que avanza de los ápices hacia la base. El flujo, en cambio, es imprescindible: 10–20 cm/s indirectos y alternantes, con turbulencia suficiente para que los pólipos capturen nauplios de Artemia y copépodos sin que la corriente deforme las ramas. Con flujo demasiado directo el mucus se acumula en las bifurcaciones y aparecen infecciones bacterianas focales. Si reduce el flujo bruscamente, la colonia responde con retracción total y sobreproducción de mucus; si lo aumenta de golpe tras cambiar una bomba, puede desprenderse tejido en las puntas finas. Use la extensión de los pólipos como indicador: es máxima con flujo suave y alimento en suspensión.

Los problemas raros en esta especie suelen ser crónicos más que agudos. La necrosis apical idiopática que aparece a los 3–4 meses se asocia casi siempre a Mg sostenidamente por debajo de 1200 mg/L o a DOC elevado por sobrealimentación; no aplique baños de yodo ni de agua dulce, que destruyen la coenosarca de forma irreversible, y en su lugar fragmente las puntas sanas, aumente el flujo y renueve el carbón. La fijación es otro punto crítico: la base del esqueleto es frágil y se despega del pegamento; adhiera la roca portadora, nunca las ramas directamente. Vigile la acumulación de detritus en la cara posterior si coloca la colonia en una oquedad demasiado cerrada, y evite cualquier tratamiento con cobre o fá

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Es Stylaster sanguineus realmente un SPS?

No. Aunque se vende y se cataloga junto a los SPS, Stylaster sanguineus Valenciennes, 1856 es un hidrozoo (clase Hydrozoa, orden Anthoathecata, familia Stylasteridae), no un escleractinio. Carece de zooxantelas, de septos, de columela y de verdaderos cálices: su esqueleto aragonítico está cubierto por un cenosarco continuo del que emergen ciclosistemas (un gastróporo central rodeado por una corona de dactilóporos). Esa arquitectura porosa, visible con lupa 10×, es el diagnóstico diferencial frente a cualquier coral pétreo con pólipos retraídos. La consecuencia práctica es que su mantenimiento se parece mucho más al de un azooxantelado filtrador de aguas frías que al de un Acropora: sin fotosíntesis simbionte, toda la energía debe entrar por la boca.

¿Por qué se muere de hambre en la mayoría de acuarios?

Porque es un depredador de plancton de 100–500 µm y casi nadie le da esa talla ni esa frecuencia. Los dactilozooides capturan la presa y la transfieren al gastrozoópo; el fitoplancton líquido y los polvos comerciales no cubren el aporte energético. Necesita 3–4 tomas diarias de rotífero (Brachionus), nauplios de Artemia recién eclosionados, copépodos (Tisbe, Apocyclops) o huevos de ostra. Señales de inanición: cenosarco retraído, poros cerrados, esqueleto desnudo y necrosis que avanza desde las puntas. Apaga bombas 10 minutos, alimenta por goteo y reactiva el flujo; mantén el skimmer, pero sin secarlo.

¿Qué iluminación, corriente y ubicación necesita?

Luz baja o nula: PAR por debajo de 50 µmol·m⁻²·s⁻¹, en cueva, extraplomo o pared vertical sombreada; cualquier iluminación directa solo alimenta algas sobre el cenosarco, que es su principal causa de muerte lenta en cautividad. Corriente turbulenta y moderada-alta (renovación de 15–20 veces el volumen/hora), nunca chorro laminar directo sobre la colonia. En la naturaleza vive entre 5 y más de 60 m en el Indo-Pacífico occidental (Indonesia, Filipinas, Papúa Nueva Guinea, Guam, Maldivas), siempre en sustrato vertical o techos. Colócalo en la zona baja del acuario, con espacio libre alrededor para que el flujo renueve el agua sin arrastrar detritos.

¿Qué parámetros químicos tolera?

Temperatura 22–24 °C (pico máximo 26 °C), densidad 1.025–1.026, pH 8,

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