Acropora granulosa

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Acropora granulosa es una acropórida de pequeño formato que el aficionado avanzado identifica por dos rasgos difíciles de confundir: la superficie «arenosa» de sus corallites, con paredes engrosadas y densamente granuladas, y su crecimiento encostrante-corymboso, con ramas cortas y romas que rara vez superan los 3-4 cm de longitud sobre una base que se expande lateralmente. Una colonia madura en acuario ocupa habitualmente entre 10 y 25 cm de diámetro, con ramificaciones tan próximas que la colonia parece una placa irregular con protuberancias antes que un coral ramificado al uso. Los ápices axiales son pequeños, a menudo poco prominentes o incluso hundidos entre los corallites radiales, lo que refuerza esa silueta compacta y «mamelonada».

El color es igualmente característico: tonos crema, beige, marrón claro o verde pálido, con ápices y bordes de crecimiento que viran a azul lavanda, lila o rosa sucio. No es una especie de fluorescencia intensa; su atractivo es estructural. Bajo iluminación actínica potente los ápices azulados destacan, pero el cuerpo de la colonia permanece discreto. Este detalle es relevante porque muchos aficionados compran fragmentos oscuros y se decepcionan: A. granulosa nunca será una A. millepora fluorescente, y compararla con ella lleva a sobreexponerla innecesariamente.

Su interés práctico reside en el nicho que ocupa en el acuario. Frente a las acróporas de ramas finas y tejido delicado, A. granulosa presenta un cenosarco más grueso, corallites pequeños y muy empaquetados y una tolerancia relativa a niveles de nutrientes moderados (NO₃ 2-5 mg/L, PO₄ 0,03-0,08 mg/L) que en otras especies del género preceden a la necrosis de tejido. En tanques bien establecidos, con parámetros estables más que perfectos, es una SPS razonable para dar el salto desde los blandos/LPS a las acróporas. No es, en cambio, una especie para arranque: exige estabilidad de alcalinidad (no tanto un valor bajo como una ausencia de oscilaciones) y madurez biológica del sistema.

Su crecimiento es lento comparado con A. formosa o A. yongei: en condiciones óptimas produce una capa encostrante de extensión apreciable antes de elevar ramas, de modo que el fragmento pasa semanas «sin hacer nada» mientras construye base. Ese comportamiento es normal y no indica falta de luz.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

La diagnosis específica se apoya en la combinación de: corallites radiales pequeños (1-1,5 mm de diámetro), tubulares, muy próximos entre sí y con la pared engrosada por granulación densa; corallite axial reducido, frecuentemente inmerso; y ramas cortas, cónicas, agrupadas en disposición corymbosa o encostrante. La granulación del cenosarco —de ahí el epíteto granulosa— es el carácter que da nombre a la especie y el que conviene verificar al recibir un fragmento, porque separa esta especie de morfotipos juveniles de A. humilis o A. nasuta, de corallites más prominentes y labios salientes.

La identificación de acropóridas por morfología es problemática: la plasticidad fenotípica en función de luz y flujo produce colonias de la misma especie con formas muy distintas, y la taxonomía del género ha sido revisada con datos moleculares. En la práctica de acuariofilia, el fragmento etiquetado como A. granulosa debe mostrar la granulación cerrada y los ápices azulados; si carece de ellos, probablemente sea otra especie del complejo.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Especie de amplia distribución indopacífica: desde el mar Rojo y la costa oriental de África hasta el Pacífico central, incluyendo Madagascar, Seychelles, Indonesia, Filipinas, Papúa Nueva Guinea, Gran Barrera de Coral, islas Ryukyu y archipiélagos del Pacífico insular. Ocupa un rango batimétrico amplio, aproximadamente de 1 a 30 m, pero su abundancia se concentra entre los 5 y los 20 m, en el arrecife posterior (back reef), laderas inferiores y lagunas con cierta turbidez.

Su microhábitat es muy específico y explica buena parte de su comportamiento en cautividad. A. granulosa coloniza con frecuencia sustratos verticales, paredes de canales, caras sombreadas de cabezos y zonas sobre las que se deposita sedimento fino, donde otras acróporas de ramas finas no prosperan. Tolera sedimentación moderada y niveles de luz claramente inferiores a los de la cresta arrecifal: observaciones in situ la sitúan en zonas con irradiancias que en superficie equivalen a un rango moderado, con valores atenuados por profundidad y turbidez. Es además frecuente en ambientes con enriquecimiento orgánico natural (desembocaduras, lagunas interiores), lo que se traduce en su ya mencionada tolerancia a nutrientes moderados en acuario.

El hidrodinamismo de sus localidades típicas es de moderado a fuerte pero no de golpe directo: corrientes unidireccionales suaves y flujo oscilante en el arrecife posterior, con zonas de sombra hidráulica donde el movimiento es menor. No es una especie de cresta batida por el oleaje. En cultivo, esto se traduce en colocación a media altura del tanque, con PAR aproximado de 150-300 µmol·m⁻²·s⁻¹ (fotoperiodo 10-12 h) y flujo medio, alternante y amplio; la exposición directa a bombas de alta velocidad provoca retracción de pólipos y erosión de tejido en los bordes expuestos, mientras que un flujo insuficiente favorece la acumulación de detritus entre ramas y la aparición de algas filamentosas en la base.

Como el resto de su género, es hermafrodita simultánea con desove masivo sincronizado (fecundación externa, larvas plánulas), y en el arrecife compite por espacio con macroalgas y otros escleractinios mediante agresión por digestión extracorpórea y crecimiento lateral. Esa capacidad de expansión encostrante es la que aprovecha el acuarista al fragmentarla: los cortes cicatrizan rápido sobre roca viva porosa y fijan la colonia con rapidez, aunque la aclimatación a un nuevo régimen de luz exige 3-4 semanas de subida progresiva para evitar blanqueamiento en los ápices.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Forma colonial. Acropora granulosa (Milne Edwards & Haime, 1860) construye colonias corymbosas: una base incrustante de la que emergen ramilletes cortos y erectos, de 10-30 mm de longitud y 8-12 mm de grosor en la base, que se afinan hacia un ápice romo. En el arrecife forma tableros de 30-60 cm; en acuario la cepa se mantiene compacta los primeros meses y después abre lateralmente hasta ocupar 20-25 cm. No es una especie astada de ramas largas: si tu fragmento desarrolla ramas de más de 5 cm sin subdividirse, probablemente sea A. nasuta o A. secale, sus confusiones más habituales en el comercio.

Corallites y coenosteum. El carácter diagnóstico es la textura: el coenosteum (la superficie entre corallites) está cubierto de gránulos y espínulas finas y densas que le confieren un aspecto mate y áspero al tacto, de ahí el epíteto granulosa. El corallite axial mide 1,5-2,5 mm de diámetro, con apertura redondeada y margen ligeramente exerto; los radiales son tubulares, aplicados (appressed), de 1-1,5 mm, ordenados en hileras regulares y sin labios sobresalientes marcados. La separación entre radiales contiguos es de 1-2 mm, lo que produce la apariencia de «empedrado» típica de la especie.

Pólipos y color. Los pólipos son pequeños (1-1,5 mm), retráctiles, y en acuario su expansión diurna es discreta: no interpretes una extensión moderada como señal de mala salud, es su comportamiento normal. La coloración va del crema y beige al marrón claro, con ápices y márgenes de crecimiento en azul lavanda, violeta o verde pálido; los pólipos pueden mostrar tonos verdosos. La pigmentación procede mayoritariamente de cromoproteínas de baja fluorescencia, de modo que bajo luz actínica no «brilla» como A. millepora.

Esqueleto y zooxantelas. Esqueleto de aragonito con extensión lineal de 3-6 cm/año en el arrecife y 1-4 cm/año en acuario. Aloja zooxantelas del género Cladocopium (clado C, típicamente C1/C3), con densidad de simbiontes ajustable a la luz: a mayor PAR, menor densidad y más pigmento hospedador (ápices más azules); a menor PAR, coloración más parda. Su plasticidad para cambiar de clado simbionte es limitada, por lo que variaciones bruscas de iluminación producen decoloración en 2-3 semanas.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Lectura de los parámetros. A diferencia de A. aculeus o A. echinata, A. granulosa tolera agua con nutrientes detectables y, de hecho, rinde mejor en ellas: mantener NO₃ en 5 mg/L y PO₄ en 0,05 mg/L conserva el contraste entre el cuerpo crema y los ápices azules. Los sistemas ULNS (NO₃ <0,5; PO₄ <0,02) la llevan a un estado pálido y a un crecimiento casi nulo, con regresión de tejido en la base por sombreado. El punto crítico es la alcalinidad: una caída de 1 dKH en menos de 24 h provoca quemazón de ápices (tip burn) y, con frecuencia, necrosis rápida desde la base.

Iluminación. Iluminación de tipo intermedio-alto. Con LED, 250-350 PAR en la posición definitiva; con T5, dos tubos azules y dos blancos a 25-30 cm de la superficie. Empieza el fragmento a 150-180 PAR y sube 20-25 PAR por semana hasta el objetivo. Bajo exceso de luz (por encima de 500 PAR sin aclimatar) responde cerrando pólipos y aclarando el tejido basal, mientras los ápices se mantienen; bajo defecto se alarga y pierde el hábito corymboso, volviéndose columnar.

Flujo. Necesita flujo aleatorio medio-alto para evitar sedimentación en la maraña de ramilletes, que es su punto débil: la acumulación de detrito entre ramas produce necrosis por anoxia en 5-7 días. Apunta a 30-40 renovaciones por hora con corrientes cruzadas alternas; un flujo laminar constante de más de 50× puede pelar tejido en ápices finos.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocación. Sitúala en el tercio medio o medio-superior, sobre roca firme y con una corona libre de 15-20 cm de radio, porque crece en horizontal y no admite competencia: sus filamentos digestivos extracelulares necrosan el tejido de cualquier SPS vecino a menos de 3-4 cm, y ella misma es la perdedora frente a Montipora incrustante y zoantídeos. Evita el contacto con la roca viva por la cara inferior: la sombra y el detrito pudren la base. Fíjala con cianoacrilato gel o masilla epoxi aplicada solo sobre esqueleto seco, nunca sobre tejido vivo (la masilla quema el coenosteum y abre una vía de infección bacteriana).

Crecimiento. La secuencia es: incrustación basal 3-6 semanas, formación de 4-8 yemas axiales y apertura lateral a los 3-4 meses. En condiciones estables, 2-5 cm de extensión radial al año; una colonia de 4 cm puede duplicar su biomasa en 12-18 meses. La coloración de ápices es el mejor indicador de crecimiento activo: ápices pálidos

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Acropora granulosa es una acrópora de ramas cortas, corallites pequeños y tejido fino, con colonias compactas y de perfil bajo. Esa arquitectura la hace menos expuesta a peces que nadan en aguas abiertas, pero muy vulnerable a especies que se posan, ramonean o muerden tejido. Su procedencia de ambientes mésicos, a menudo entre 10 y 30 m, implica que tolera bien la luz moderada, pero no compensa el estrés por manipulación o depredación con un crecimiento rápido: es una especie de crecimiento lento para el género.

Peces generalmente compatibles: gobios del género Gobiodon y Paragobiodon, que viven entre las ramas; blénidos pequeños; Cirrhilabrus, Paracheilinus, Pseudanthias y Chromis; cirujanos del género Ctenochaetus y Zebrasoma, siempre que no se mantengan en acuarios con algas filamentosas que les inciten a raspar cerca de la base. Los lábridos limpiadores y los ocelados pequeños no suponen riesgo. No debe confundirse compatibilidad con inmunidad: un pez que “no come coral” puede irritar pólipos al refugiarse repetidamente en la colonia.

Depredadores claros: mariposas obligadas o semifacultativas como Chaetodon lunula, C. trifasciatus, C. ornatissimus, C. meyeri y C. austriacus; ángeles enanos, sobre todo Centropyge loricula, C. flavissima y C. bispinosa, que picotean pólipos y mucus; ángeles mayores (Pomacanthus, Holacanthus); peces ballesta (Balistapus undulatus, Rhinecanthus); globos (Arothron, Canthigaster); loros (Scarus, Chlorurus) y el filefish corallívoro Oxymonacanthus longirostris. Los damiselas territoriales, especialmente Stegastes nigricans y Dascyllus trimaculatus en nidificación, pueden matar parches de tejido al cultivar algas o al desovar. Los halcones (Cirrhitichthys, Neocirrhites) no la comen, pero al posarse una y otra vez sobre las ramas causan retracción y erosión local.

Invertebrados: los cangrejos simbiontes Trapezia y Tetralia son beneficiosos, pues defienden la colonia de Acanthaster planci y de caracoles depredadores. Los cangrejos galudos (Cryptochirus) producen agallas y deben evitarse. Lysmata amboinensis y L. debelius son seguros; los ermitaños pueden volcar fragmentos y los erizos grandes (Diadema) raspar tejido al pastorear. Coralliophila spp. y los vermétidos son molestias directas. La estrella Acanthaster planci es un depredador grave. Frente a otros corales, A. granulosa es

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

Primero identifica; después ajusta parámetros. En el comercio se venden como Acropora granulosa colonias que en realidad son A. humilis, A. arabensis o híbridos del grupo. La granulosa auténtica forma placas corymbosas pequeñas, de ramas cortas y afiladas, con coralitos muy juntos que le dan ese aspecto granular que le da nombre, y axiles pequeños y poco prominentes. La diferencia es crítica: la granulosa procede de taludes profundos y aguas turbias (5-25 m), con zooxantelas adaptadas a poca luz, mientras que las especies con las que se confunde toleran el doble de irradiancia. Si compras «granulosa» y la colocas a 350 µmol·m⁻²·s⁻¹, la perderás en tres semanas.

Luz: el error más caro. Empieza a 100-130 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR) con fotoperiodo total de 8 horas y un pico de 4-5 horas a 180-200. Sube un 10 % cada 10 días hasta un máximo de 250; por encima de 300 aparece decoloración del coenosteum,-polyp retracción persistente y crecimiento nulo. Fotoperiodos de 12 horas con LED intensos blanquean esta especie incluso a PAR moderado. Si el tejido se aclara pero los pólipos siguen extendidos de noche, sospecha luz antes que nutrientes bajos.

Es un atrapa-detritos. La maraña de ramas cortas retiene sedimento y restos en la base y en el centro de la placa, donde se inicia la necrosis. Sopla la colonia semanalmente con jeringa de 10 ml o pipeta, dirigiendo el chorro desde abajo hacia arriba, y mantén una corriente alternante de 15-20 cm/s en la zona de la colonia (giro de bomba cada 6-12 horas). Corriente laminar constante y fuerte provoca retracción y bordes necróticos; corriente insuficiente, acumulación y RTN basal. Nunca la coloques en la parte alta ni justo bajo el rebosadero.

Alcalinidad y salinidad: dos decimales que matan. Mantén 7,3-8,0 dKH con variación diaria inferior a 0,25 dKH; por encima de 9,0 y con un pico de pH, esta especie sufre RTN desde la base en 24-48 horas. Dosifica la solución de carbonatos de noche para amortiguar el descenso de pH. Salinidad 34-35 g/L (1.025-1.026) medida con refractómetro calibrado con solución de referencia: un fallo de reposición de agua de ósmosis que baje la densidad a 1.022 provoca desprendimiento de tejido en la base en dos días. Calcio 420-440 mg/L, magnesio 1320-1350 mg/L, potasio 400-420 mg/L. Con NO₃ por debajo de 1 mg/L y PO₄ en 0,01 la colonia se vuelve pálida y deja de crecer: trabaja en 2-5 mg/L de NO₃ y 0,03-0,08 mg/L de PO₄.

Plagas y cuarentena. Es un imán para Amakusaplana acroporae (gusano plano de Acropora): las puestas quedan escondidas en los axiles y ningún baño las elimina. Haz tres baños de yodo o CoralRX separados 6 días y mantén 6 semanas de observación en cuarentena antes de montarla. Vigila Tegastes acroporanus (red bugs): puntos rojizos de 0,5 mm y pérdida de color con pólipos cerrados. No manipules la colonia sin guantes: la piel aporta bacterias y la granulosa responde con bandas necróticas en las zonas de roce.

Fragmentación. Corta ramas de 2-3 cm con tijera limpia, pega con cianoacrilato gel fuera del agua el mínimo tiempo posible y deja curar 3 semanas en un soporte a 120 µmol·m⁻²·s⁻¹. La tasa de enquistamiento es lenta: 1-2 mm al mes en la base del esqueje. No la fracciones en la misma sesión en que la has bañado.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

La granulosa responde al entorno del acuario, no al calendario, pero la estación modifica temperatura, evaporación y humedad de la sala. Esta pauta estacional asume un acuario estable con controlador:

12. ✅ CONCLUSIÓN

Acropora granulosa no es una acrópora para empezar ni para el acuario de luz intensa y nutrientes a cero. Es una especie de talud, adaptada a luz moderada, agua con partículas y corriente cambiante; su punto débil es la base de la colonia, donde se acumulan detritos y donde se manifiesta cualquier desestabilización de la alcalinidad o de la salinidad. Si le das 150-220 µmol·m⁻²·s⁻¹, corriente alternante de 15-20 cm/s, 7,5 dKH estables, NO₃ en 2-5 mg/L y una limpieza semanal del entramado de ramas, mantendrás una colonia compacta, de color crema-verdoso con ápices azulados y crecimiento lento pero constante (0,5-1 cm de radio nuevo al mes).

Los tres fallos que explican la mayoría de las pérdidas son siempre los mismos: colocarla demasiado arriba y con demasiada luz, descuidar la reposición de agua de ósmosis y meterla sin cuarentena con gusanos planos. Ninguno de los tres se corrige después del RTN. Trátala como lo que es —una especie de aguas profundas y turbias— y no como una A. formosa de arrecife somero: la granulosa recompensa la moderación con una de las estructuras más elegantes del género y con una estabilidad que, en un acuario maduro, se traduce en años de crecimiento sin sobresaltos.

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

Acropora granulosa procede de taludes profundos y lagunas turbias, donde la química oscila más que en la cresta arrecifal; en acuario eso se traduce en tolerancia a nutrientes elevados pero intolerancia a la inestabilidad iónica. Fije dKH 7,0–7,7, Ca 420–440 mg/L, Mg 1300–1350 mg/L y K 390–410 mg/L, con salinidad 35 g/L medida por refractómetro calibrado. El acoplamiento es estricto: cada 1 dKH consumido por calcificación arrastra ≈7 mg/L de Ca; si repone solo con kalkwasser muy diluido, el Mg cae y el Ca se desproporciona, y la especie responde con recesión basal antes que con blanqueo. Con NO₃ 5–10 mg/L y PO₄ 0,03–0,08 mg/L la fase de incrustación se acelera a costa de la ramificación, produciendo colonias planas y lobuladas. Por encima de 0,15 mg/L de PO₄ el esqueleto se vuelve poroso y quebradizo en las ramas nuevas. Evite subidas de dKH superiores a 0,5 unidades/día: con tejido fino y coenosarco delicado, muestra quemazón apical con repuntes de 1 dKH.

En el arrecife A. granulosa es una competidora subordinada: coloniza sustratos libres entre colonias mayores y no mantiene territorios por alelopatía agresiva. Su perfil de diterpenos es poco potente, y en acuario eso significa que pierde frente a Sinularia, Sarcophyton, Lobophytum y Palythoa por inhibición química a distancia, sin contacto físico previo. El síntoma típico no es necrosis por contacto, sino caída de la tasa de calcificación y palidecimiento difuso del coenosarco en la cara expuesta al coral blando. Mantenga 25–30 cm de separación efectiva y compense con carbón activado a 100–150 mL por 100 L, cambiado cada 3–4 semanas. Ojo con el carbón: una sustitución brusca puede provocar aclaramiento por retirada súbita de sustancias húmicas unida a estrés químico. Frente a otras Acropora cede en los contactos: sus ramas cortas y gruesas generan una línea de necrosis de 2–4 mm que avanza lentamente.

Su fotobiología está adaptada a ambientes de baja irradiancia: en hábitats naturales de 15–30 m recibe a menudo 100–200 µmol·m⁻²·s⁻¹, con picos de 250. En acuario rinda 150–250 µmol·m⁻²·s⁻¹ con máximo de 300 en la zona superior, y espectro dominante azul (400–480 nm) con rojo bajo. Los cambios de luz son su punto débil: subidas superiores al 15 % semanal producen blanqueo del coenosarco, sobre todo en la base, más rápido que en A. formosa o A. millepora; haga rampas de 30–45 días. El flujo debe ser turbulento y alternante, con 15–25 cm/s sobre la colonia: la forma corimbosa autosombrea las ramas inferiores y acumula detritus en las axilas. Por debajo de 10 cm/s aparecen necrosis focales en las uniones. Cambie la dirección del flujo cada 6–8 horas con bombas oscilantes; un flujo laminar constante produce ramas asimétricas y puntos de sedimentación permanentes.

Problemas poco frecuentes: la parada de crecimiento tras el fragmentado es normal en esta especie, que invierte 4–10 semanas en incrustar antes de ramificar; no lo confunda con enfermedad. Una recesión basal de 3–5 mm/día con tejido intacto en el resto de la colonia suele

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Cómo distingo Acropora granulosa de otras Acropora de ramas cortas?

Es una especie hispidosa: de una base incrustante o placoide, a menudo extendida sobre roca desnuda, surgen ramas cortas y gruesas (2–4 cm) con ramificaciones secundarias breves y perpendiculares. El carácter diagnóstico es la textura: coralitos radiales apretados, de paredes gruesas y abertura redondeada, con cenénquima densamente granuloso que da un tacto de lija inconfundible. Los coralitos axiales son pequeños y apenas se elevan, a diferencia de A. humilis o A. digitifera, de ramas más lisas y coralitos inmersos menos marcados. Color pardo-rojizo, crema o púrpura con ápices pálidos o blancuzcos. Ocupa fondos sombreados y turbios, lo que explica su tolerancia relativa a sedimentos.

¿Qué parámetros exactos necesita en acuario?

Densidad 1.025–1.026 (34–35 ppt), temperatura 25–26 °C (tolera picos de 27 °C, no sostenidos), KH 7–8 dKH, calcio 420–440 mg/L, magnesio 1300–1350 mg/L, NO₃ 2–5 mg/L y PO₄ 0,03–0,06 mg/L. Es más importante la estabilidad que el valor absoluto: una oscilación de 1 dKH en 24 h provoca recesión basal en 48–72 h. Una colonia de 10 cm puede consumir 0,5–1 dKH diario, así que mide a la misma hora y ajusta con dosificación continua. Evita sistemas ultraoligotróficos (NO₃ indetectable): la especie palidece y entra en STN. Yodo y oligoelementos solo con test fiable; no dosifiques a ciegas.

¿Qué iluminación y corriente le doy?

Procede de hábitats turbios y frecuentemente sombreados: 150–250 µmol·m⁻²·s⁻¹ de PAR es su rango de confort. Si llega de importación, aclimata desde 100–120 PAR subiendo 20 PAR semanales; aclimatación directa a 400+ PAR la blanquea en la zona alta en una o dos semanas. Fotoperiodo 8–10 h con espectro 10–14 K o azul dominante. Corriente turbulenta y aleatoria, 20–30 veces el volumen del tanque por hora, alternando bombas; el flujo laminar directo desgarra tejido entre las ramas. Colócala a media altura, sobre roca firme y estable, nunca sobre arena, y deja 5 cm de separación respecto a otros corales agresivos.

¿Por qué pierde tejido en la base?

La recesión basal es su síntoma más habitual y casi siempre es ambiental: caída brusca de KH, temperatura por encima de 27,5 °C, sedimentación acumulada en las axilas de las ramas (que fermenta y desencadena necrosis bacteriana) o flujo insuficiente. Descarta primero estos tres factores antes de medicar. Inspecciona las zonas desnudas de noche con linterna: si ves puntos o cúmulos translúcidos de 1–2 mm, hay platelmintos. La iluminación excesiva produce blanqueamiento desde la punta, no desde la base. Actúa cortando el tejido necrótico 5 mm por debajo del borde sano y mejorando la corriente sobre la colonia.

¿Cómo la fragmento y fijo?

Corta ramas de 2–4 cm con alicate de hueso sobre una superficie limpia, sin aplastar el esqueleto. Seca ligeramente la base del esqueje con papel y fíjala con cianoacrilato gel sobre esquirla de roca o tapón; el pegamento húmedo no cura. Sumerge el fragmento antes en baño de yodo (Lugol’s 3–5 ml/L, 10–15 min) o producto comercial de coral. Curación: 10–14 días en 120–150 PAR y corriente moderada, sin manipular. La tasa de éxito es alta; el crecimiento típico es de 1–2 cm de rama al mes en condiciones estables. No manipules la colonia madre con manos desnudas ni la muevas repetidamente durante la semana siguiente.

¿Qué plagas y enfermedades la afectan?

Las tres principales: Amakusaplana acroporae (platelminto comecoral), que deja cicatrices claras y masas de huevos amarillentos en el esqueleto muerto; Tegastes acroporanus (red bugs), que provoca pérdida de pólipos y palidez con crecimiento detenido; y los “black bugs”, que requieren baño y cuarentena estricta. Enfermedades: necrosis tisular rápida (RTN) y banda blanca, ambas de manejo por corte y descarte del tejido afectado. El milbemicina no está autorizado en España, así que basa el control en cuarentena de 4–6 semanas, baños repetidos (días 0, 7 y 14) y revisión semanal de la cara inferior de las ramas, donde se refugian los platelmintos.

📚 REFERENCIAS

• Wallace, C.C. (1999). Staghorn Corals of the World: A Revision of the Genus Acropora (Scleractinia; Astrocoeniina; Acroporidae). CSIRO Publishing, Collingwood, 421 pp.
• Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, Vol. 1. Australian Institute of Marine Science, Townsville, 463 pp.
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• Borneman, E.H. (2001). Aquarium Corals: Selection, Husbandry, and Natural History. Microcosm/TFH, Neptune City, 464 pp.
• Delbeek, J.C. & Sprung, J. (2005). The Reef Aquarium, Vol. 3: Science, Art, and Technology. Ricordea Publishing, Coconut Grove.
• Carpenter, K.E., Abrar, M., Aeby, G. et al. (2008). One-third of reef-building corals face elevated extinction risk from climate change and local impacts. Science, 321(5888): 560–563.

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