Acropora hyacinthus

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Acropora hyacinthus es la acrópora tabular de referencia del Indo-Pacífico y una de las especies más reconocibles del género por su arquitectura: colonias corymbosas que se expanden horizontalmente en placas de bordes elevados, cubiertas en su cara superior por ramilletes verticales cortos, densos y apiñados que recuerdan a la inflorescencia del jacinto (de ahí el epíteto hyacinthus). En el arrecife, una colonia madura puede superar los 2 m de diámetro con apenas 15-25 cm de altura, una estrategia de «captura de luz» que maximiza la superficie iluminada y desborda por crecimiento lateral a los competidores.

En acuario, esta morfología se traduce en una placa que crece rápido —extensiones radiales de 1-3 cm al mes en condiciones óptimas— pero que rara vez desarrolla la densidad de ramilletes del medio natural si el flujo es unidireccional o la luz es insuficiente. Con 300-600 µmol·m⁻²·s⁻¹ de PAR y circulación alternante, los ramilletes se alargan 1-2 cm y la colonia adquiere el aspecto «erizado» típico; con menos de 200 µmol·m⁻²·s⁻¹ tiende a aplanarse, palidecer y perder los ápices coloreados. La coloración de la especie es variable pero característica: base crema, marfil o marrón muy claro, con ápices y bordes de coralitos en lavanda, azul, verde menta o rosa; los ejemplares de aguas someras y alta irradiancia suelen mostrar tonos pastel con ápices contrastados, mientras que los de aguas más profundas o de laguna son uniformemente pardos.

Es una especie exigente en estabilidad, no en «dificultad» intrínseca: tolera bien la luz y la corriente fuertes, pero es especialmente sensible a las oscilaciones de alcalinidad y a los picos de temperatura. Un descenso brusco de KH (de 8 a 5,5 dKH en 24 h) o un salto térmico de 2 °C por encima de 28 °C desencadena necrosis rápida de tejido (RTN) que puede consumir una placa de 20 cm en menos de 12 horas, a menudo comenzando por la cara inferior sombreada. Es también uno de los hospedadores preferentes del gusano plano depredador de acróporas (Prosthiostomum spp. y afines) y del copépodo Tegastes acroporanus, por lo que todo esqueje debe pasar cuarentena y baño de yodo o prazicuantel antes de entrar en el sistema.

Advertencia taxonómica para el acuarista avanzado: gran parte de lo que se vende como A. hyacinthus pertenece en realidad al complejo hyacinthus (A. cytherea, A. spicifera, A. subulata), morfológicamente solapado. La identificación fiable exige observar coralitos radiales aplanados y aplicados contra la rama, de paredes gruesas y cálices pequeños, sobre un coenosteo densamente espinuloso; si los radiales son tubulares y exertos, probablemente no sea hyacinthus.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

La especie fue descrita por James Dwight Dana como Madrepora hyacinthus y transferida a Acropora tras la reorganización del género. La revisión de Carden Wallace (1999) fijó los caracteres diagnósticos: colonias tabulares o corymbosas con ramilletes cortos, coralitos axiales pequeños y poco exertos, radiales dimidiados aplicados con pared exterior gruesa, y coenosteo reticulado con espínulas finas. El complejo hyacinthus es un caso clásico de especiación incompleta: estudios moleculares (Ladner y Palumbi; Richards y colaboradores) han demostrado flujo genético e hibridación entre morfotipos en simpatría, de modo que ni el ADN mitocondrial ni los marcadores nucleares delimitan especies biológicas nítidas. Prácticamente, esto implica que dos colonias visualmente idénticas pueden tener historias evolutivas distintas y respuestas fisiológicas diferentes al estrés térmico: una razón más para no generalizar parámetros entre esquejes y para clonar y seleccionar líneas robustas en cultivo.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Distribución amplia en el Indo-Pacífico tropical: mar Rojo y golfo de Adén, océano Índico (Maldivas, Seychelles, mar de Andamán), Triángulo de Coral (Indonesia, Filipinas, Papúa), Gran Barrera de Coral, archipiélagos de Micronesia y, hacia el este, hasta la Polinesia Francesa. Es una especie de aguas someras: su óptimo se sitúa entre 1 y 8 m de profundidad, y en el arrecife exterior coloniza preferentemente la cresta y el tercio superior del talud, donde forma rodales casi monoespecíficos de placas solapadas. Tolera la emersión breve durante las mareas vivas equinocciales en las llanuras arrecifales, con fluctuaciones térmicas de 24 a 31 °C y picos de irradiancia de 1.200-1.500 µmol·m⁻²·s⁻¹ al mediodía; también aparece en lagunas someras, pero allí sus colonias son más pardas, frágiles y de crecimiento lento.

Hidrodinámicamente es una especie de exposición: requiere flujo moderado a fuerte con componente alternante, que en el arrecife se traduce en velocidades de 10-25 cm·s⁻¹ con inversiones por oleaje y marea. Esa corriente es la que evita la sedimentación sobre la cara superior de la placa —su punto débil, ya que la arena acumulada entre ramilletes provoca necrosis local— y la que suministra el aporte planctónico que complementa la fotosíntesis. En acuario, traduzca esto a 25-40 renovaciones de volumen por hora con movimiento caótico o de vaivén, y evite colocar la colonia en zonas de sombra de flujo generadas por roca viva.

Parámetros de mantenimiento recomendados, calibrados para esta especie concreta:

• Temperatura: 24,5-26,5 °C; evitar sostenidamente más de 27,5 °C.
• Salinidad: 34-35 ppt (densidad 1,025-1,026 a 25 °C).
• KH: 7,0-8,0 dKH, con deriva máxima de ±0,3 dKH al día.
• Calcio: 420-440 mg/L; magnesio: 1.300-1.350 mg/L.
• pH: 8,15-8,35; potasio 380-420 mg/L si se dosifica.
• Nitrato: 1-5 mg/L; fosfato: 0,02-0,06 mg/L (por encima de 0,10 mg/L se apaga y parda).
• Luz: 300-600 µmol·m⁻²·s⁻¹ de PAR, fotoperiodo de 10-12 h.

Colóquela en la zona alta del paisaje, sobre una base de 5-8 cm para permitir el crecimiento radial sin contacto con el sustrato agresivo, y deje 15-20 cm de espacio libre alrededor: es una especie que gana espacio rápidamente y sombreará corales vecinos, incluidos otros SPS. El alimento particulado (rotíferos, nauplios, pods de 100-500 µm) es opcional y beneficioso en sistemas con nitrato muy bajo, pero nunca sustituye a la estabilidad química.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Acropora hyacinthus (Dana, 1846) pertenece al complejo de especies A. hyacinthus, un grupo de morfoespecies crípticas distribuidas por todo el Indo-Pacífico. Su forma colonial es corymboso-tabular: la colonia se inicia como un pequeño recubrimiento incrustante sobre la roca y, en pocos meses, emite ramas horizontales que se fusionan por coalescencia del coenosteum hasta formar una lámina o plato de una sola capa, con el borde ligeramente elevado. En el medio natural los platos maduros alcanzan 1–2 m de diámetro en lagunas protegidas; en acuario lo habitual es 20–40 cm tras tres o cuatro años. Un detalle clave para el manejo: el crecimiento se concentra casi exclusivamente en el margen del plato, donde se sitúan los coralitos axiales; la superficie central ya no genera ejes nuevos de forma activa, solo coralitos incipientes.

Los coralitos axiales, dominantes en el borde de crecimiento, son tubulares y de menor diámetro que en otras acropóridas tabulares. Los radiales son apresados, tubulares, de 1–2 mm de diámetro, con abertura dimidiada y separados 2–4 mm, dispuestos en hileras que convergen hacia coralitos axiales incipientes dispersos por la cara superior del plato; estos incipientes, de aspecto de «cepillo» y morfología en botella, son el carácter diagnóstico frente a A. cytherea o A. clathrata. El coenosteum es reticulado-perforado con espínulas finas y uniformes, lo que da a la superficie un tacto áspero y mate.

Los pólipos son pequeños (1–2 mm) y permanecen retraídos durante el fotoperiodo en la mayoría de las cepas; la expansión de tentáculos es nocturna, con captura activa de presas de 0,2–1 mm (nauplios, rotíferos enriquecidos, copépodos). La cara inferior del plato, sombreada, carece prácticamente de tejido con zooxantelas activas y aparece blanca o crema: ese color pálido ventral es fisiológicamente normal y no debe confundirse con un blanqueamiento. Las zooxantelas asociadas pertenecen al género Cladocopium (antes clado C de Symbiodinium), con tipos dominantes distintos según la región y la profundidad; ante estrés térmico la colonia puede reorganizar su comunidad hacia Durusdinium, pero esa sustitución reduce la tasa de calcificación.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

La geometría horizontal del plato condiciona la iluminación: la cara superior recibe irradiancia casi perpendicular, por lo que un PAR de 350 µmol·m⁻²·s⁻¹ medido a 10 cm por encima de la colonia puede superar los 600 en la propia lámina si se orienta perpendicular a la fuente. Con LED, use ópticas amplias (120°) y evite colocar el plato justo bajo un punto de luz concentrado, que produce zonas quemadas en el centro y crecimiento anormal del borde. Ejemplares procedentes de profundidad (20–30 m) requieren aclimatación de 6–8 semanas desde 150 hasta 400 µmol·m⁻²·s⁻¹. Una coloración pálida con bordes intensos suele indicar exceso de luz con nutrientes bajos, no un problema de salud.

El flujo debe ser turbulento y oscilante, nunca laminar y unidireccional: un chorro constante deforma el plato y provoca necrosis en el borde de sotavento. La cara inferior del plato genera una cámara semicerrada donde se acumulan detritos y se crea hipoxia local; es el punto de entrada más habitual de necrosis por bacterias anaerobias. Programe bombas en modo aleatorio con inversión de dirección cada 6–12 h para renovar el agua bajo la lámina.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

La colocación es el factor que más condiciona el resultado con esta especie. Necesita un radio horizontal libre de 30–40 cm para que el plato se expanda sin tocar cristales ni roca vertical, y debe situarse en la mitad superior del acuario con la lámina paralela a la superficie del agua. Evite ubicarla sobre otras acróporas o corales fotosintéticos: un plato de 25 cm proyecta una sombra densa que mata colonias situadas 15 cm por debajo. Tampoco la fije en voladizos con poca luz reflejada; la cara inferior necesita algo de difusión para no necrosarse en el punto de unión.

Tras el anclaje, la colonia dedica 4–8 semanas a incrustar la base; después comienza la extensión del margen a 5–10 cm de radio al año en condiciones óptimas (hasta 15 cm con KH estable, Ca >420 mg/L y alimentación nocturna regular). El consumo de alcalinidad se dispara con el crecimiento: mida KH a diario cuando el plato supere los 20 cm, ya que un descenso de 1 dKH en 24 h es habitual y provoca detención del crecimiento con puntas romas. Es una especie de fecundación externa y desove masivo (broadcast spawner), sincronizado en el Indo-Pacífico con las fases lunares de primavera; la reproducción sexual en acuario es excepcional.

Para fragmentar, use cizalla de hueso o sierra de banda de diamante y corte cuñas radiales de 3–5 cm extrayéndolas del margen del plato, de modo que cada fragmento incluya una porción del borde con coralitos axiales activos. Los fragmentos del centro del plato sin axiales cicatrizan pero tardan el triple y generan formas irregulares. Pegue con cianoacrilato en gel sobre disco cerámico manteniendo la orientación horizontal del tejido, sin enterrar el borde de crecimiento, y deje el esqueje en zona de flujo moderado (15–20 renovaciones/hora) durante 10–20 días; a las 48 h verifique que no hay línea de necrosis blanca avanzando desde el corte, y sumerja en yodo o baño coralino tras el corte para prevenir infecciones bacterianas. Antes de incorporar un fragmento nuevo, cuarentene y revise la presencia de gusanos planos depredadores de acróporas (Amakusaplana acroporae) y de copépodos Tegastes, a los que esta especie es especialmente vulnerable. Recuerde que todo el género Acropora está en el Apéndice II de CITES: priorice esquejes de acuicultura frente a colonias de importación.

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

Acropora hyacinthus (Dana, 1846) es la «tabla» por antonomasia del género: un coralíto axial dominante que extiende radialmente una lámina horizontal de coralitos inclinados hacia el margen. Esa geometría —y no la especie en abstracto— define todo su manejo en cautividad: la cara inferior de la placa es una zona muerta permanente y el centro de la colonia se autosombrea de forma inevitable. Todo lo que sigue asume que trabajas con un fragmento ya aclimatado.

1. Verifica el morfo antes de comprar. El «complejo hyacinthus» incluye A. cytherea, A. spicifera y A. anthocercis, difíciles de separar sin esqueleto. Los morfos verde-marrón toleran 250 µmol/m²/s; los azul-violeta exigen 350-450 µmol/m²/s y una estabilidad de kH casi absoluta. Compra siempre con el color real bajo luz de acuario, no bajo actinicos.
2. Aclimatación lumínica cuantificada. Ocho semanas: empieza en 120-150 µmol/m²/s con fotoperiodo de 8 h y sube un 10-15 % semanal hasta el objetivo. Un salto brusco a 400 µmol provoca fotoblanqueamiento del margen en 5-7 días, precisamente en los coralitos axiales en crecimiento.
3. Flujo turbulento, no laminar. Necesita 20-30 cm/s de velocidad media sobre la cara superior, con alternancia aleatoria cada 30-60 s. El flujo laminar unidireccional deforma la tabla y acumula detritus bajo el borde, donde arranca la necrosis. Apunta una bomba cruzada en superficie y otra de fondo con inclinación opuesta.
4. kH como prioridad absoluta. Mantén 6,8-7,3 dKH con oscilación inferior a 0,3 dKH en 24 h, siempre con dosificador peristáltico. Una subida o bajada de 1 dKH en un día produce necrosis basal (STN) en 48-72 h. Complementa con Ca 420-440 mg/L, Mg 1300-1350 mg/L y K 390-410 mg/L; el potasio bajo apaga el azul de los morfos profundos.
5. No caigas en ULNS. NO₃ 2-5 mg/L y PO₄ 0,03-0,06 mg/L. Con NO₃ <0,5 y PO₄ <0,02 las placas se aclaran y el margen deja de extenderse. Evita reactores de carbono agresivos y dosificaciones de vodka/vinegar: los cambios bruscos de carga bacteriana son la vía habitual de infección de la lámina.
6. Gestiona la autosombra. En condiciones óptimas extiende 8-15 cm de radio al año. A partir de 20-25 cm de diámetro el centro muere por falta de luz aunque los parámetros sean perfectos: poda el margen o rota la colonia. Deja 15-20 cm entre tablas vecinas.
7. Fragmentación correcta. Corta por el margen incluyendo coralitos axiales y monta el fragmento en horizontal sobre un soporte plano con cianoacrilato en gel; los fragmentos montados en vertical no re-enrulan bien y tardan meses en tabular. Cura los cortes en zona de flujo medio (250-300 µmol/m²/s) y sin peces que los rocen.
8. Plagas: inspecciona la cara inferior. Amakusaplana acroporae (AEFW) y Tegastes acroporanus se refugian bajo la placa. El baño de yodo (5 mL/L, 12-15 min) no elimina los huevos de AEFW: haz cuarentena de 6 semanas con redips los días 7, 14, 21 y 35. Cualquier punto blanco aislado en la cara inferior es una señal de alarma, no una casualidad.
9. Manipulación mínima. La epidermis de la tabla es finísima. No toques la superficie con dedos secos ni la frotes al montar; la infección bacteriana por manipulación es la primera causa de pérdida en las 72 h siguientes al pegado. Trabaja con guantes y pinzas, y no muevas la colonia más de una vez al mes.
10. Dosificación y aditivos. Nunca apliques aminoácidos, yodo o trazas concentradas directamente sobre la colonia. Es un coral fundamentalmente autótrofo: no necesita alimentación particulada y la adición de fitoplancton solo aumenta la carga orgánica disuelta.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

Calendario orientado a un acuario de arrecife mixto con temperatura controlada y dosificación automatizada. Los valores son específicos para A. hyacinthus; los picos de consumo de kH en verano son el factor crítico.

12. ✅ CONCLUSIÓN

Acropora hyacinthus no falla por parámetros «difíciles», sino por inestabilidad: es un coral de valores medios pero de tolerancia estrechísima a la variación. Si mantienes kH en 7,0 ± 0,3, temperatura estable a 25-26 °C, flujo turbulento de 20-30 cm/s y NO₃/PO₄ en 2-5 y 0,03-0,06 mg/L, la tabla crecerá entre 8 y 15 cm de radio al año y recompensará con la morfología tabular completa. Los tres errores que arruinan colonias ya establecidas son siempre los mismos: salto de alcalinidad, flujo insuficiente bajo la placa con acumulación de detritus, y entrada de AEFW sin cuarentena. Resuelve esos tres frentes y el resto —color, extensión del margen, densidad de coralitos axiales— llega solo. Reserva la fragmentación para primavera y otoño, nunca para las semanas posteriores a un traslado, y recuerda que esta especie se juzga por el borde de la tabla: un margen blanco y activo es el único indicador fiable de que la colonia está creciendo.

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

El acoplamiento iónico de esta especie no se comporta como el de un Acropora ramificado. A. hyacinthus es un calcificador de borde: la mayor parte del carbonato se deposita en el margen de la tabla, donde la extensión lineal puede superar 1 cm/mes, y ese margen es el primer sensor del desequilibrio. Mantén alcalinidad 7,0-8,0 dKH, calcio 420-450 mg/L, magnesio 1320-1350 mg/L, potasio 390-410 mg/L y salinidad 35 g/L (1,026); el consumo típico ronda 1 dKH por cada 7-8 mg/L de calcio, y una desviación de esa ratio delata precipitación abiótica o estrés. El punto crítico es la combinación de KH alto con nutrientes agotados: por debajo de NO₃ 1 mg/L y PO₄ 0,02 mg/L el borde se afila, pierde color y recesiona en 5-10 días («alk burn»). Esta especie procede de planicies arrecifales someras y tolera mejor los nutrientes moderados: NO₃ 3-8 mg/L y PO₄ 0,04-0,10 mg/L. Mide siempre a la misma hora, porque la demanda de alcalinidad sigue un ciclo diurno y la lectura matinal sobreestima el margen disponible.

En competencia química, A. hyacinthus es un competidor débil que compensa con velocidad. No produce aleloquímicos eficaces contra sarcophytinas y terpenos de Sinularia, Sarcophyton o Lobophytum, ni contra la palitoxina de Zoanthus; en su presencia aparecen bandas de pseudo-blanqueamiento de 1-3 cm en el borde de la tabla semanas antes de cualquier necrosis visible. Frente a otros corales duros se defiende por sobrecrecimiento y digestión extracoelentérica en la zona de contacto, con un frente de 1-2 mm/día ante Montipora o Pocillopora, pero pierde de forma irreversible frente a Hydnophora, Galaxea o Euphyllia, cuyos tentáculos de barrido matan tejido tabular en una sola noche. Es, además, uno de los acropóridos con mayor producción de DMSP, lo que altera la comunidad bacteriana del biofilm y favorece cianobacterias en zonas de flujo bajo. Mantén carbón activo en continuo (200-300 mL por 500 L, recambio mensual) y 15 cm de separación física entre la tabla y cualquier blando; el carbón no evita la competencia por contacto, pero reduce la carga alelopática disuelta.

La respuesta a la luz es morfológica, no solo cromática. En su hábitat, A. hyacinthus recibe 400-700 µmol·m⁻²·s⁻¹ en la superficie de la tabla y 100-200 en el borde inferior sombreado; por debajo de 250 PAR la colonia abandona el hábito tabular y crece columnar o con ramas ascendentes en 3-6 meses, cambio irreversible en la práctica. Sube la intensidad un 10% semanal y nunca más de un 15%: un salto brusco produce fotoinhibición, con puntas pálidas y retracción de pólipos durante 4-7 días, seguida de recolonización de zooxantelas con color más claro. El flujo importa tanto como la luz: necesita 20-30 cm/s oscilante o turbulento. Con flujo laminar por debajo

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Cómo distingo Acropora hyacinthus de otras acróporas de mesa?

A. hyacinthus (Dana, 1846) forma colonias corymbosas que se expanden en placas horizontales de hasta 1–2 m en el arrecife, construidas por ramas cortas y fuertemente fusionadas. Los corallites radiales son tubulares, apresados (appressed) contra la rama y con un labio inferior prominente, lo que da a la superficie un aspecto de «lija» con espínulas coenosteales densas; los corallites axiales son pequeños y nariformes. A. cytherea presenta ramas más esbeltas y abiertas, con corallites alargados de márgenes redondeados; A. clathrata muestra ramas muy finas, fuertemente soldadas, y corallites tubulares largos y proyectados. Como el complejo hyacinthus incluye especies crípticas, la identificación definitiva requiere marcadores moleculares (región control mitocondrial, intrón Pax-C).

¿Qué parámetros químicos exactos necesita?

Temperatura 24–26 °C (límite superior 28 °C), salinidad 34–35 g/L (1.025–1.026), KH 7,0–8,5 dKH, calcio 400–450 mg/L, magnesio 1250–1350 mg/L, pH 8,1–8,4, nitrato 1–5 mg/L y fosfato 0,03–0,08 mg/L. Es una especie de aguas oligotróficas: por encima de 10–15 mg/L de NO₃ y 0,15 mg/L de PO₄ se produce un engrosamiento marrón del tejido y mayor fragilidad frente a RTN. Mantén el potasio en torno a 400 mg/L si buscas coloraciones azules o púrpuras, y evita oscilaciones de KH superiores a 0,5 dKH/día: la calcificación de las placas finas es muy sensible a la falta de carbonatos.

¿Cuánta luz y corriente tolera una colonia de mesa?

En la naturaleza habita arrecifes someros y crestas expuestas, entre 0 y 15 m, con irradiancias altas. En acuario rinde entre 250 y 600 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR) con fotoperiodo de 10–12 h y picos de azul 400–480 nm; por debajo de 150 µmol·m⁻²·s⁻¹ las placas se oscurecen y pierden la coloración de los ápices. La corriente debe ser turbulenta y alternante, con velocidad de 15–25 cm/s, sin chorro directo a menos de 10 cm: la superficie horizontal de la mesa acumula detritus y sedimento rápidamente, lo que provoca necrosis en la cara inferior por sombreado y anoxia.

¿Por qué mi A. hyacinthus se vuelve marrón o se aclara?

El pardeamiento indica proliferación de zooxantelas por exceso de nutrientes disueltos (NO₃ elevado, materia orgánica, skimmer insuficiente) o por luz insuficiente. El aclaramiento, en cambio, refleja pérdida de simbiontes: estrés térmico, cambios bruscos de salinidad, yodo bajo o iluminación excesiva sin aclimatación. Revisa también la densidad de peces y la alimentación: esta especie es un coral autótrofo neto y no necesita alimento particulado. En casos de aclaramiento localizado en la base de la placa, comprueba la calidad del agua y descarta la presencia de platelmintos antes de subir la intensidad lumínica.

¿Qué plagas y enfermedades la afectan?

El platelminto Amakusaplana acroporae (2–3 mm, translúcido, imita el color del coral) se alimenta del tejido y deposita masas de huevos ámbar en el esqueleto desnudo, habitualmente en la cara inferior de las placas. Tegastes acroporanus («red bugs», 0,5 mm) produce puntos pálidos y decoloración. Bacterias como Vibrio coralliilyticus desencadenan RTN, agravado por temperaturas superiores a 29 °C. Protocolo: cuarentena de 6 semanas, baños de prazicuantel a 5–10 mg/L para platelmintos y revisión con lupa de la cara inferior antes de introducir cualquier fragmento.

¿Cómo se fragmenta y fija una placa sin romperla?

Corta con cizalla de hueso o Dremel piezas de 3–5 cm del margen de crecimiento, incluyendo siempre el borde con corallites axiales activos: los fragmentos centrales de la placa crecen mucho más despacio. Seca ligeramente la base y fija con cianocrilato en gel sobre un tapón de cerámica, o con masilla epoxi de dos componentes para piezas grandes, cuidando que la masilla no toque tejido vivo. Mantén la orientación horizontal del fragmento, en flujo moderado y luz media, durante 2–4 semanas de cicatrización, y súbelo después a su posición definitiva. Es una especie de crecimiento rápido (10–20 cm de expansión anual en el arrecife).

📚 REFERENCIAS

• Wallace, C.C. (1999). Staghorn Corals of the World: A Revision of the Genus Acropora. CSIRO Publishing, Collingwood, 421 pp.
• Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, Vol. 1. Australian Institute of Marine Science, Townsville, 463 pp.
• Dana, J.D. (1846). Zoophytes. United States Exploring Expedition during the Years 1838–1842, Vol. 7. Lea and Blanchard, Philadelphia, 740 pp.
• Borneman, E.H. (2001). Aquarium Corals: Selection, Husbandry, and Natural History. T.F.H. Publications, Neptune City, 464 pp.
• Rawlinson, K.A., Gillis, J.A., Billingsley, R.L. & Borneman, E.H. (2011). Taxonomy and life history of the Acropora-eating flatworm Amakusaplana acroporae nov. sp. (Polycladida: Prosthiostomidae). Coral Reefs, 30(3): 693–705.
• Hoegh-Guldberg, O. (1999). Climate change, coral bleaching and the future of the world’s coral reefs. Marine and Freshwater Research, 50(8): 839–866.

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