Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia
📋 ÍNDICE DEL ARTÍCULO
- 4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
- 5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
- 6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
- 7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON P
10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO - 11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
- 12. ✅ CONCLUSIÓN
4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
Sarcophyton glaucum (Quoy & Gaimard, 1833) es un alcionáceo colonial de morfología “seta”: un pie o pedúnculo corto, grueso y carnoso (3-6 cm de diámetro, rara vez más) remata en un capítulo foliáceo, lobulado y de bordes ondulados que en acuario alcanza 15-25 cm de diámetro y en el arrecife supera los 35 cm. El carácter diagnóstico frente a S. elegans y S. trocheliophorum es la superficie del capítulo: en S. glaucum es marcadamente rugosa, con crestas radiales y concéntricas que le dan aspecto de cuero repujado y tacto áspero; S. elegans la tiene lisa y con pedúnculo más largo, y S. trocheliophorum muestra un capítulo de contorno regular y pie muy alargado. El color típico es verde oliva, gris-verdoso o beige, con la base del capítulo a menudo más pálida; los tentáculos suelen ser blanquecinos-amarillentos, lo que produce un moteado característico cuando los pólipos están expandidos.
La colonia es dimórfica, rasgo clave de la familia Alcyoniidae. Los autozoos son retráctiles, de 2-4 mm de diámetro, con ocho tentáculos pinnados (Octocorallia) y se distribuyen exclusivamente sobre el capítulo; el pedúnculo es estéril, sin autozoos, y esa discontinuidad se usa en taxonomía para separar especies. Entre ellos, en el cenénquima, se intercalan sifonozoos de 0,5-1 mm, no retráctiles y sin tentáculos, cuya función es bombear agua para la expansión hidrostática de la colonia y mantener la circulación interna del cenénquima; son los que permiten que el capítulo se hinche de forma autónoma. En conjunto, un capítulo maduro puede albergar varios miles de autozoos por decímetro cuadrado en las zonas de mayor densidad.
No existe esqueleto propiamente dicho: el soporte es una mesoglea espesa, gelificada y muy vascularizada, armada con escleritos calcáreos de carbonato cálcico de morfología variable según la región. En el capítulo dominan escleritos claviformes (“capitulares”) de 0,2-0,4 mm, con cabezas verrugosas, que refuerzan la superficie y protegen a los pólipos retraídos; en el pedúnculo abundan husos de hasta 0,5 mm alineados longitudinalmente, que dan rigidez al pie. Esta armadura discontinua es la razón de que el tejido se corte con facilidad pero resista la tracción.
Las zooxantelas (Symbiodinium del clado C, mayoritariamente C1) ocupan el cenénquima y los tentáculos, y aportan una fracción mayoritaria del carbono en iluminación adecuada; no obstante, S. glaucum es un heterótrofo eficaz: los autozoos capturan presas de 0,2-2 mm (nauplios, rotíferos, microfauna) y absorben materia orgánica disuelta, lo que explica su tolerancia a aguas con nutrientes moderados. La colonia sintetiza además diterpenos cembranoides (sarcophitoles, sarcofina) con función antiincrustante, alelopática y disuasoria de depredadores; son irritantes cutáneos y oculares, y su liberación al agua justifica el uso de carbón activado. Periódicamente, cada 2-5 semanas, el capítulo segrega una capa mucosa cerosa que se desprende; durante ese proceso los pólipos permanecen cerrados entre 3 y 10 días, comportamiento normal que no debe confundirse con enfermedad.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
| Parámetro | Rango objetivo | Observaciones específicas |
|---|---|---|
| Temperatura | 24-26 °C (límite 23-27,5 °C) | Picos >28 °C durante más de 48 h provocan cierre prolongado y reabsorción de pólipos; estable a 25 °C |
| Salinidad | 34-36 ppt (1,025-1,027) | Densidad 1,025-1,026 a 25 °C; tolera descensos puntuales a 32 ppt pero no oscilaciones diarias |
| pH | 8,10-8,40 | Evitar valores <7,9: el mucus se vuelve más viscoso y la muda se retrasa |
| KH (alcalinidad) | 7,5-9,0 dKH | Estabilidad ±0,5 dKH/día; el carbonato alimenta los escleritos |
| Calcio | 400-450 mg/L | Suficiente para la calcificación de escleritos; no precisa niveles de SPS |
| Magnesio | 1250-1350 mg/L | Por debajo de 1200 mg/L se compromete la precipitación correcta de Ca y escleritos |
| Nitratos (NO₃) | 2-10 mg/L | Óptimo 5 mg/L; en NO₃ <1 mg/L la colonia palidece y el crecimiento se detiene |
| Fosfatos (PO₄) | 0,03-0,10 mg/L | Nunca <0,02 mg/L de forma sostenida; >0,15 mg/L favorece algas sobre el capítulo |
| Iluminación | PAR 150-300 µmol·m⁻²·s⁻¹ | Tolera 400 con aclimatación de 4-6 semanas; LED de espectro completo, fotoperiodo 9-11 h |
| Flujo | Moderado-alto, 15-25× volumen/h | Turbulento y alternante; nunca laminar directo sobre el capítulo |
La iluminación excesiva se manifiesta en S. glaucum como capítulo con pólipos cerrados de forma persistente y decoloración amarillenta-verdosa del borde, mientras que la insuficiencia lumínica produce estiramiento del pedúnculo y palidez general por pérdida de densidad de zooxantelas. Bajo LED, subir el PAR en 4-6 semanas desde un 60 % del valor final. Respecto al flujo, el requisito real es la renovación turbulenta sobre la superficie del capítulo: es lo que permite desprender la capa mucosa de la muda y evita que el detritus quede atrapado en las crestas, causa habitual de necrosis focal en la base del capítulo. Alternar dos bombas con ciclo de 6-12 h y orientar la corriente de forma oblicua, nunca frontal. Mantener carbón activado de forma continua (200-300 g/500 L, renovado cada 4 semanas) para adsorber cembranoides.
6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
Colocación. Situar la colonia en el tercio inferior o medio, sobre roca plana y rugosa donde el pie pueda apoyarse en toda su base; la fijación es pasiva, por crecimiento del tejido sobre el sustrato, por lo que conviene inmovilizar el fragmento con una goma elástica suave sobre una piedra pequeña o encajarlo entre dos rocas, nunca pegarlo con cianocrilato directamente sobre tejido vivo (el mucus impide la unión y el adhesivo quema el cenénquima). Distancia mínima de 15-20 cm a corales pétreos y a otras blandas, siempre colocada aguas abajo de ellas en la corriente dominante: la liberación de cembranoides afecta especialmente a Acropora y a Sinularia vecinas. Evitar sustratos móviles y zonas de acumulación de detritus.
Crecimiento. Es una de las blandas de crecimiento más rápido: en condiciones óptimas el capítulo gana 3-6 cm de diámetro al año y la masa de la colonia puede duplicarse en 12-18 meses. El crecimiento se produce por expansión marginal del capítulo y por aparición de nuevos lóbulos y crestas; cuando el pedúnculo se engrosa y aparecen capítulos secundarios laterales, la colonia está lista para dividirse. Un indicador de buena adaptación es la muda regular (cada 2-5 semanas) y la reapertura de los autozoos en menos de 7 días.
Fragging. Método más seguro: sección de cuña o fragmento de 2-4 cm cortado del margen del capítulo incluyendo tejido del pedúnculo o de su base (los trozos de solo capítulo regeneran, pero con mayor mortalidad). Usar hoja de bisturí nueva o cuchillo cerámico, un corte limpio y de una sola pasada; el tejido desgarrado
7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON P
10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
Sarcophyton glaucum es un octocoral blando de la familia Alcyoniidae, con pólipos autótrofos y heterótrofos, esqueleto ausente y escleritos calcáreos dispersos. Su punto débil no es la iluminación ni los nutrientes: es la estabilidad iónica y la competencia química. Un ejemplar sano expande el capítulo en 30-60 minutos tras el apagado de luces; si permanece cerrado más de 5-7 días con flujo y parámetros correctos, hay que buscar irritación mecánica, peces que lo picotean o necrosis en el pedúnculo.
- Aclimatación real: goteo de 45-60 minutos para igualar temperatura y salinidad; luz al 50 % durante 7 días y subida del 10 % semanal. No lo coloques directamente bajo una lámpara LED de 250-300 PAR el primer día: empieza en 80-120 PAR.
- Flujo: indirecto y alternante, equivalente a 10-20 cm/s en la superficie del capítulo. Evita chorros laminares directos: provocan retracción crónica, acumulación de detritus en el pedúnculo y pérdida de expansión.
- Iluminación: 100-200 PAR con fotoperiodo de 8-10 horas; tolera 50-300 PAR si la adaptación es gradual. Un exceso brusco genera capítulo pálido y mucus excesivo; un déficit prolongado produce pedúnculo alargado y capítulo pequeño.
- Química del agua: salinidad 34-35 ppt, temperatura 24-26 °C, pH 8,1-8,4, alcalinidad 7-9 dKH, calcio 400-450 mg/L y magnesio 1250-1350 mg/L. Mantén la alcalinidad con variación inferior a 0,5 dKH/día: es más crítico que un valor absoluto concreto.
- Nutrientes: no lo metas en sistemas ultraoligotróficos. Nitrato 5-15 mg/L y fosfato 0,05-0,10 mg/L favorecen expansión y color. Con NO₃ <1 mg/L y PO₄ <0,03 mg/L suele reducir pólipos y adelgazar el capítulo.
- Alimentación: no depende de comida preparada, pero responde a fitoplancton de 5-20 µm y zooplancton fino de 50-200 µm. Dos o tres veces por semana, con bombas apagadas 10 minutos y en horario nocturno, es suficiente; no alimentes si hay película de algas sobre el capítulo.
- Defensa química: libera terpenos, entre ellos sarcophina, que inhiben corales vecinos. Deja 15-20 cm respecto a LPS y SPS, colócalo preferentemente aguas abajo y usa carbón activado a razón de 100-200 g por 500 L, cambiado cada 3-4 semanas. En sistemas pequeños, refuerza con skimmer húmedo.
- Muda de mucus: es normal que cada 4-6 semanas genere una capa cerosa y la desprenda. No la arranques ni cepilles el capítulo. Aumenta temporalmente el flujo y el carbón; si lleva más de 8 semanas sin mudar y el tejido está brillante, revisa yodo, densidad y materia orgánica.
- Fragmentación: corta una cuña de 2-3 cm desde el borde del capítulo con bisturí estéril, incluyendo margen y algo de pedúnculo. Fija con cianoacrilato gel sobre roca rugosa o usa palillo y goma suave; coloca en zona de flujo suave y luz media. La adhesión definitiva tarda 10-14 días.
- Señales de alarma: base blanca y blanda, olor fétido, capítulo que se deshace o pólipos que no reaparecen tras la muda. Aísla el ejemplar, corta el tejido necrótico con bisturí estéril y valora un baño de yodo suave según el producto comercial; nunca sumerjas un coral ya agotado en una solución fuerte.
11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
| Área | Invierno | Primavera | Verano | Otoño |
|---|---|---|---|---|
| Iluminación y fotoperiodo | 8 h; 100-150 PAR; revisar lámparas y horas de encendido. | Subir a 9 h y 10 % de intensidad cada 2 semanas hasta 150-200 PAR. | 10 h máximo; controlar temperatura del acuario y evitar picos >27 °C. | Bajar a 9 h y luego 8 h; limpiar ópticas y protecciones. |
| Flujo | Moderado y alternante; evitar zonas muertas en el pedúnculo. | Aumentar ligeramente para favorecer la muda de mucus. | Máximo estacional con corriente cruzada; vigilar que el capítulo no se doble. | Estable; retirar detritus acumulado tras el verano. |
| Alimentación | 2 veces/semana con fitoplancton y zooplancton fino. | 3 veces/semana; alternar tamaños de partícula. | 2 veces/semana; no alimentar si NO₃ >20 mg/L o hay algas sobre el capítulo. | 3 veces/semana para recuperar reservas antes del invierno. |
| Parámetros y mediciones | Salinidad y temperatura semanales; alcalinidad 2 veces/semana. | NO₃, PO₄, Ca y Mg mensuales; ajustar según consumo. | Temperatura a diario; salinidad cada 2 días por evaporación. | Revisión completa mensual; confirmar estabilidad de 7-9 dKH. |
| Mantenimiento | Cambio de agua del 10 % semanal; carbón cada 4 semanas. | Carbón cada 3-4 semanas; limpiar skimmer y bombas. | Cambio del 10-15 % semanal; carbón cada 3 semanas si hay calor o competencia. | Cambio del 10 % semanal; revisar escleritos y base del pedúnculo. |
| Propagación y observación | No fragmentar si la temperatura fluctúa; observar expansión matinal. | Mejor ventana de fragmentación; cortes limpios y cuñas de 2-3 cm. | Evitar cortes con calor; vigilar necrosis por estrés térmico. | Segunda ventana de fragmentación; comprobar cicatrización en 14 días. |
12. ✅ CONCLUSIÓN
Sarcophyton glaucum no es un coral “para principiantes con descuido”: es resistente, pero su tolerancia se apoya en estabilidad, flujo indirecto y gestión de su química alelopática. Un ejemplar bien asentado puede superar los 30-40 cm de capítulo y convertirse en el centro visual del arrecife blando, siempre que se le deje espacio y no se someta a fluctuaciones de alcalinidad ni a competencia directa con corales agresivos. La clave práctica es sencilla: 100-200 PAR, corriente alternante, NO₃ 5-15 mg/L, PO₄ 0,05-0,10 mg/L, carbón activado periódico y revisión del pedúnculo. Si respetas la muda de mucus, no fuerzas la expansión y fragmentas solo en primavera u otoño, tendrás una colonia longeva, con pólipos extensibles y un crecimiento predecible. La señal de éxito no es que “esté abierto”: es que mantenga el capítulo convexo, el pedúnculo firme y una muda completa cada 4-6 semanas sin necrosis ni retracción persistente.
🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS
Acoplamiento a parámetros. Sarcophyton glaucum tolera rangos amplios pero es intolerante a la deriva: mantén dKH 7,5-8,5 (nunca más de 1 dKH de oscilación diaria ni valores >9,5), Ca 420-450 mg/L, Mg 1300-1350 mg/L, salinidad 35 g/L y temperatura 25-26 °C. Un ejemplar silvestre recién importado exige goteo de 60-90 minutos y ecualización térmica previa de 20 minutos, descartando el agua de transporte. No lo fijes a la roca principal las primeras 48 h: colócalo sobre una piedra móvil en zona de flujo indirecto y unos 150 µmol·m⁻²·s⁻¹ para poder reubicarlo sin dañar el pedúnculo. Es fisiológicamente normal que retraiga pólipos entre 5 y 14 días y secrete una capa mucosa que después se desprende. El parámetro que más colapsos provoca en esta especie no es el nitrato (tolera 5-20 mg/L) sino el potasio por debajo de 380 mg/L y la ausencia de yodo medible (0,03-0,06 mg/L), que bloquea la ecdisis periódica del tegumento.
Competencia química. S. glaucum sintetiza cembranoides diterpénicos —sarcophina, sarcophytoxido y 14-desoxicrasina— que libera de forma continua al agua y de manera masiva tras fragmentación o estrés mecánico, con picos de exudación varias veces superiores a la línea basal durante 48-72 h. Corriente abajo, a menos de 15 cm, estos terpenos provocan en SPS (especialmente Acropora y Montipora) necrosis descendente en la base y retracción de pólipos en 24-48 h, sin contacto físico. Separa el ejemplar 20 cm de cualquier SPS y colócalo preferentemente en la salida del rebosadero. El carbón activado a 150-250 mL/100 L, cambiado cada 7-10 días, es el método más eficaz; el ozono y el UV degradan mal los diterpenos y el skimmer solo retira la fracción emulsificada. Ojo con el carbón agresivo: adsorbe yodo y agrava el bloqueo de la muda. Como víctima, S. glaucum sucumbe a tentáculos barredores de Euphyllia, Galaxea e Hydnophora.
Respuesta a luz y flujo. Su ventana fotosintética óptima se sitúa en 150-250 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR) con fotoperiodo de 10-12 h; por encima de 350 µmol·m⁻²·s⁻¹ el disco retrae pólipos y el margen se decolora por fotoinhibición y expulsión de simbiontes. Un incremento brusco de solo 100 µmol·m⁻²·s⁻¹ desencadena 7-10 días de retracción con producción excesiva de moco: sube la intensidad un 10-15 % semanal. El flujo importa más que la luz: necesita 15-25 renovaciones/hora en régimen turbulento e indirecto y alternante. Una corriente laminar directa de bomba mantiene los pólipos cerrados, impide la ecdisis y acumula detritus en los surcos del disco, abriendo la puerta a necrosis bacteriana. Con el flujo correcto el disco se expande hasta duplicar su diámetro diurno y la capa mucosa se desprende en jirones en 24-48 h; con flujo insuficiente esa capa queda adherida, se cubre de algas y actúa como foco infeccioso.
Problemas poco frecuentes. La patología más subestimada es la necrosis basal del pedúnculo: aparece una banda translúcida parduzca que avanza 2-5 mm/día y licúa el tallo («melting stalk»), casi siempre tras daño mecánico con bacterias oportunistas. Corta 2 cm por encima de la lesión, baña el fragmento en Lugol a 40 gotas/L durante 10-15 minutos y descarta la base. La autointoxicación en cuarentena es real: en menos de 40 L sin carbón un ejemplar estresado libera suficientes terpenos para inhibirse a sí mismo, con retracción total y moco espeso; resuelve con cambio del 50 % y carbón fresco. Si la ecdisis falla repetidamente pese a yodo correcto, revisa magnesio >1500 mg/L y fluctuaciones de salinidad por relleno manual. Por último, la fisión espontánea libera fragmentos que caen sobre otros corales y los necrosis por contacto; revisa la base mensualmente y retira los desprendimientos.
🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS
El acoplamiento de parámetros en Sarcophyton glaucum pasa desapercibido porque no construye un esqueleto continuo, pero sí secreta escleritos de calcita magnesiana en el cenénquima: consume calcio y, sobre todo, magnesio, y tolera mal una alcalinidad sostenida por encima de 9,5 dKH combinada con nitrato inferior a 1 mg/L; esa combinación produce retracción de pólipos y necrosis marginal en 10-14 días. Mantén 7,5-8,5 dKH con oscilación diaria menor de 0,5 dKH, Ca 420-450 mg/L, Mg 1300-1350 mg/L y densidad 1,025-1,026 calibrada con salmuera de referencia, no con refractómetro sin calibrar, ya que un error de 0,002 desvirtúa la lectura aparente de alcalinidad. Fija la temperatura en 25,5-26,5 °C: por encima de 28 °C el moco se densifica y la muda epidérmica se retrasa. Con NO₃ 5-15 mg/L y PO₄ 0,05-0,12 mg/L la colonia conserva turgencia; por debajo de 0,02 mg/L de fosfato el tejido se adelgaza y el pie se vuelve translúcido. Mantén pH 8,10-8,35 sin correctores agresivos.
S. glaucum es un competidor químico agresivo: libera cembranoides diterpénicos (sarcophytol A, sarcophytoxide) vehiculados en el moco, con actividad alelopática documentada frente a Acropora, Montipora y Lobophyllum, incluyendo inhibición del crecimiento y blanqueamiento de colonias situadas aguas abajo. El efecto se agrava con carbón activo insuficiente, skimmer infradimensionado o flujo laminar que arrastra el compuesto sin dispersarlo. Pauta: 0,5-1 g de carbón activo por litro, renovado cada 2-3 semanas; separación mínima de 15-20 cm respecto a SPS y ubicación del blando en la salida de la corriente, nunca aguas arriba. Tras cortar un esqueje, el pico de liberación dura 24-72 h: usa carbón fresco y no fragges dos colonias el mismo día en el mismo sistema. Existe además competencia intraespecífica entre morfotipos de la misma especie, con supresión del crecimiento del clon vecino; mantén las colonias separadas.
La aclimatación lumínica es lenta: la colonia reorganiza la densidad de zooxanthellae en 3-5 semanas. Un salto brusco de 80 a 300 µmol·m⁻²·s⁻¹ no blanquea de inmediato, pero provoca contracción total, reducción de la extensión de pólipos durante 5-9 días y una muda epidérmica masiva que deposita láminas de tejido sobre el sustrato. Sube la intensidad en escalones del 20-30 % semanal, con fotoperiodo de 9-10 h y pico de 6 h. En flujo necesita régimen turbulento y alternante de 15-25 renovaciones por hora; con corriente laminar la muda se acumula en la cara a sotavento y genera necrosis focal. Cambiar una bomba duplicando la velocidad sin transición produce hipersecreción de moco y cierre del disco durante una semana. Señal de acoplamiento correcto: pólipos extendidos 2-4 mm, disco plano y borde ondulado sin brillo excesivo.
Entre los fallos poco documentados, el más frecuente es la necrosis anular del pie tras una muda incompleta: el tejido retenido se necrosa y la infección bacteriana avanza 2-4 mm al día. Recorta 5 mm de margen sano, aplica baño de Lugol (6-8 gotas/L, 12 min) y mejora el flujo antes de devolverla al sistema. El «melting» súbito tras fragmentar se asocia a temperatura superior a 28 °C y densidad de 1,023; estabiliza ambos 48 h antes del corte. El nudibranquio Phyllodesmium longicirrum se alimenta de Sarcophyton, pasa desapercibido por mimetismo y deja zonas sin pólipos: retíralo con pinzas y revisa la base. La fisión por laceración pedal genera clones de 5-10 mm a 20-30 cm del pie; no son plagas. Si la colonia deja de mudar más de 8 semanas con yodo indetectable, ajusta yoduro a 0,06 mg/L.
🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS
Sarcophyton glaucum no construye esqueleto continuo de aragonito, pero su coenénquima está repleto de escleritos calcáreos: mantén Ca 400-440 mg/L y Mg 1300-1350 mg/L sin dosificar en función de él, porque su consumo es marginal y lo cubre cualquier rutina orientada a escleractinios. El parámetro realmente crítico es el KH: 7,5-8,5 dKH con deriva máxima de ±0,3 en 24 h; una caída de 8,5 a 6,5 deshincha el casquete y abre recesión en la base del tallo en 48-72 h. Salinidad 35 g/L; por debajo de 33 g/L el casquete reduce su expansión un 30-40 % y el coral entra en ciclos de muda fallidos. Temperatura 25-26 °C: mantener 28 °C más de 48 h desencadena liberación masiva de diterpenos y riesgo de autointoxicación. El yoduro (0,03-0,06 mg/L) es el único aditivo con efecto observado sobre la muda, aunque los test comerciales arrastran ±50 % de error. Nitrato 5-15 mg/L y fosfato 0,05-0,12 mg/L; por debajo de 0,03 mg/L de PO₄ el coral pasa a dependencia heterótrofa y exige presa de 50-200 µm (rotífero, nauplio, copépodo) tres veces por semana. El estroncio
🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS
Sarcophyton glaucum tolera rangos amplios, pero su acoplamiento fino depende de la estabilidad, no de la cifra absoluta. Mantengo KH 7,5-8,5 dKH con oscilación diaria inferior a 0,5 dKH, Ca 420-440 mg/L, Mg 1300-1350 mg/L, salinidad 35 g/L (1,026) y temperatura 25-26,5 °C; una caída a 24 °C o un salto de salinidad de 2 g/L provocan retracción y mucus en menos de seis horas. En la aclimatación de un ejemplar nuevo no basta con igualar densidad: si el agua de origen está a 10 dKH y la mía a 7,8, hago goteo de 60-90 minutos hasta igualar también la alcalinidad. Nutrientes: nitrato 5-15 mg/L y fosfato 0,05-0,12 mg/L mantienen el tejido carnoso y la expansión de pólipos; con NO₃ por debajo de 1 mg/L el coral se aclara y reduce pólipos de forma sostenida. No dosifico yodo de rutina: este género acumula halógenos y responde con necrosis marginal. El magnesio me importa más de lo habitual porque sostiene la turgencia del cenénquima.
La competencia de S. glaucum es principalmente química. Sus cembranoides diterpénicos —sarcophina, sarcophytol A, 14-deoxicrasina, metil sartortuoato— se exudan al agua y al mucus y actúan como aleloquímicos: en acuarios densos he observado inhibición del crecimiento y de la extensión de pólipos en Acropora y Montipora situadas a favor de corriente, con reducción de calcificación apreciable en ramas próximas. No hay agresión por tentáculos; el daño es difuso, tardío y se confunde con desequilibrios de nutrientes. Pauta: separar 15-20 cm de los SPS, colocar el Sarcophyton aguas abajo de las corrientes de retorno y mantener carbón activo a 300-500 mL por 100 L renovado cada 3-4 semanas, además de espumador con ozono moderado (ORP 350-380 mV). Antes y después de fragmentar aumento el carbón y lo renuevo a las 48 horas: el corte libera una descarga de terpenos que puede dañar tejido vecino. Nunca vierto el agua de transporte de un ejemplar recién llegado al sistema.
La respuesta a la luz es lenta en el tejido y rápida en los pólipos. Lo mantengo entre
❓ PREGUNTAS FRECUENTES
¿Cómo distingo Sarcophyton glaucum de otros Sarcophyton y de Lobophytum?
El capítulo (capitulum) de S. glaucum es liso, acopado o en forma de seta, con un borde bien definido y sin lóbulos digitiformes ni crestas radiales: si ves pliegues o dedos sobre el disco, es Lobophytum. La columna suele ser más corta que el diámetro del sombrero en colonias adultas. Presenta polipos dimórficos: autozoos con ocho tentáculos pinados y escleritos en forma de maza capitada (cálices de 0,1–0,3 mm) en el capítulo, y espículas fusiformes octarradiadas de hasta 3 mm en el pedúnculo. El color es gris-verdoso o verde oliva (de ahí glaucum), más pálido en el borde. S. trocheliophorum muestra un capítulo lobulado tipo coliflor y S. elegans un pedúnculo más estrecho con el disco marcadamente convexo; además, el género alberga linajes crípticos que solo se separan por morfometría de escleritos y datos moleculares.
¿Por qué se retrae y suelta una película blanquecina?
Es muda de mucus, no enfermedad. La colonia cierra los autozoos entre uno y cuatro días, a veces más, y desprende una capa cérea que arrastra algas, detritos y epibiontes. El ciclo se dispara por cambios de iluminación, variaciones de salinidad, manipulación, cortes o periodos de corriente baja. Deja que la película se desprenda con una corriente turbulenta de 10–20 cm/s; si no se elimina, se acumula entre los polipos y favorece infecciones bacterianas. Preocúpate solo si hay necrosis en la base, olor pútrido o retracción superior a diez días con tejido deshaciéndose: entonces sospecha Waminoa u otros acelos planos, o una infección bacteriana.
¿Qué luz, corriente y ubicación necesita en el acuario?
PAR de 100–250 µmol/m²/s con fotoperiodo de 10–12 h; tolera más intensidad tras aclimatación lenta, pero por encima de 300 se aclara y pierde zooxantelas. Corriente alterna y turbulenta, no un chorro laminar directo sobre el disco. Colócala sobre roca aislada, con 15–20 cm libres alrededor: el capítulo puede triplicar su diámetro y en acuarios de 500 L alcanza 40–60 cm en tres o cinco años. Fíjala con masilla epoxi o encajada en una grieta, sin enterrar el pedúnculo. Sitúala siempre aguas abajo de los corales duros: sus terpenos inhiben el crecimiento de Acropora y Montipora.
¿Qué parámetros tolera y cuáles no?
Temperatura 24–26 °C
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia
© 2026 Roberto Parra Jiménez – Biólogo Marino (UH Mānoa). Todos los derechos reservados.

Deja una respuesta