Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia
📋 ÍNDICE DEL ARTÍCULO
- 1. 🌏 INTRODUCCIÓN
- 2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
- 3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
- 4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
- 5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
- 6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
- 7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
- 8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES
- 10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
- 11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
1. 🌏 INTRODUCCIÓN
Sinularia brassica es un coral blando de la familia Alcyoniidae, conocido en el comercio como “coral coliflor” o “coral repollo” por la morfología lobulada y plegada de sus colonias, que recuerdan a las hojas de una col. Es una especie robusta y de crecimiento relativamente rápido, muy apreciada en acuariofilia marina por su tolerancia a parámetros no perfectos y su capacidad de adaptación a distintos regímenes de luz y corriente. Sin embargo, no es un coral “para cualquier tanque”: produce metabolitos secundarios (terpenos) que pueden inhibir el crecimiento de corales duros y otros blandos, por lo que requiere espacio físico y filtración con carbón activado. A diferencia de otros Sinularia de ramas digitadas, S. brassica forma lóbulos anchos, carnosos y con pliegues profundos, a menudo con una base incrustante extensa. Los pólipos son pequeños (0,5–1 mm) y retráctiles; cuando se expanden, confieren a la colonia un aspecto difuso y aterciopelado. Su coloración es variable: verde, marrón, crema, rosa pálido o amarillento, dependiendo de la densidad de zooxantelas y de la iluminación. Es una especie fotosintética (mixótrofa) que obtiene la mayor parte de su energía de sus simbiontes, pero que también captura partículas en suspensión. En acuariofilia se considera adecuada para principiantes avanzados o acuaristas con experiencia básica, siempre que se respeten sus necesidades de espacio, estabilidad de parámetros y circulación indirecta. Su facilidad de fragmentación la convierte en una especie ideal para propagación y para iniciar colonias en nuevos sistemas, pero su agresividad química exige planificación en la disposición del arrecife.
2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
| Taxón | Clasificación |
|---|---|
| Reino | Animalia |
| Filo | Cnidaria |
| Clase | Anthozoa |
| Subclase | Octocorallia |
| Orden | Alcyonacea |
| Familia | Alcyoniidae |
| Género | Sinularia |
| Especie | Sinularia brassica May, 1898 |
| Autoridad | May, 1898 |
| Nombres comunes | Coral coliflor, coral repollo, cabbage leather coral |
Sinularia brassica fue descrita por May en 1898. Pertenece al grupo de Sinularia con colonias lobuladas y escleritos (espículas calcáreas) de morfología característica: escleritos en forma de bastón y de “tridente” con proyecciones espinosas, que le dan consistencia al cenénquima. La identificación específica en el género Sinularia es compleja y requiere el examen de los escleritos al microscopio; en el comercio, muchas colonias etiquetadas como S. brassica pueden corresponder a especies cercanas como S. dura o S. flexuosa, pero S. brassica se distingue por sus lóbulos anchos y aplanados, con pliegues que se asemejan a las hojas de una col. No posee esqueleto de carbonato cálcico continuo (es ahermatípica), sino escleritos dispersos en el tejido blando. Su taxonomía ha sido revisada en varias ocasiones; la especie se considera válida y se incluye en el clado de Sinularia con colonias no ramificadas o lobuladas. La subclase Octocorallia se caracteriza por pólipos con ocho tentáculos pinnados, y la familia Alcyoniidae agrupa corales blandos con dimorfismo polipoide (autozoides y sifonozoides), aunque en Sinularia los sifonozoides son reducidos. La reproducción es sexual (gonocórica, con liberación de gametos) y asexual por fragmentación, lo que explica su éxito en cultivo.
3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
Sinularia brassica tiene una amplia distribución en el Indo-Pacífico: desde el mar Rojo y la costa este de África hasta Micronesia, Polinesia Francesa, Australia tropical (Gran Barrera de Coral, noroeste de Australia) y el sudeste asiático (Indonesia, Filipinas, Papua Nueva Guinea). Ocupa principalmente ambientes someros de arrecifes coralinos, con un rango batimétrico que va desde la superficie hasta unos 30 metros de profundidad, aunque es más abundante entre 3 y 15 m. Se encuentra en arrecifes planos (reef flats), lagunas protegidas, bordes de arrecife y pendientes superiores, siempre sobre sustrato duro (roca caliza, coral muerto, escombros consolidados). Prefiere zonas con circulación moderada pero no expuestas a rompientes fuertes; en lagunas y áreas resguardadas forma colonias de gran tamaño que pueden dominar el paisaje bentónico. Tolera cierta turbidez y variaciones de temperatura (22–30 °C en su hábitat natural), pero no prospera en aguas con sedimentación excesiva. En el arrecife, compite por espacio con otros corales blandos y duros mediante alelopatía: libera terpenos que inhiben el crecimiento de vecinos, y su rápido crecimiento por fragmentación le permite colonizar rápidamente claros y superficies disponibles. Es una especie clave en la dinámica de sucesión secundaria en arrecifes degradados. En acuario, debe ubicarse en una zona con luz media (PAR 100–200 µmol·m⁻²·s⁻¹), flujo indirecto y variable (no un chorro directo que impida la expansión de los pólipos), y con espacio suficiente para evitar que sus exudados químicos alcancen corales sensibles. Parámetros recomendados: temperatura 24–27 °C, salinidad 35 ppt, pH 8,1–8,4, alcalinidad 7–9 dKH, calcio 400–450 ppm, magnesio 1250–1350 ppm, nitrato <10 ppm y fosfato <0,1 ppm. La alimentación es opcional: acepta fitoplancton y zooplancton de tamaño pequeño (rotíferos, nauplios), pero no es imprescindible si la iluminación es adecuada. Su crecimiento en cautividad es rápido y puede duplicar su tamaño en 6–12 meses en condiciones óptimas, lo que exige podas periódicas para evitar que sombree a otros corales.
4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
Sinularia brassica (May, 1898) es un alcionáceo de la familia Alcyoniidae de organización colonial y dimórfica. La colonia adulta presenta una base incrustante de la que emerge un pedúnculo corto que se expande en un capítulo lobulado de contorno redondeado, con láminas sinuosas y replegadas que le dan el aspecto de coliflor o col rizada que justifica el epíteto brassica. En acuario, los ejemplares habituales alcanzan 12-25 cm de diámetro en dos o tres años; en el medio natural se han registrado colonias de más de 40 cm. El coenenquima es grueso, gelatinoso y firme al tacto, sin axis calcáreo ni ningún tipo de esqueleto continuo.
La colonia alberga dos tipos de pólipos. Los autozooides miden 1,5-3 mm de diámetro, son completamente retráctiles y presentan ocho tentáculos pinnados —rasgo propio de Octocorallia— con pinas dispuestas en dos filas. Al contraerse no se introducen en cálices individuales, sino que se invaginan a ras de superficie: la colonia retraída queda lisa, mate o ligeramente brillante por el moco, sin las cúpulas que delatan a Lobophytum. Los sifonozooides son mucho menores (0,3-0,8 mm), carecen de tentáculos desarrollados y se distribuyen entre los autozooides; su función es bombear agua y mantener la turgencia hidrostática del coenenquima.
El soporte estructural lo aportan los escleritos calcáreos, no un esqueleto macizo. En S. brassica encontramos husos (spindles) de 1,5-3 mm densamente empaquetados en el coenenquima, a menudo con cinturón de verrugas, y mazas o capstans de 0,08-0,15 mm en el polipario. La identificación específica dentro del género depende de la microscopía de estos escleritos (longitud, ornamentación y proporción de mazas), de modo que muchas colonias vendidas como S. brassica son en realidad S. flexibilis o S. dura; la morfología externa solo es orientativa.
Las zooxantelas (Symbiodiniaceae, típicamente clados C1/C3 en el género) se alojan en la gastrodermis y confieren a la colonia su coloración pardo-dorada, beis o gris verdosa, con los discos orales a menudo más claros. Su aporte fotosintético cubre buena parte de la demanda energética, pero Sinularia es un género netamente mixótrofo: captura bacterioplancton y materia orgánica disuelta con eficacia. La densidad de simbiontes cae rápidamente con temperaturas superiores a 29 °C o con PAR excesivo en aguas pobres en nutrientes, y el blanqueo se manifiesta primero en los bordes del capítulo. Como defensa química, el género sintetiza cembranólidos diterpénicos (sinularina, sinulariolida, dihidrosinularina) que libera al agua y que ejercen alelopatía contra corales pétreos y cierta actividad antibacteriana.
5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
| Parámetro | Rango objetivo | Observaciones |
|---|---|---|
| Temperatura | 24-27 °C | Pico máximo tolerable 28,5 °C. Por encima de 29 °C aparecen recesiones y blanqueo en 48-72 h. |
| Salinidad | 34-35 ppt (1.025-1.026) | Medir con refractómetro calibrado; evitar oscilaciones >1 ppt en el cambio de agua. |
| pH | 8,1-8,4 | Estable; un pH <7,9 frena la calcificación de los escleritos y la turgencia. |
| KH (alcalinidad) | 7-9 dKH | Tolera hasta 11 dKH, pero la estabilidad importa más que el valor absoluto. |
| Calcio | 400-450 mg/L | Consumo bajo, limitado a la producción de escleritos; no requiere reactor. |
| Magnesio | 1.280-1.350 mg/L | Mantener por encima de 1.250 mg/L para no desestabilizar KH y calcio. |
| Nitratos (NO₃) | 2-10 mg/L | Por debajo de 1 mg/L la colonia palidece; por encima de 20 mg/L crece rápido pero con color apagado. |
| Fosfatos (PO₄) | 0,03-0,10 mg/L | Valores sostenidos >0,15 mg/L favorecen algas sobre la superficie del capítulo. |
| Iluminación | PAR 100-250 µmol/m²/s | Fotoperíodo 10-12 h. Posición media; aclimatar 3-4 semanas si procede de PAR <80. |
| Flujo | Moderado-fuerte, indirecto (10-20 cm/s) | Turbulencia alterna; nunca chorro laminar directo sobre el capítulo. |
La combinación crítica es flujo alto + nutrientes moderados: Sinularia brassica muda periódicamente una capa de moco y necesita corriente suficiente para desprenderla. Con flujo insuficiente, esa película se acumula en los pliegues del capítulo, favorece cianobacterias y provoca necrosis localizada en la base. El yodo no debe dosificarse a ciegas: solo tiene sentido si se mide y se detecta carencia, y no sustituye a una renovación parcial de agua del 10 % semanal.
6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
Colocación. Situar la colonia a media altura, sobre roca viva rugosa o una repisa estable, con la base bien sujeta para que la incrustación avance. Reservar un radio libre de 15-20 cm: el capítulo se expande lateralmente y la colonia genera sombra y alelopatía. Colócala preferentemente a sotavento de los corales pétreos (aguas abajo de la corriente dominante) y acompaña la instalación con carbón activado (0,5-1 g/L, cambiado cada 3-4 semanas) para adsorber cembranólidos. No la sitúes en contacto con Sarcophyton ni con zoantídeos: el resultado habitual es una franja de tejido necrosado en el punto de contacto.
Crecimiento. En condiciones óptimas, S. brassica produce 1-3 cm de expansión lateral al mes, con formación de nuevos lóbulos en el perímetro del capítulo. La fijación al sustrato se produce en 3-4 semanas mediante una base incrustante que avanza sobre la roca. La forma colonial depende del flujo: con corriente fuerte los lóbulos se compactan; con flujo débil se estiran y el capítulo se aplana, un indicador útil de que hay que reubicar la pieza.
Fragging. Es una de las especies más sencillas de propagar. Procedimiento:
- Cortar con bisturí o tijera desinfectados un lóbulo periférico de al menos 2-3 cm, con tejido de coenenquima suficiente; un fragmento exclusivamente de pólipos no viables.
- Realizar un único corte limpio: los desgarros dejan haces de escleritos expuestos que necrosan.
- Enjuagar el fragmento en agua del propio acuario para eliminar el exceso de moco y cembranólidos.
- Fijarlo con goma elástica suave o cuña de roca en un fragmento de roca viva, o dejarlo en una bandeja de sustrato en zona de flujo bajo; el cianoacrilato gel funciona mal sobre tejido húmedo y solo es aceptable si se aplica sobre roca seca y se presiona el fragmento unos segundos.
- Mantenerlo 7-10 días en flujo bajo-moderado e iluminación atenuada (PAR 80-120) hasta que cierre la herida.
La superficie cortada genera coenenquima nuevo en 5-10 días y la fusión con la roca se completa en 2-4 semanas. Si el fragmento se vuelve blanco opaco y blando, o desprende olor pútrido, retíralo de inmediato: es necrosis bacteriana y puede contaminar el resto. Tras cualquier sesión de corte, conviene reforzar el carbón activado durante 48 horas, ya que la liberación de terpenos al cortar es máxima y puede irritar a los pétreos sensibles del sistema. Los fragmentos olvid
7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
Sinularia brassica (Dana, 1846) es un alcionáceo de coenenquima denso y capitel lobulado en forma de coliflor —de ahí el epíteto—, con pólipos autozoos cortos y un segundo tipo de pólipo reducido (siphonozoos) que bombean agua. Esta arquitectura cerrada le permite retraerse por completo en segundos ante cualquier roce, lo que la hace tolerante a la actividad de peces grandes. Convive sin problemas con Amphiprion, Chromis, Neopomacentrus, Zebrasoma, Ctenochaetus, Synchiropus splendidus, Lysmata amboinensis, Stenopus hispidus y cangrejos ermitaños (Calcinus, Clibanarius), que la transitan sin dañarla.
Los riesgos reales son tres. Primero, los ángeles enanos y medianos: Centropyge loricula, C. bispinosa y sobre todo Pomacanthus imperator o P. semicirculatus picotean el capitel y dejan zonas con pólipos permanentemente cerrados; en acuarios de menos de 500 L el daño se acumula. Segundo, los chaetodóntidos corallívoros (Chaetodon ornatissimus, C. meyeri) y los monacántidos del género Oxymonacanthus, que consumen tejido blando de forma sistemática. Tercero, balístidos y tetraodóntidos, que no la comen pero arrancan fragmentos al hozar.
Entre los invertebrados hay dos grupos de depredadores obligados que conviene conocer: los ovúlidos (Phenacovolva, Ovula) y los nudibranquios armináceos (Dermatobranchus), ambos especializados en octocorales y que llegan como polizones sobre colonias importadas; se detectan por patrones de mordisco lineales y por la desaparición de pólipos en franjas. Los cangrejos Mithraculus sculptus muestran mordisqueos ocasionales. Anémonas (Entacmaea, Stichodactyla) y corales con tentáculos barredores —Galaxea, Euphyllia, Hydnophora— provocan necrosis por contacto en 24-48 h.
El punto crítico es la alelopatía. S. brassica libera terpenos al agua de forma continua y masiva cuando se manipula, se fragmenta o sufre estrés térmico; en sistemas mixtos esto se traduce en blanqueamiento y necrosis de Acropora, Montipora y Seriatopora situadas hasta 40 cm aguas abajo. Obligatorio carbón activado (100-150 g por 300 L, renovado cada 3-4 semanas) y separación física de los SPS. Frente a otros blandos, compite por espacio con Sarcophyton y Lobophytum mediante digestión por contacto de hasta 1 cm al mes.
8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES
Blanqueamiento. La pérdida de zooxantelas se manifiesta primero en el borde del capitel y en los discos orales, que pasan de marrón-dorado a blanco translúcido. Causas específicas: temperatura sostenida por encima de 30 °C durante más de 48 h, salto brusco de PAR (más de 150 µmol·m⁻²·s⁻¹ de golpe), o densidad baja (menos de 1,023). Con el factor corregido, la recolonización simbiótica tarda 4-8 semanas; no la alimentes en exceso durante ese periodo.
Necrosis rápida (RTN) y podredumbre. En blandos se presenta como banda blanquecina que avanza 5-10 mm/h, seguida de tejido parduzco mucoso y olor pútrido. Se desencadena por heridas mecánicas, picotazos o infección bacteriana oportunista a 28 °C con materia orgánica alta. Protocolo: extraer la colonia, cortar con bisturí 1 cm dentro de tejido sano, descartar la parte afectada y hacer baño de yodo a dosis baja (Lugol 1-2 ml/L, 5-8 minutos). Los blandos toleran mal las dips prolongadas.
Necrosis basal y desprendimiento. Muy característica de la especie: el tallo se necrosa en la base cuando queda enterrado por sustrato móvil (típico con Valenciennea) o en zonas de flujo inferior a 5 cm/s con sedimentación. La colonia se desprende sola. Solución: reposicionarla sobre roca viva con flujo indirecto y recortar el tejido muerto.
Parásitos y plagas. Los hidrozoos Myrionema amboinense colonizan el coenenquima y cubren el capitel con una pelusa blanquecina que impide la expansión de los pólipos. Los platelmintos Waminoa y Convolutriloba retrogemma
10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
1. La ubicación no es estética, es química. Sinularia brassica sintetiza cembranoides —sinularina, dihidrosinularina, flexibilida y 14-deoxicrasina— que libera de forma continua y en picos cuando se estresa. Una colonia de 15 cm en 200 L puede frenar el crecimiento de Acropora y Montipora situadas a 30 cm. Colócala siempre aguas abajo del arrecife de piedra, nunca en la rama de retorno que alimenta el tanque de SPS, y mantén carbón activado en continuo (200-300 mL por 300 L, renovado cada 3-4 semanas).
2. Flujo caótico e indirecto, 15-20 renovaciones/hora. El chorro laminar directo sobre el lóbulo principal provoca necrosis en los pliegues en 10-15 días; el flujo insuficiente, por el contrario, acumula detritus en la base y abre la puerta a cianobacterias y a necrosis basal. Apunta dos bombas enfrentadas con desfase o un generador de oleaje, con velocidades de 10-20 cm/s en la superficie de la colonia.
3. Identificación correcta antes de comprar. S. brassica forma lóbulos foliáceos tipo coliflor, con márgenes ondulados y pólipos dimórficos (autozoos grandes y sifonozoos pequeños entre ellos). Si la colonia es un disco liso y uniforme, probablemente sea S. dura; si es digitiforme, otra especie del género. La confusión importa porque S. brassica crece más rápido y es más alelopática que S. dura.
4. Yodo y mudas de mucus. La colonia renueva su capa mucosa cada 3-6 semanas; en esos días el coral se ve «apagado» y los pólipos retraídos sin que haya enfermedad. Mantén yodo en 0,04-0,06 mg/L con Lugol (1 gota por 100 L semanales), pero no te fíes de los test colorimétricos de aficionado a esa concentración: dosifica por observación y corta si aparecen algas filamentosas.
5. Esquejado quirúrgico. Corte limpio con bisturí o tijera de una sola pasada, sin serrar. La madre cicatriza en 7-14 días y el fragmento se fija en 2-3 semanas con goma elástica suave o cianoacrilato sobre roca viva. No esqujes en las 48 h posteriores a la recepción del coral: el estrés de transporte dispara la liberación de terpenos y la fusión del tejido. Baño de yodo (2 gotas de Lugol por litro, 5-8 minutos) tras cada corte.
6. Reconoce la necrosis antes de que sea «melting». Manchas blancas circulares que se expanden 2-5 mm/día, con olor dulzón y desprendimiento de mucus: es una infección bacteriana oportunista. Sifona, recorta con 5 mm de margen sano, baño de yodo y carbón nuevo. Revisa temperatura por encima de 28 °C y flujo en la base: son las dos causas más frecuentes.
7. Guantes, siempre. La sinularina es citotóxica y produce dermatitis de contacto; el mucus irrita mucosas y ojos. Manipula con guantes de nitrilo y gafas al fragmentar, y no cocines ni manipules alimentos sin lavarte hasta el codo.
8. Heterotrofia que se nota. Aunque vive de sus zooxantelas, la captura de partículas de 5-200 µm mejora la extensión de pólipos y acelera el crecimiento. Rotíferos o copépodos 2-3 veces por semana, más aminoácidos (2 mL/100 L) tras el apagado. No alimentes con fitoplancton denso: sube fosfato sin que el coral lo aproveche.
9. Aclimatación lumínica y color. Sube de 150 a 300 µmol/m²/s de PAR a lo largo de 3-4 semanas. El tono marrón-beige es normal; las puntas verdosas indican buen equilibrio luz/nutrientes. Un salto brusco de iluminación la blanquea en 5-7 días y tarda meses en recuperar color.
10. Controla la biomasa. En condiciones óptimas duplica su volumen en 4-6 meses y puede tapizar zoantídeos y roca vecina. Reserva una zona de esquejes y exporta un 10-20 % de biomasa al año; regala o intercambia los fragmentos antes de que compitan por espacio.
11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
Pauta estacional para un acuario de arrecife mixto de 200-400 L con S. brassica. Los valores son objetivos de trabajo, no rangos máximos.
| Estación | Luz y fotoperiodo | Flujo y temperatura | Alimentación y química | Poda y vigilancia |
|---|---|---|---|---|
| Primavera (mar-may) | 10-11 h; PAR 250-300 µmol. Subir 30 min/semana desde el horario de invierno. | 15-20 renovaciones/h; 24-25,5 °C. Limpiar rodetes de bombas. | Rotíferos 3×/semana; Lugol 1 gota/100 L semanal; carbón cada 4 semanas. | Ventana principal de esquejado (abril-mayo).
🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOSSinularia brassica soporta rangos amplios, pero su crecimiento se acopla a la estabilidad iónica más que al valor absoluto. En sistemas a 35 g/L (1,0259), 25,5-26,5 °C, KH 8,0-8,6 dKH, Ca 430-450 mg/L, Mg 1320-1350 mg/L, NO₃ 5-10 mg/L y PO₄ 0,03-0,08 mg/L, la colonia gana 0,8-1,5 mm de tejido lobular por semana. Una caída de 1,5 dKH en 24 h la mantiene con pólipos retraídos 48-72 h y, repetida, produce necrosis en el punto de anclaje. El yodo es el parámetro crítico menos atendido: los alcionáceos concentran ioduro hasta 10⁴ veces respecto al agua; mantén 0,03-0,06 mg/L de I⁻ con Lugol semanal y nunca superes 0,10 mg/L. Potasio 390-410 mg/L: por debajo de 340 mg/L aparecen pólipos pálidos y nula expansión diurna. Hierro quelado 0,05-0,10 mg/L sostiene la densidad de zooxantelas; por encima de 0,15 mg/L se dispara la filamentosa sobre el disco basal. Es más tolerante a NO₃ alto que a correcciones de salin 🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOSSinularia brassica admite un rango amplio de parámetros, pero el acoplamiento fino se decide en tres ejes. Mantén densidad 34,5-35,0 g/L, dKH 7,5-8,5 estable —oscilaciones superiores a 1 dKH al día provocan retracción de pólipos en 6-12 horas—, Ca 420-440 mg/L, Mg 1300-1350 mg/L, NO₃ 3-10 mg/L y PO₄ 0,03-0,10 mg/L. Por debajo de NO₃ 1 mg/L el capitulum se aplana y el crecimiento se detiene; con PO₄ superior a 0,15 mg/L aparece biofilm sobre la cutícula y competencia con algas filamentosas. El yodo es el parámetro más descuidado: valores de 0,03-0,06 mg/L medidos por ICP-MS —no con kits colorimétricos— coinciden con expansión completa y escleritos bien formados; por debajo de 0,02 mg/L se observan tallos flexibles y pólipos semiexpandidos de forma crónica. Al pasar de cultivo a un sistema nuevo, programa una rampa de 2-3 semanas: 15 días al 60 % de la luz final y flujo reducido, subiendo un 10 % de PAR cada 4 días. Corrige el yodo con yoduro potásico dosificado a diario, nunca en bolo. La agresividad de esta especie es fundamentalmente química. Los escleritos solo defienden; el tejido libera diterpenos —sinularina, flexibilida, dihidrosinularina y 11-epi-sinulariolida acetato— que actúan como aleloquímicos incluso sin contacto físico, y cuya liberación se multiplica cuando la colonia se corta, se fragmenta o se manipula. En sistemas mixtos estos compuestos se acumulan y producen en Acropora y Montipora retracción de pólipos, palidez y detención del crecimiento en 3-7 días, sin patógeno detectable. La mitigación es mecánica: carbón activado a 0,5-1,0 g/L de volumen neto, renovado cada 3-4 semanas, skimmer húmedo y cambio semanal del 15-20 %. Deja 15-20 cm entre el borde del capitulum y cualquier SPS, y sitúa el Sinularia aguas abajo de la corriente dominante respecto a los SPS. Vigila el contacto intraespecífico: dos colonias de distinto origen se agreden con necrosis en la línea de unión, mientras que fragmentos del mismo clon fusionan tejido si se mantienen inmovilizados 3-4 semanas. La respuesta a la luz es predecible pero lenta. Entre 100 y 200 µmol·m⁻²·s⁻¹ el capitulum se despliega por completo y los pólipos permanecen extendidos durante todo el fotoperiodo; por encima de 300 µmol·m⁻²·s⁻¹ la colonia se expande aún más, pero adelgaza el tejido y aparecen zonas translúcidas por pérdida de zooxantelas tras 3-4 semanas de exceso. Por debajo de 50 µmol·m⁻²·s⁻¹ alarga el tallo, reduce el capitulum y oscurece: es un ajuste de fotoadaptación que tarda 3-5 semanas en revertirse. El flujo pesa tanto como la luz: necesita movimiento turbulento y alternante de 10-20 veces el volumen/hora, nunca laminar. Con corriente unidireccional la cutícula acumula detritus y mucus en la cara de sotavento y la base se necrosa; con flujo insuficiente, los pliegues retienen sedimento y aparecen placas blanquecinas de tejido muerto. La morfología óptima —pliegues profundos tipo coliflor— se obtiene con flujo alternante de 15x y unos 150 µmol·m⁻²·s⁻¹. Los fallos poco frecuentes se agrupan en cuatro escenarios. Primero, necrosis basal con base blanda: no es infección, sino acidosis local por CO₂ y detritus atrapado bajo el capitulum; aspira esa zona semanalmente y dirige aireación al tallo. Segundo, colapso súbito en 24-48 horas tras una subida térmica por encima de 29,5 °C, con tejido desprendiéndose en láminas y olor fétido: cuadro compatible con Vibrio; aplica baño de yodo a 5 mL/L durante 10 minutos y aísla en cuarentena, nunca antibióticos de amplio espectro en el sistema principal. Tercero, fracaso de fijación de esquejes: el cianoacrilato sobre tejido blando provoca necrosis y desprendimiento; fija con goma elástica o palillo a roca viva rugosa y mantén 2-3 semanas con flujo suave indirecto. Cuarto, retracción crónica sin patógeno aparente: revisa yodo y potasio (380-420 mg/L) y descarta competencia alelopática de colonias situadas aguas arriba. Un desprendimiento mucoso semanal es normal; si ocurre a diario, hay irritación. ❓ PREGUNTAS FRECUENTES¿Cómo identificar Sinularia brassica y distinguirla de otras Sinularia?Sinularia brassica (Dana, 1846) es un octocoral de la familia Alcyoniidae. Forma colonias con lóbulos cortos, anchos y compactos, a menudo fusionados, de superficie rugosa por escleritos en clava y huso; los pólipos autozooides son cortos y los siphonozooides escasos. El color va de verde amarillento a crema o rosado pálido. No desarrolla ramas largas y flexibles como S. flexibilis ni copas pedunculadas como Sarcophyton glaucum. En el Indo-Pacífico ocupa planicies arrecifales y fondos someros hasta 10-15 m, con corriente moderada. ¿Qué parámetros de agua, luz y flujo necesita en acuario?Mantener 24-26 °C (máximo puntual 27 °C), salinidad 34-36 ppt (1.025-1.026), pH 8,1-8,4, alcalinidad 7-9 dKH, calcio 400-450 mg/L, magnesio 1250-1350 mg/L, nitrato 1-10 mg/L y fosfato 0,02-0,10 mg/L. Iluminación de 100-250 µmol·m⁻²·s⁻¹ PAR con fotoperiodo de 8-10 h; flujo moderado-alto e intermitente, del orden de 10-20 cm/s, sin chorro continuo directo. Tolera nutrientes más altos que los SPS, pero no amonio detectable ni oscilaciones bruscas de salinidad. ¿Es agresiva por alelopatía y cómo se controla?S. brassica compite mediante terpenos cembranoides y mucus que libera al agua, no tanto por nematocistos. En acuario esto puede frenar SPS y otros corales sensibles, sobre todo si está aguas arriba. Separar la colonia al menos 15-20 cm de SPS, evitar contacto físico con otros corales y usar carbón activado de forma continua, renovado cada 2-4 semanas, junto con skimmer eficaz. No colocar cerca de la entrada de bombas que devuelvan el mucus hacia corales sensibles. ¿Cómo se fragmenta y se fija correctamente?Cortar un lóbulo sano de al menos 3 cm con tijera estéril y guantes; el tejido libera mucus irritante. Dejar escurrir 1-2 minutos y fijar con goma elástica suave o malla sobre |
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