Favia speciosa

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Favia speciosa (Dana, 1846) es un coral pétreo masivo de la familia Merulinidae, conocido en la literatura clásica como Favia speciosa y reclasificado en la taxonomía actual como Dipsastraea speciosa. Forma colonias hemisféricas o aplanadas, de hasta 1 m de diámetro en el arrecife, con coralitos cerioides de 8-12 mm de diámetro, septos en tres ciclos y lóbulos paliformes bien marcados. La coloración es variable: marrón, gris, verdosa o crema, con discos orales frecuentemente contrastados en verde, azul o rosa. Es un LPS robusto, pero no un coral “para cualquier acuario”: su tejido es sensible a cambios bruscos de alcalinidad y a la irradiancia alta sostenida.

En acuario se adapta bien a tanques maduros, con roca viva y parámetros estables. La colocación ideal es sobre roca, en la zona baja o media, con la colonia bien asentada y sin enterrar el tejido. Necesita separación de 10-15 cm respecto a otros corales, porque Dipsastraea speciosa despliega tentáculos barredores y digestión extracoelentérica cuando contacta con vecinos; no debe colocarse junto a Acropora, Montipora o LPS de crecimiento rápido. Tolera bien la luz baja a moderada: un rango práctico es 50-150 µmol/m²/s de PAR, con fotoperiodo de 8-10 horas; por encima de 200 µmol/m²/s puede aclarar tejido y retraer pólipos. El flujo debe ser indirecto y medio, del orden de 10-20 cm/s, evitando chorros directos sobre el disco oral.

Parámetros de referencia específicos: temperatura 24-26,5 °C, salinidad 35 ppt, pH 8,1-8,4, alcalinidad 7,5-9 dKH, calcio 420-450 mg/L, magnesio 1280-1350 mg/L, nitrato 2-10 mg/L y fosfato 0,03-0,08 mg/L. La estabilidad de KH es más crítica que el valor absoluto: oscilaciones superiores a 1 dKH en 24 horas provocan retracción y necrosis basal. La alimentación es opcional pero beneficiosa: 2-3 veces por semana, por la noche, con mysis, copépodos o pellets de 1-2 mm; los pólipos capturan presas de forma activa cuando detectan extracto de crustáceo. Su crecimiento es lento, aproximadamente 0,5-2 cm anuales de diámetro colonial en cautividad, por lo que no debe esperarse una cobertura rápida.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

La posición taxonómica actual sitúa a la especie en Merulinidae, tras la reorganización de los antiguos Faviidae. En el comercio se sigue usando Favia speciosa, pero el nombre válido en bases de datos como WoRMS es Dipsastraea speciosa. No debe confundirse con Favites, cuyos coralitos comparten septos con mayor frecuencia, ni con Goniastrea, que presenta septos más exertos y una estructura colonial distinta.

La diagnosis se apoya en la combinación de colonia masiva, coralitos cerioides de 8-12 mm, septos en tres ciclos con lóbulos paliformes y columela trabecular. La especie presenta variabilidad morfológica alta según exposición y profundidad, lo que históricamente generó confusión con Dipsastraea pallida y otras especies del complejo.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Dipsastraea speciosa tiene una distribución amplia en el Indo-Pacífico: mar Rojo, África oriental, Madagascar, Seychelles, Maldivas, Indonesia, Filipinas, Gran Barrera de Arrecifes, sur de Japón, Micronesia y Polinesia. Su rango batimétrico abarca desde la superficie hasta unos 30 m, aunque es más frecuente entre 1 y 15 m. No es una especie dominante del cresta arrecifal batida por oleaje fuerte; aparece sobre todo en lagunas, llanuras arrecifales, zonas de back-reef y arrecifes costeros turbios, donde tolera sedimentación moderada y variaciones de temperatura y salinidad. En esos ambientes coloniza sustratos horizontales, bloques de coral muerto, cascajo consolidado y roca calcárea, a menudo en colonias parcialmente enterradas o rodeadas de sedimento fino.

Su hábitat natural implica luz moderada a baja y flujo no laminar: en el arrecife vive en zonas protegidas del oleaje directo, con movimiento de agua suave a medio. En el acuario esto se traduce en evitar la rampa de SPS con PAR alto y corriente fuerte; la colonia debe recibir flujo indirecto, preferably con cambios de dirección, y luz azulada de 10.000-14.000 K. La especie tolera cierta turbidez y nutrientes moderados, pero en cautividad conviene mantener nitrato y fosfato detectable y estable, no en cero absoluto, porque la simbiosis con zooxantelas y la captura de presas cubren requerimientos energéticos. Un exceso de fosfato por encima de 0,15 mg/L favorece algas filamentosas sobre el esqueleto y dificulta la expansión del tejido.

En el arrecife compite mediante tentáculos barredores y digestión externa, y suele ceder ante corales de crecimiento rápido en zonas muy iluminadas. Por ello, en el acuario debe ubicarse en una zona de crecimiento lento y con espacio libre alrededor; no es adecuado para roca viva recién curada ni para sistemas con KH inestable. Su resistencia a condiciones subóptimas es alta, pero la combinación de luz intensa, flujo directo y alcalinidad fluctuante produce retracción persistente y pérdida de tejido basal. Una colonia sana muestra pólipos expandidos durante el día, color uniforme y bordes de tejido adheridos a la roca; la aparición de líneas blancas en la base es señal de estrés por parámetros o por competencia.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Favia speciosa —nombre actualizado en taxonomía como Dipsastraea speciosa, aunque el comercio sigue usando Favia— es un coral pétreo colonial de morfología masiva. La colonia adulta forma cúpulas hemisféricas o placas gruesas de hasta 30-50 cm en el arrecife, con superficie relatively lisa pero claramente corrugada por los cálices. Los coralitos son cerioides: paredes comunes, sin ramificaciones, de contorno circular a poligonal irregular, con diámetro típico de 8-14 mm en colonias maduras. En cada coralito se distinguen septos en tres ciclos, con dientes laterales y lóbulos paliformes prominentes junto a la columela; esta columela es trabecular y poco profunda. Las costas externas son confluentes con las de coralitos vecinos, lo que da a la colonia ese aspecto de mosaico continuo.

El tejido del pólipo cubre el esqueleto y se retrae dentro del cáliz ante estímulos; durante el día suele mostrar la coloración de la colonia —verde oliva, marrón, gris o crema— con discos orales más claros, a veces amarillentos. Por la noche extiende tentáculos simples, no ramificados, de hasta 2-3 cm, que capturan presas planctónicas de 1-5 mm. Es un coral zooxantelado: aloja dinoflagelados simbióticos del género Symbiodinium en el gastrodermis, y la densidad de zooxantelas modula su color y su dependencia de la alimentación heterótrofa. La fotosíntesis simbiótica cubre buena parte de sus requerimientos energéticos, pero la captura de presas acelera el crecimiento y mejora la pigmentación. El esqueleto es de aragonito, denso y poroso a la vez, con crecimiento masivo lento; no forma ramas ni tallos, por lo que su expansión es lateral y vertical muy gradual.

A diferencia de otros LPS de tentáculos largos, Favia speciosa mantiene los pólipos relativamente recogidos durante el día, pero puede desarrollar tentáculos barredores nocturnos de varios centímetros en la periferia de la colonia. Esa capacidad agresiva es especie-específica y debe tenerse en cuenta al colocarla: no es un coral pasivo frente a vecinos cercanos.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Es un LPS robusto, pero no tolera fluctuaciones amplias de alcalinidad ni fosfatos elevados de forma crónica. Los valores siguientes son objetivos estables para acuario marino de arrecife; la estabilidad importa más que perseguir el extremo de cada rango.

La luz excesiva —PAR sostenido >300 µmol·m⁻²·s⁻¹— puede provocar retracción persistente y decoloración en Favia speciosa, sobre todo si coincide con nutrientes muy bajos. El flujo debe renovar el agua entre coralitos sin golpear los pólipos: un flujo laminar fuerte desplaza el tejido y favorece infecciones en los bordes de crecimiento.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocar sobre roca viva estable, en la zona media o baja del arrecife, con la superficie de la colonia ligeramente inclinada para que no acumule sedimento. No es un coral de arena: el enterramiento parcial del tejido provoca necrosis localizada. Dejar una separación mínima de 10-15 cm respecto a otros LPS —Euphyllia, Lobophyllia, Acanthastrea— y respecto a corales de crecimiento rápido, porque sus tentáculos barredores nocturnos pueden alcanzar varios centímetros. En acuarios con SPS, situarla en un punto de sombra parcial o luz media evita competencia directa por espacio.

El crecimiento es masivo y lento: en condiciones óptimas, un aumento de 2-5 mm de diámetro al año es realista; colonias pequeñas pueden parecer estancadas durante meses mientras engrosan el esqueleto. La expansión se produce por crecimiento marginal de los coralitos y por división intracalical en la periferia. No esperar tapizados rápidos: la colonia gana volumen antes que superficie visible. Mantener Ca, KH y Mg estables es más determinante para el crecimiento que la alimentación, aunque dos o tres capturas semanales de mysis o plankton de 1-3 mm mejoran la densidad de tejido.

Para fragging, usar sierra de banda con hoja de diamante y refrigeración húmeda; el esqueleto denso genera calor y un corte seco daña el tejido. Seleccionar una rama o protuberancia con 3-5 coralitos completos y un fragmento mínimo de 2-3 cm. Realizar el corte perpendicular a la superficie, dejando 3-5 mm de tejido sano alrededor de la línea de corte. Evitar cortar por el centro de un coralito: secciona la columela y retrasa la regeneración. Tras el corte, hacer un baño de yodo diluido —Lugol a 1-2 gotas/L durante 5-10 minutos— y colocar el fragmento en cuarentena con luz baja (50-80 µmol·m⁻²·s⁻¹), flujo moderado e indirecto. La cicatrización tarda 2-4 semanas; no manipular ni encolar de nuevo hasta que el tejido cubra el borde del corte. El fragmento puede tardar 2-3 meses en reanudar crecimiento visible. No fraccionar colonias recién importadas ni sometidas a cambios de parámetros recientes: el estrés combinado de corte y aclimatación es la principal causa de pérdida de tejido en esta especie.

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Agresividad propia. Dipsastraea speciosa (descrita por Dana en 1846 como Favia speciosa, género reasignado tras la revisión de Budd et al., 2012) no es un coral pasivo. Desarrolla tentáculos barredores filiformes que emergen del borde de los cálices entre 2 y 4 horas después del apagado, con un alcance real de 10-15 cm en colonias de más de 8 cm de diámetro. Además extruye filamentos mesentéricos al contacto directo. En la práctica esto significa que puede matar tejido de Montipora capricornis, Seriatopora hystrix o fragmentos pequeños de Acropora en dos o tres noches. Deja un perímetro libre de 12-15 cm y no lo coloques nunca en el mismo bloque de roca que Galaxea fascicularis, Hydnophora rigida, Physogyra lichtensteini ni Euphyllia glabrescens: pierde siempre, y la necrosis empieza por los cálices periféricos, que no regeneran.

Peces compatibles. Convive sin problema con Amphiprion ocellaris, Chromis viridis, Pseudanthias squamipinnis, Gramma loreto, blénidos del género Ecsenius, gobios y lábridos como Halichoeres chrysus. Cirrhitichthys falco suele usarlo como percha sin dañarlo, y los cirujanos pastoreadores (Ctenochaetus strigosus, Zebrasoma flavescens) lo ignoran porque su dieta es de algas sobre roca. El riesgo real viene de los caetodóntidos de alimentación facultativa: Chaetodon auriga, C. lunula, C. mertensii y C. collare despojan una colonia de 10 cm de pólipos en 24-48 horas, empezando por los cálices con mayor densidad de paliformes. Lo mismo cabe decir de pomacántidos de talla media-grande (Pomacanthus imperator, P. navarchus, Apolemichthys xanthopunctatus), de Canthigaster valentini —que arranca fragmentos de esqueleto con el pico— y de Arothron hispidus o Balistoides conspicillum, capaces de triturar la colonia entera. Un ejemplar aclimatado soporta picoteos esporádicos, pero el hostigamiento continuo provoca recesión crónica desde la base sin signo de enfermedad aparente.

Invertebrados. Seguros: Lysmata amboinensis y L. boggessi (esta última hurta alimento del disco, sin daño), Nassarius, Trochus, Tectus, Mespilia globulus y

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

Favia speciosa es una de las especies peor identificadas del comercio: la mayoría de colonias vendidas con ese nombre son en realidad Dipsastraea pallida, D. matthaii o Coelastrea aspera. Los consejos siguientes asumen la especie real, pero empiezan por la verificación taxonómica porque condiciona todo lo demás.

• Verifica la identificación antes de tocar nada. F. speciosa (Ellis & Solander, 1786) es la especie tipo del género: cálices cerioides de 6-12 mm con paredes compartidas y costas continuas de un cáliz al siguiente, columela trabecular (maraña esponjosa, no plaqueta sólida) y lóbulos paliformes marcados en los septos. Si tus cálices miden 3-5 mm y la columela es una lámina compacta, tienes Dipsastraea, que tolera más luz y crece más rápido.
• Luz: 80-150 PAR, techo de 200. Colócala en la mitad inferior del tanque o en zona media con sombreado parcial. El exceso lumínico se manifiesta como blanqueamiento del disco del cáliz con tejido retraído y bordes aún coloreados; la falta de luz, como alargamiento y palidez general. Fotografía la colonia con exposición fija cada mes: es el mejor registrador de tendencia.
• Flujo de 10-20 cm/s. Los pólipos deben ondular sin retraerse. Evita corrientes unidireccionales sostenidas: acumulan detritus en la superficie del cenosarco y favorecen algas en el tejido muerto. Alterna con oscilación periódica.
• Alimenta de noche. Los tentáculos se extienden entre 30 y 60 minutos después del apagado. Suministra mysis de 3-5 mm, krill picado o pellets de 1,5 mm, un trozo por pólipo, una o dos veces por semana. Si la respuesta de captura tarda más de dos minutos, el ejemplar está estresado o enfermo.
• Es muy agresiva: 12-15 cm de distancia mínima. Desarrolla tentáculos barredores de 5-8 cm y moviliza filamentos mesentéricos sobre Acropora, Montipora y LPS de tejido blando. La dirección del daño casi siempre va del Favia hacia el vecino, no al revés.
• Parámetros: 24-26 °C, densidad 1.025-1.026 (35 ppt), KH 7,5-9,5 dKH con deriva máxima de 0,3 dKH/día, Ca 410-450 ppm, Mg 1280-1350 ppm, NO₃ 3-10 ppm, PO₄ 0,03-0,09 ppm. Tolera valores altos razonablemente bien, pero no la inestabilidad: un salto de 2 dKH en 24 h provoca retracción y exposición de septos.
• Vigila la enfermedad del tejido marrón. Una masa gelatinosa parda que avanza ~1 cm/hora tras un daño mecánico o un pico térmico. Actúa rápido: aspira el tejido afectado, baño de yodo a 50 mg/L durante 10 minutos y corta 5 mm por delante del frente de avance. F. speciosa es especialmente sensible después de fragmentar.
• Fragmentación con sierra de banda. Corta perpendicular a las paredes del coralito, deja un mínimo de 4 cálices viables por fragmento y sella los bordes con el propio corte limpio (sin cepillar). Baño de yodo y tres semanas en zona de flujo medio y luz atenuada.
• Revisa la base y las zonas muertas. Waminoa (planarias acelomadas) y caracoles del género Coralliophila se instalan en la cara inferior y en el esqueleto expuesto. Retíralos manualmente con pinzas; no hay tratamiento químico seguro en tanque de arrecife.
• Asume un crecimiento lento: 0,5-1,5 cm de diámetro al año en condiciones óptimas. Una colonia de 12 cm puede tener 15-20 años. Esto implica que cualquier pérdida de tejido tarda meses en recuperarse y que la estabilidad a largo plazo vale más que cualquier aditivo.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

Calendario orientado al hemisferio norte y a un acuario con control térmico; los valores son objetivos de trabajo, no rangos de tolerancia.

12. ✅ CONCLUSIÓN

Favia speciosa no es un coral difícil: es un coral estable. Su metabolismo lento, su tolerancia a aguas con nutrientes moderados (NO₃ 3-10 ppm, PO₄ 0,03-0,09) y su capacidad de capturar alimento lo convierten en un LPS sólido para tanques maduros, pero castiga con dureza la improvisación: un pico térmico, un salto de alcalinidad o un roce con un vecino agresivo dejan lesiones que tardan meses en cerrarse, y su crecimiento de 0,5-1,5 cm anuales hace que el margen de error sea pequeño. El éxito con esta especie se reduce a tres decisiones: confirmar que realmente tienes Favia y no Dipsastraea, darle zona baja con flujo moderado y 12-15 cm de espacio libre, y alimentarla de noche de forma sistemática. Todo lo demás —aditivos, iluminación espectacular, potenciadores de color— aporta poco a un animal que responde sobre todo a la constancia.

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

Dipsastraea speciosa (descrita clásicamente como Favia speciosa) calcifica a un ritmo lento, típicamente 2-5 mm de extensión radial al año en acuario, y ese metabolismo pausado debe dictar el acoplamiento del sistema. Fija la alcalinidad en 7,5-8,5 dKH y evita oscilaciones superiores a 0,5 dKH diarios: una caída brusca de 1,5 dKH provoca retracción y exposición del esqueleto en los valles corallíticos antes que en cualquier Acropora. Calcio 410-440 mg/L y magnesio 1280-1350 mg/L sostienen la calcificación sin precipitación de carbonatos. Mantén salinidad de 35 g/L (1,026) con refractómetro calibrado; tolera 34-36 g/L, pero un descenso a 32 g/L por relleno de agua dulce sin control produce pérdida de turgencia del tejido. A diferencia de los SPS estrictos, admite nitrato 5-15 mg/L y fosfato 0,05-0,12 mg/L sin oscurecerse; de hecho, los sistemas ultraoligotróficos (NO₃ <1 mg/L) lo palidecen y frenan la deposición de aragonito. Dosifica con bomba peristáltica y verifica cada 48 horas durante las tres primeras semanas.

Esta especie no emplea tentáculos barredores: su arma es la extrusión de filamentos mesentéricos digestivos, que proyecta a través del celenterón en pocas horas, casi siempre con el acuario a oscuras. Un ejemplar bien asentado puede digerir el tejido de un Montipora o de un Caulastrea situado a 2 cm, dejando una banda de esqueleto desnudo en 24-48 horas. Deja por tanto 6-10 cm de separación respecto a corales de crecimiento rápido y colócalo a favor de corriente de los blandos: Sarcophyton y Sinularia liberan terpenos (sarcophytol, sinulariolida) que inhiben su expansión polipal incluso a distancia. El carbón activo a 100-150 g/500 L, renovado cada 3-4 semanas, reduce esa carga alelopática. La competencia química también opera en sentido inverso: las exudaciones mucosas de Dipsastraea speciosa estimulan algas filamentosas sobre corales vecinos debilitados, así que no interpretes toda regresión del vecino como enfermedad. Observa de noche con linterna roja para detectar los filamentos antes de que el daño sea irreversible.

Procede de arrecifes someros y lagunas turbias del Indo-Pacífico, donde recibe PAR de 100-300 µmol/m²/s con picos ricos en azul y verde; en acuario, 80-150 µmol/m²/s (fotoperíodo de 9-11 horas) mantiene color y expansión sin quemar tejido. Sube la intensidad un 10-15 % semanal durante 4-5 semanas: por encima de 250 µmol/m²/s sin aclimatación aparece retracción diurna, moco espeso y, en 7-10 días, blanqueamiento marginal que avanza desde el borde del coralito. La exposición a LED con picos en 400-420 nm sin filtro UV puede inducir fluorescencia exacerbada y pérdida de zooxantelas. En cuanto al flujo, exige movimiento turbulento e intermitente, con 15-25 renovaciones/hora y velocidad de 10-20 cm/s sobre la colonia; el flujo laminar constante y directo erosiona el tejido del lado de impacto, mientras que por debajo de 5 cm/s la sedimentación en los valles corallíticos asfixia los pólipos y abre la puerta a cianobacterias. Alterna bombeo cruzado con pausas breves para generar oscilación y autolimpieza.

El «polyp bailout» —expulsión de pólipos vivos que se dispersan y acaban muriendo— es la respuesta extrema de esta especie a un shock de alcalinidad, salinidad o a una subida de materia orgánica; no lo confundas con necrosis infecciosa. Si aparece, corrige el parámetro desviado y no hagas cambios masivos de agua. Los acelos Waminoa spp. proliferan sobre su superficie: no parasitan directamente, pero sombrean el tejido, así que elimínalos con control biológico (Halichoeres chrysus, Pseudocheilinus hexataenia) antes de recurrir a baños de yodo, que este coral tolera mal. Esponjas perforantes del género Cliona y gusanos sipuncúlidos excavan el esqueleto desde la base y se detectan por poros y detritos finos: fragmenta y descarta la zona afectada, pues no hay tratamiento in situ. La retracción crónica de un solo coralito en una colonia expandida suele delatar una vermétida o un cangrejo galátido alojado en la base; revisa de noche. Por último, el sombreado por algas coralinas incrustantes en el margen frena la expansión: raspa el borde cada 2-3 meses.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Favia speciosa o Dipsastraea speciosa? ¿Cómo la identifico?

El nombre comercial Favia speciosa (Dana, 1846) sigue siendo el más extendido en acuariofilia, pero la revisión de Budd et al. (2012) trasladó la mayoría de los Favia del Indo-Pacífico al género Dipsastraea, hoy aceptado en WoRMS. Familia Merulinidae, orden Scleractinia. La clave diagnóstica frente a Favites es que Dipsastraea tiene paredes de coralito separadas (no compartidas), coralitos de 8–14 mm con 24–36 septos en tres ciclos y lóbulos paliformes marcados. D. favus presenta cálices mayores (10–20 mm) y menos septos. En el comercio abundan ejemplares de 5–10 cm de diámetro, marrón verdoso con discos más claros.

¿Qué parámetros de agua tolera?

Temperatura 24–26 °C (límite superior 28 °C), densidad 1.025–1.026 (35 g/L), pH 8,1–8,4, calcio 420–450 mg/L, alcalinidad 7–9 dKH (2,5–3,2 meq/L) y magnesio 1280–1350 mg/L. Acepta nutrientes algo más altos que un SPS estricto —NO₃ 2–5 mg/L y PO₄ 0,02–0,06 mg/L— porque en la naturaleza coloniza lagunas y arrecifes turbios; por debajo de NO₃ 0,5 mg/L se palidece y pierde color. Es un coral robusto para ciclados estables, pero muy sensible a oscilaciones de salinidad por reposición de agua dulce.

¿Cuánta luz y corriente necesita?

PAR de 100–250 µmol·m⁻²·s⁻¹ con fotoperiodo de 10–12 h; tolera 50 µmol en acuarios con buena alimentación heterótrofa, pero con menos de 80 µmol el crecimiento se frena y el color se apaga. Procede de 0–30 m de profundidad, así que rinde mejor en la mitad inferior o central del acuario. Corriente indirecta y alternante de 10–20 cm/s: suficiente para mover los pólipos sin arrastrar sedimento, que se deposita en los cálices y provoca necrosis local. Evita chorros laminares directos sobre el tejido.

¿Es necesario alimentarla?

Es mixótrofa obligada en la práctica: los zooxantelos cubren parte de su demanda, pero la captura de presas aumenta la tasa de calcificación y la reserva lipídica. Extiende tentáculos de captura 1–2 h después del apagado. Ofrece mysis, artemia enriquecida, copépodos o pellets de 1–2 mm, 2–3 veces por semana, una pieza por pólipo y sin exceder lo que retira en 15 minutos. Anthony y Fabricius (2000) demostraron que en aguas turbias la heterotrofia puede aportar más energía que la fotosíntesis, de ahí su tolerancia a luz moderada.

¿Es agresiva? ¿Dónde la coloco?

Es uno de los LPS más agresivos: desarrolla tentáculos barredores nocturnos que se extienden 5–10 cm y digieren el tejido de vecinos. Deja 10–15 cm de separación con otros LPS y 20 cm con SPS; sitúala a sotavento de la corriente para que sus tentáculos no lleguen a colonias sensibles. Fíjala sobre roca firme: es incrustante y masiva, ensancha la base y sobrecrece el sustrato, pero no se fija bien en arena. La competencia química también ocurre, así que el carbón activo ayuda en acuarios densos.

¿Cómo crece, se fragmenta y qué problemas presenta?

Crecimiento radial lento, 0,5–2 cm/año; una colonia de 10 cm puede tardar años en duplicar diámetro. Para fragmentar, usa sierra de disco diamantado o cizalla y corta bloques con al menos 3–4 pólipos intactos, evitando atravesar cálices si es posible; cura 2–3 semanas en zona de luz media y corriente suave. Problemas típicos: caracoles Drupella, Acanthaster planci en el origen, infecciones por ciliados («jelly marrón») y necrosis rápida por heridas o sedimentación. Un baño de yodo tras el corte reduce la incidencia.

📚 REFERENCIAS

• Budd, A.F., Fukami, H., Smith, N.D. & Knowlton, N. (2012). Taxonomic classification of the reef coral family Mussidae (Cnidaria: Anthozoa: Scleractinia). Zoological Journal of the Linnean Society, 166: 465–529.
• Huang, D., Benzoni, F., Fukami, H., Knowlton, N., Smith, N.D. & Budd, A.F. (2014). Taxonomic classification of the reef coral families Merulinidae, Montastraeidae and Diploastraeidae. Zoological Journal of the Linnean Society, 171: 277–355.
• Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, Volume 2. Australian Institute of Marine Science, Townsville.
• WoRMS Editorial Board. Dipsastraea speciosa (Dana, 1846). World Register of Marine Species (consultado 2024).
• Borneman, E.H. (2001). Aquarium Corals: Selection, Husbandry and Natural History. TFH/Microcosm, Neptune City.
• Anthony, K.R.N. & Fabricius, K.E. (2000). Shifting roles of heterotrophy and autotrophy in coral energetics under varying turbidity. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 252: 221–253.

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