Euphyllia divisa

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Euphyllia divisa (Veron & Pichon, 1980), reasignada en 2017 al género Fimbriaphyllia tras los análisis filogenéticos de Luzon y colaboradores, es un escleractinio colonial de esqueleto faceloide: cada pólipo secreta un coralito tubular independiente que se divide dicotómicamente y comparte únicamente la base de fijación con sus vecinos. Los coralitos miden 20-30 mm de diámetro, con un muro septal de dientes finos y regulares, y la colonia puede superar el metro de extensión en el arrecife. Su rasgo diagnóstico es la morfología tentacular: cada tentáculo, de hasta 5-7 cm, termina en una división múltiple de 4-8 lóbulos cortos y redondeados, lo que le da el aspecto de una puesta de huevas de rana y le valió el nombre comercial de «frogspawn coral». A diferencia de la mayoría de LPS, mantiene los tentáculos extendidos durante el fotoperiodo, lo que multiplica su valor ornamental.

La coloración es variable y estable en cultivo: marrones y verdes metálicos con discos orales contrastados, rosados con puntas blancas o violetas, y variedades con tentáculos bicolores. Las colonias procedentes de acuicultura —cada vez más frecuentes— conservan el patrón cromático de la colonia madre, algo relevante porque la fragmentación es sencilla: los brazos se separan con corte limpio sobre el esqueleto y se reajustan en pocas semanas.

Su dificultad real es media. Tolera bien parámetros estables, pero es más delicada que E. glabrescens frente a dos problemas concretos: la enfermedad del «brown jelly» (infección por ciliados y bacterias oportunistas que licua el tejido en 24-48 h) tras una lesión mecánica, un pico térmico o una manipulación brusca, y la rotura de sus ramas, de esqueleto poroso y quebradizo. Además, desarrolla tentáculos «sweeper» de hasta 10-15 cm que aguijonean corales vecinos, por lo que requiere una zona de exclusión de al menos 15-20 cm respecto a otros géneros.

Es fotosimbiótica (hospeda Cladocopium) y captura presas con eficacia: mysis, krill y pellets de 3-5 mm administrados 2-3 veces por semana aceleran el crecimiento y la división de los coralitos. Con alimentación regular y yodo/aminoácidos suaves, la tasa de crecimiento en acuario ronda 2-4 cm anuales por rama.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

La reclasificación de 2017 separó el clado de euphylidos ramificados con división tentacular múltiple en el género Fimbriaphyllia, dejando en Euphyllia a E. glabrescens y E. cristata. El comercio sigue usando de forma masiva el binomio antiguo, y buena parte de los ejemplares vendidos como «E. divisa» son en realidad F. paradivisa (pólipos mayores, menos tentáculos y con menor número de lóbulos) o E. glabrescens (tentáculos largos y afilados, sin ramificar, con punta blanca). La identificación fiable exige observar la división del tentáculo, el tamaño del coralito y la densidad de septos; existen además zonas de hibridación e introgresión entre F. divisa y F. paradivisa en el Indo-Pacífico.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Su área de distribución abarca el Indo-Pacífico tropical occidental y central: mar de Andamán, Sri Lanka, Indonesia, Filipinas, Papúa Nueva Guinea, islas Salomón, Gran Barrera de Coral y sur de Japón (Ryukyu), con el centro de diversidad en el Triángulo de Coral. Se localiza entre 0 y 30 m, pero es más abundante entre 2 y 12 m, en llanuras arrecifales y lagunas protegidas del oleaje, así como en taludes posteriores y zonas sombreadas de arrecifes costeros con turbidez y sedimentación moderadas. Esta preferencia por ambientes resguardados explica dos requerimientos de acuario: flujo indirecto y alternante —nunca corriente laminar directa sobre los pólipos, que provoca retracción crónica y erosión del tejido— e iluminación media, del orden de 100-200 µmol·m⁻²·s⁻¹ PAR, con adaptación progresiva si procede de un sistema con menos luz.

Los parámetros que replican su nicho natural son: temperatura 24-26 °C (límite superior 28 °C, con riesgo de blanqueamiento y «brown jelly» por encima), salinidad 1.025-1.026 (34-35 ups), pH 8,1-8,4, alcalinidad 8-9 dKH, calcio 420-450 ppm, magnesio 1300-1350 ppm, nitratos 2-10 ppm y fosfatos 0,03-0,10 ppm. Un sistema con nutrientes en cero absoluto la palidece y la hace más vulnerable; un sistema con nutrientes altos dispara algas sobre el esqueleto expuesto de las ramas inferiores.

En el arrecife ocupa sustratos consolidados y escombros coralinos, donde la columna de agua aporta plancton y materia orgánica particulada. En el acuario conviene situarla sobre roca firme, con la base del esqueleto encajada —no pegada con masilla sobre tejido vivo— y con espacio vertical para que las ramas se expandan sin rozar el sustrato. Es una especie robusta ante variaciones lentas y muy sensible a las rápidas: cambios de salinidad por reposición deficiente, oscilaciones de KH superiores a 1 dKH/día o descensos bruscos de temperatura son los desencadenantes habituales de necrosis. Con estas condiciones, colonias de 4-6 cabezas duplican su número de coralitos en 12-18 meses, y la fragmentación controlada de las ramas periféricas —siempre con corte neto y desinfección del material— es la vía más segura para mantener la línea genética en el acuario.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Colonia y esqueleto. Euphyllia divisa (Veron & Pichon, 1980) construye colonias flabeliformes a submeandroidas, de contorno redondeado y ramas cortas y macizas, sin la ramificación digitiforme larga que define a E. paradivisa. La diferencia no es estética: E. divisa se multiplica por división intracalicular (el coralito se estrangula y origina dos bocas dentro de la misma pared), mientras que E. paradivisa lo hace extracalicularmente, generando ramas nuevas desde el tejido basal. Los coralitos son monocéntricos, de 15–30 mm de diámetro en colonias maduras, unidos en series cortas de dos o tres. Los septos se disponen en tres ciclos con dientes paliformes laterales prominentes y lóbulo paliforme en el septo directriz, detalle que se aprecia bien en esqueletos secos y que permite separarla de E. ancora (ápices en forma de ancla) y de E. glabrescens (ápices en T simple). El esqueleto es aragonito poroso, de paredes finas (1–2 mm) y densidad baja: se fractura con una facilidad desproporcionada a su tamaño, sobre todo en la zona de unión entre coralitos, punto habitual de rotura durante el transporte.

Pólipos. El disco oral extendido mide 4–8 cm y los tentáculos 3–6 cm, con hasta 40–60 tentáculos por boca en ejemplares bien alimentados. El carácter diagnóstico es el ápice tentacular: multilobulado, con 3–6 lóbulos redondeados que recuerdan a un racimo o a un huevo frito (de ahí frogspawn), nunca en T ni en ancla. La coloración típica es marrón verdosa con ápices blancos, rosas, naranjas o turquesa; los morfos «gold» con ápices dorados son selección de acuario, no una variedad geográfica descrita. El pólipo puede inflarse con agua hasta duplicar su volumen, comportamiento que usa para aumentar la superficie fotosintética y para dispersar sedimentos.

Zooxantelas y nutrición. Aloja Symbiodiniaceae del clado C (predominio de C1/C3 según la población), con densidad alta y contribución fotosintética mayoritaria, pero es un heterótrofo facultativo eficaz: captura mysis y artemia de 2–4 mm con descarga de nematocistos y digestión extracorpórea limitada. No desarrolla tentáculos de barrido especializados como Galaxea, pero el contacto mantenido durante horas con otro coral necrosa el tejido del vecino, especialmente SPS y zoántidos. De noche los tentáculos se expanden más que con luz, momento óptimo para alimentar.

• Sin dimorfismo colonial: no hay pólipos «macho/hembra»; la reproducción en acuario es asexual por fisión.
• Filamentos mesentéricos expulsables por la boca ante estrés térmico o químico.
• Esqueleto sin espículas sueltas: la retracción completa deja ver la pared septal, no una masa blanda.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Es un LPS robusto pero más sensible a la inestabilidad que a los valores absolutos: tolera nitratos moderados y algo de materia orgánica, y falla cuando el KH oscila más de 1 dKH en 24 h o cuando la salinidad baja por reposición manual.

Luz. Con LED, colócalo en la franja media del acuario: la luz excesiva (PAR >350) provoca retracción parcial y ápices blanquecinos por fotoinhibición, mientras que la luz insuficiente alarga los tentáculos y apaga el color sin matar al coral. Un E. divisa bien iluminado muestra ápices con fluorescencia definida y disco oral extendido durante el fotoperíodo.

Flujo. Prefiere movimiento oscilante tipo gyre o dos bombas alternas con cambio de dirección cada 6–10 s. El flujo laminar constante erosiona el tejido del ápice y abre la puerta a la «brown jelly» (infección bacteriana-ciliada) y a la pérdida de tejido por bandas. Mantén el pólipo separado de la pared frontal y de la superficie del agua para que no roce.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocación. Fíjalo a roca viva firme con epoxi o cianoacrilato aplicado solo sobre el esqueleto seco, nunca sobre tejido; el contacto del adhesivo con el pólipo provoca necrosis localizada en 48 h. Reserva una zona de exclusión de 15–20 cm de radio, porque los tentáculos extendidos llegan a 8–10 cm y queman lo que tocan. Evita la base del acuario con sustrato fino: la arena arrastrada se acumula en el disco oral y favorece infecciones. Posición recomendada: tercio inferior-medio, sobre roca horizontal o ligeramente inclinada, con la boca orientada hacia arriba.

Crecimiento. En condiciones óptimas añade 1–3 cm de expansión lateral al año y una nueva boca por fisión cada 8–14 meses; es un crecimiento lento comparado con Catalaphyllia o Duncanopsammia. La alimentación semanal con mysis (2–3 piezas por boca) acelera la fisión, pero el exceso de alimento no consumido en el disco oral es el principal desencadenante de infecciones. La colonia se expande por división intracalicular: verás un surco vertical en el centro del coralito que se profundiza durante semanas antes de separarse.

Fragging. Técnica específica:

• Corta con sierra de diamante o dremel a baja velocidad, siempre por el esqueleto intercalar entre bocas, dejando 1–2 cm de esqueleto a cada lado del corte.
• Haz el corte en un solo movimiento continuo; los cortes múltiples astillan la pared fina y desgarran el tejido retraído.
• Deja el fragmento en agua del acuario con yodo (10–20 mg/L, 5–8 min) y vuelve a fijarlo a un fragmento de roca con la orientación original.
• Cicatrización: 2–4 semanas hasta cubrir el corte; mantén el fragmento en zona de flujo suave y luz algo reducida durante ese período.
• No fragmente colonias con signos de pérdida de tejido: la herida disemina la infección a todos los fragmentos.

Recuerda que Euphyllia divisa está incluida en el Apéndice II de CITES: en España la compraventa requiere documentación de origen legal, y la fragmentación para intercambio entre aficionados no exime del registro de procedencia.

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Fimbriaphyllia divisa (descrita como Euphyllia divisa y reasignada de género en 2017) es un LPS de agresividad alta, no moderada. Sus tentáculos de puntas ramificadas —el patrón que le da el nombre de «huevas de rana»— portan baterías densas de cnidocitos y, al apagarse las luces,

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

1. Confirma la especie antes de pagar. En Euphyllia divisa los tentáculos nacen de una base común y solo se separan en el tercio distal, con puntas que parecen dedos fusionados; en E. paradivisa cada tentáculo está individualizado hasta la base. La distinción no es cosmética: E. divisa forma colonias más compactas, con ramas cortas y gruesas, y tolera peor la corriente laminar directa que su congénere.

2. Mide los tentáculos captadores con luz roja. Entre 2 y 4 horas después del apagado, la colonia extiende tentáculos captadores de 10-12 cm (más largos en colonias grandes y bajo competencia activa). Comprueba el radio real con una regla y deja 15-20 cm libres frente a otros LPS y 25 cm frente a SPS. Esa separación también amortigua la guerra química entre morfos de Euphyllia, que se manifiesta como retracción persistente y necrosis del margen.

3. Nunca la fijes al sustrato arenoso. El coenosarc que une los coralitos es tejido vivo y se abrasa con facilidad. Monta la rama sobre roca, con una inclinación de 30-45° para que los pólipos expandan hacia la corriente y no contra la roca. Sujétala con masilla epoxi en la base del esqueleto muerto, nunca sobre tejido.

4. Corriente indirecta y caótica, 2-3 cm/s a la altura del pólipo. Dos bombas enfrentadas o una bomba con boquilla de dispersión; jamás un chorro laminar golpeando la colonia. En un 300 L, 20-25 recambios/hora totales con el retorno difuminado es suficiente. Si los tentáculos se pliegan hacia un lado de forma constante, hay exceso de flujo en ese punto.

5. Protocolo inmediato ante gelatina parda. Es una infección por ciliados (tipo Helicostoma) que puede matar la colonia en 48-72 horas. Sifona el material sin dispersarlo, corta la cabeza afectada 1 cm por debajo del tejido sano con cizalla de hueso, y baña en yodo (Lugol, 1-2 gotas/L, 10-15 minutos) o en un baño comercial de coral. Aumenta la corriente de forma indirecta y no alimentes durante 48 horas.

6. Alimenta de noche, con trozos de 3-5 mm. Dos o tres veces por semana, 30 minutos después del apagado, con mysis, krill o gamba picada. Cada pólipo acepta una o dos piezas; retira lo que no se consuma en 20 minutos. La alimentación dirigida eleva el crecimiento de ~1 cm de rama al año a 2-3 cm y engrosa el coenosarc.

7. Estabilidad de KH por encima de todo. Mantén 8-9,5 dKH con oscilación diaria inferior a 0,3 dKH; un salto de 1 dKH en 24 horas provoca retracción y abre la puerta a la gelatina parda. Dosifica bicarbonato o balling con dosificadora peristáltica, nunca a mano.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

El acuario no tiene estaciones, pero la temperatura de la sala, la evaporación y los envíos de coral sí. Este calendario asume una rutina fija e independiente de la época: KH dos veces por semana, cambio de agua del 10 % semanal o del 20 % quincenal, sifonado del sedimento y revisión visual de la colonia cada dos días.

12. ✅ CONCLUSIÓN

Euphyllia divisa es un LPS robusto pero no indestructible: perdona un rango amplio de luz (100-200 PAR, con adaptación entre 50 y 350) y de nutrientes (NO₃ 2-10 ppm, PO₄ 0,03-0,1 ppm), pero no perdona la inestabilidad química ni la corriente directa. Con 25 °C, 35 ppt, KH estable, alimentación nocturna y 15-20 cm de espacio libre para sus tentáculos captadores, una colonia de tres cabezas puede duplicarse en dos o tres años. La clave práctica está en tres gestos: montarla sobre roca inclinada, medir el radio de sus captadores de noche y actuar en las primeras 12 horas ante cualquier signo de gelatina parda.

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

En Euphyllia divisa el acoplamiento iónico no es opcional: cada 20 ppm de calcio consumido arrastra aproximadamente 2,8 dKH de alcalinidad y 1 ppm de magnesio, de modo que una colonia ramificada de 12-15 cm puede demandar 0,8-1,5 dKH/día. Mantén KH 7,5-8,5, Ca 420-440 mg/L, Mg 1320-1350 mg/L y salinidad 35 g/L; por debajo de 1300 mg/L de Mg la calcificación de las puntas se ralentiza y aparece recesión parduzca en la base del esqueleto. La especie tolera NO₃ 5-15 mg/L y PO₄ 0,03-0,08 mg/L, pero no oscilaciones de KH superiores a 0,7 dKH en 24 h: el coenosarco se retrae y deja expuesto esqueleto blanco. El potasio (380-420 mg/L) influye en la pigmentación de los tentáculos y valores por debajo de 350 mg/L se asocian a palidez sin pérdida aparente de zooxantelas. No persigas parámetros «de SPS» con esta especie: nutrientes indetectables durante semanas adelgazan el coenosarco y aumentan la vulnerabilidad a infecciones bacterianas.

La competencia química es el factor que más se subestima. E. divisa despliega tentáculos barrido de 8-15 cm y libera terpenoides y mucus con actividad alelopática que inhiben la extensión de tejido en Acropora, Montipora y Seriatopora situadas hasta 20-25 cm a sotavento del flujo. No es rival frente a Galaxea, Hydnophora o Catalaphyllia, cuyos filamentos mesentéricos digieren su tejido en menos de 48 h y abren la puerta a necrosis bacteriana. Deja 25 cm con otros LPS y 15 cm con SPS, y emplea carbón activado a razón de 100-200 g por 500 L renovado cada 3-4 semanas para retirar aleloquímicos disueltos. Reconoce clones: fragmentos del mismo genotipo pueden tocarse sin agresión, mientras que dos colonias de origen distinto mantienen una franja de 1-2 cm sin expansión. Si los tentáculos barrido aparecen de forma permanente, el coral está señalizando competencia; no esperes a ver tejido necrótico.

Euphyllia divisa rinde entre 75 y 150 PAR con pico en 400-480 nm; por encima de 200 PAR y sin aclimatación, las zooxantelas (clado D en la mayoría de ejemplares) sobresaturan y el coral expulsa mucus parduzco durante 3-5 días. Aclimata con reducción del 30-40% de intensidad y subida del 5% semanal. El indicador fiable no es el color, sino la extensión del coenosarco sobre el esqueleto y la apertura de tentáculos 30 min tras el encendido. En flujo exige régimen turbulento y alternante de 10-20 cm/s con cambios de dirección cada 6-12 h; el laminar continuo erosiona el tejido en el valle entre ramas, mientras que menos de 5 cm/s acumula detritus y dispara infecciones por Vibrio. Un cambio brusco de corriente provoca «balling» (tentáculos replegados y esféricos) que se resuelve en 24-72 h si el resto de parámetros es estable. Documenta con fotografía cenital semanal: una contracción del 20% del diámetro es el primer aviso.

Problemas poco frecuentes pero diagnosticables: el polyp bailout (desprendimiento de pólipos vivos del esqueleto) suele deberse a hipersalinidad superior a 37 g/L o a yodo libre elevado por sobredosificación, no a la luz. Las esponjas perforantes (Cliona) colonizan la cara inferior del esqueleto y se detectan por poros amarillos y debilidad estructural: extrae la colonia y raspa la zona afectada. El «brown jelly» post-fragmentación se previene con corte limpio, baño de yodo diluido 30 s y flujo directo sobre la herida durante 48 h. Si aparecen tentáculos cortos y deformes con la base intacta, revisa la densidad de copépodos y la presencia de Aiptasia sobre el esqueleto, que irrita el coenosarco. Confusiones taxonómicas: muchos ejemplares vendidos como E. divisa son E. paradivisa (ramas más cortas, tentáculos más finos), con menor tolerancia a la alcalinidad alta. No amputes los tentáculos barrido: corta a 2 mm del borde, ya que el muñón necrótico es foco de infección.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Cómo distingo Euphyllia divisa de E. paradivisa y E. glabrescens?

E. divisa es la auténtica «frogspawn»: colonia faceloide ramificada, cálices de 20–30 mm de diámetro y tentáculos con dos o tres órdenes de tamaño bien diferenciados, rematados en puntas bulbosas redondeadas que se agrupan en racimos. E. paradivisa presenta cálices mayores y tentáculos más uniformes, con punteado menos marcado; E. glabrescens (la «hammer») tiene tentáculos en forma de T o ancla, con la punta aplanada y alargada transversalmente. Si la punta es esférica y múltiple, es divisa; si es acampanada y única por tentáculo, es glabrescens. La confusión más habitual es con híbridos comerciales, que suelen mostrar caracteres mixtos.

¿Qué parámetros exactos necesita?

Salinidad 34–35 ppt (1.025–1.026), temperatura 24–26 °C, pH 8,1–8,4, KH 8–9 dKH (tolera 7–11), calcio 420–450 mg/L, magnesio 1300–1350 mg/L, nitrato 5–15 mg/L y fosfato 0,03–0,10 mg/L. Es un LPS robusto pero muy sensible a las oscilaciones de alcalinidad: subidas superiores a 1,5 dKH en 24 h provocan retracción y recesión del tejido en la base. Mantén el yodo en torno a 0,06 mg/L si haces cambios de agua regulares; no es imprescindible suplementarlo. Evita nitrato por debajo de 2 mg/L de forma sostenida: aparece palidez y el crecimiento se detiene.

¿Qué iluminación y corriente soporta?

Rango óptimo de 100–200 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR) con espectro completo; por encima de 300 PAR las colonias de coloración clara se retraen y blanquean en dos o tres semanas. Colócala en la zona media o baja, nunca bajo focos directos de LED de alta potencia sin aclimatación previa de cuatro a seis semanas. La corriente debe ser indirecta y aleatoria, del orden de 10–20 cm/s: suficiente para mover los tentáculos sin plegarlos contra el esqueleto. Una corriente laminar fuerte y constante erosiona el tejido de la base y favorece infecciones bacterianas.

¿Es tan agresiva como dicen?

Sí. Desarrolla tentáculos barredores de noche que pueden alcanzar 10–15 cm, muy por encima de la longitud de los tentáculos normales, y digieren tejido de Acropora, Montipora y otros LPS en pocas horas. Deja un margen mínimo de 15–20 cm respecto a cualquier otro coral y ten en cuenta su crecimiento: una colonia de cinco cabezas puede duplicarse en 12–18 meses con parámetros estables. Además libera compuestos alelopáticos, por lo que en acuarios pequeños conviene carbón activo. No la sitúes nunca por encima de corales de crecimiento lento.

¿Por qué se retrae y aparece «jelly» marrón?

La enfermedad del jelly marrón la producen ciliados oportunistas (tipo Porpostoma) que colonizan tejido necrosado; avanza de una cabeza a otra en 24–48 h. Actúa rápido: extrae la colonia, corta con alicate todo el coral afectado hasta esqueleto limpio y realiza un baño de yodo (Lugol 1 %, 10–15 minutos) o de CoralRx. Aumenta la corriente y revisa el yodo y la densidad. La retracción diurna sin necrosis suele indicar corriente demasiado fuerte, peces que la mordisquean (Chaetodon, Pomacanthus) o un salto de salinidad por reposición deficiente.

¿Cómo la fragmento sin perder cabezas?

Corta el esqueleto con alicate de hueso o Dremel provisto de disco de diamante, siempre 5–10 mm por debajo del tejido y en una zona sin pólipo en expansión. Cada fragmento debe incluir al menos una cabeza completa con parte del tallo. Trabaja fuera del agua el mínimo tiempo y devuelve los cortes a un baño de yodo al 1 % durante 10 minutos. Fija el fragmento con cianoacrilato de gel o masilla epoxi sobre roca viva, en zona de corriente moderada y baja luz, y no lo manipules durante 10–14 días. La tasa de supervivencia supera el 90 % si el corte es limpio y el KH se mantiene estable.

📚 REFERENCIAS

• Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, Vol. 2. Australian Institute of Marine Science, Townsville. 429 pp.
• Veron, J.E.N. & Pichon, M. (1980). Scleractinia of Eastern Australia, Part III. Australian Institute of Marine Science Monograph Series 4. 422 pp.
• Borneman, E.H. (2001). Aquarium Corals: Selection, Husbandry, and Natural History. T.F.H. Publications, Neptune City. 464 pp.
• Sprung, J. & Delbeek, J.C. (1997). The Reef Aquarium, Volume Two. Ricordea Publishing, Coconut Grove. 546 pp.
• Fossa, S.A. & Nilsen, A.J. (1996). The Modern Coral Reef Aquarium, Vol. 1. Birgit Schmettkamp Verlag, Bornheim. 368 pp.
• WoRMS Editorial Board (2024). World Register of Marine Species: Euphyllia divisa Veron & Pichon, 1980. Consultada en marinespecies.org.

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