Echinopora horrida

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Echinopora horrida es un escleractinio hermatípico de crecimiento laminar que debe su nombre específico —horrida, «erizada»— a la textura más áspera de todo su género: los séptalos se proyectan como dientes irregularmente dentados por encima del borde del coralito, de modo que la superficie de la colonia resulta raspante al tacto, casi como papel de lija grueso. Las colonias silvestres se desarrollan como placas finas, horizontales o ligeramente onduladas, de 2-5 mm de espesor, que se superponen en varios niveles y emiten con frecuencia proyecciones nodulares o columnares cortas en el centro de la placa, especialmente en aguas someras batidas. El borde de crecimiento suele ser pálido —blanco-crema o verde muy claro— y contrasta con el centro, donde la coloración se satura en verde oliva, marrón verdoso, crema rosado o azul grisáceo, con los ápices de los séptalos y el interior de los coralitos teñidos de púrpura, violeta o azul eléctrico. Los pólipos, pequeños (1,5-3 mm de diámetro), permanecen retraídos de día y se expanden al apagar la iluminación o de inmediato si se detectan partículas en suspensión.

En acuariofilia marina se ha consolidado como uno de los SPS «de entrada» más recomendables, y no por ser un coral menor, sino porque tolera rangos de parámetros que Acropora o Montipora no admiten: nitratos de 5-15 mg/L, fosfato hasta 0,15 mg/L, oscilaciones térmicas de 2 °C y cambios de salinidad puntuales. Su tasa de crecimiento es alta en la dirección horizontal —placas de 8-12 cm de diámetro al año en condiciones óptimas—, lo que la convierte en excelente colonizadora de roca desnuda, pero también en una vecina incómoda: Echinopora despliega filamentos mesentéricos y digestión extracoelentérica sobre tejido ajeno, y una placa que avanza puede necrosar la base de un coral vecino en pocas semanas. Es, por tanto, un animal de colocación meditada: bien en la base del paisaje, separado 10-15 cm de otros SPS, y no sobre roca que se pretenda reservar a especies más delicadas. Su fragilidad mecánica es el otro punto débil: las placas se rompen con facilidad al manipularlas, y los fragmentos desprendidos rara vez se pierden, ya que reencrustan y generan nuevas colonias con rapidez.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

La posición familiar ha cambiado en la última década. Tradicionalmente ubicada en Faviidae por su coralito cerioide con muros sólidos, la especie pasó a Merulinidae tras la revisión filogenética de Huang, Benzoni y colaboradores (2014), que disolvió Faviidae y redistribuyó sus géneros combinando marcadores moleculares (COI, 28S, histone H3) con micromorfología de los séptalos. En ese esquema, Echinopora queda próxima a Merulina e Hydnophora, con las que comparte paredes septales de rápida acreción y una fuerte tendencia a la extratentacularidad del brote. El género agrupa alrededor de una decena de especies aceptadas (E. lamellosa, E. gemmacea, E. pacificus, E. hemprichii, E. forskalii, entre otras) cuya delimitación morfológica es problemática y sospechosa de albergar linajes crípticos.

El diagnóstico diferencial práctico es con E. lamellosa, el «chalice» habitual del comercio: esta presenta valles meandroides alargados y superficie comparativamente lisa, mientras que E. horrida muestra coralitos más discretos, subcerioides, con muros engrosados y dentición septal muy exerta, y una marcada tendencia a generar láminas superpuestas con proyecciones verticales. Algunos ejemplares del Indo-Pacífico etiquetados como horrida en guías de campo pueden corresponder a morfotipos de E. gemmacea; la identificación segura exige examinar la dentición septal al microscopio y no solo el hábito colonial.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Su distribución abarca el Indo-Pacífico tropical en sentido amplio: mar Rojo y golfo de Adén, costas de África oriental (Kenia, Tanzania, Mozambique), Madagascar, Seychelles, Maldivas, mar de Andamán, archipiélago indo-malayo (Indonesia y Filipinas, el núcleo de diversidad), Gran Barrera de Coral, Papúa Nueva Guinea, Micronesia y, de forma más dispersa, Polinesia Francesa. No es una especie oceánica de arrecifes frontales expuestos, sino un habitante de ambientes con cierta turbidez y sedimentación: llanuras arrecifales, charcas de la laguna, arrecifes parche, bases de cabezos y los primeros 10-15 m del talud superior. La franja batimétrica registrada va de la superficie a unos 30 m, con máximos de abundancia por encima de los 12 m, donde la irradiancia es alta y el movimiento de agua moderado. Es frecuente encontrarla en paredes verticales, repisas y extraplomos, donde la placa crece perpendicular al sustrato aprovechando la luz reflejada, y también sobre cascajo y coral muerto en zonas de escorrentía terrígena.

Ecológicamente es una especie pionera y oportunista: coloniza rápidamente sustrato desnudo, soporta episodios de hipersedimentación (hasta cubrirse parcialmente de limo sin necrosar) y tolera variaciones de salinidad en lagunas someras con aporte dulce. Su plasticidad parece vinculada a la flexibilidad de su comunidad de Symbiodiniaceae, que puede reestructurarse según la temperatura y la disponibilidad de nutrientes. En el arrecife compite por espacio mediante digestión extracelular y por sombreado: las placas superpuestas privan de luz a organismos incrustantes situados debajo. No obstante, es sensible a la depredación por Acanthaster planci y sufre mortalidad localizada en eventos de blanqueamiento, aunque rebrota desde tejido basal superviviente con rapidez.

Para el acuarista esto se traduce en un diseño de tanque concreto: iluminación media-alta (PAR 150-300 µmol·m⁻²·s⁻¹), flujo medio e indirecto —bomba de movimiento con corriente alterna, evitando chorro laminar directo sobre la placa, que provoca retracción persistente—, temperatura de 24-26 °C, salinidad 35 g/L (1.025-1.026), alcalinidad 7,5-9 dKH, calcio 420-450 mg/L y magnesio 1300-1350 mg/L. Su origen en aguas turbias justifica no perseguir valores de nutrientes ultrabajos: nitrato 2-10 mg/L y fosfato 0,03-0,10 mg/L le favorecen. La mayor parte del material disponible en el comercio español procede de fragmentos de acuicultura, lo que reduce la presión extractiva sobre poblaciones silvestres.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Echinopora horrida (Dana, 1846) pertenece a la familia Merulinidae y es, junto a E. lamellosa, la especie del género más frecuente en el comercio. El epíteto horrida alude a la textura erizada del cenénquima, y esa es precisamente la clave diagnóstica frente a otras Echinopora: no forma láminas finas y foliáceas como lamellosa, sino una base incrustante-submasiva de la que emergen muñones y ramas cortas, gruesas, irregulares y de sección aplanada, de 1-3 cm de longitud, que se fusionan entre sí formando puentes y nódulos. En el arrecife crece en fondos de laguna y talud somero (1-20 m), a menudo en aguas turbias; en acuario, la forma final depende del flujo: con corriente fuerte y constante tiende a desarrollar repisas horizontales y bordes levantados, mientras que en zonas de flujo débil se queda en un bloco nudoso y compacto.

Los coralitos son cerioides —muros compartidos, sin cenénquima intercoraliario amplio—, poligonales, de 3-5 mm de diámetro, densamente empaquetados. Presentan dos ciclos de septos (habitualmente 10-12), con los del primer ciclo marcadamente exsertos y con lóbulos paliformes; la fosa es profunda y la columela trabecular, poco desarrollada. El cenénquima está cubierto de espínulas cónicas y granulaciones densas que le dan ese aspecto de lija gruesa o de erizo, muy distinto de la superficie lisa y porosa de Favia o de los cálices elevados de Cyphastrea. Al observar una rama rota, el esqueleto es aragonito macizo, blanco, con coralitos visibles hasta la base: no hay porosidad tipo Porites.

El pólipo es pequeño: disco oral de 2-3 mm y 12 tentáculos cortos, cónicos, sin acrósferas apreciables, que rara vez se extienden en plena iluminación. La expansión es mayoritariamente nocturna y se puede inducir en acuario con alimentación dirigida (aminoácidos, jugo de mejillón, microplancton de 200-500 µm) unos 20-30 minutos después del apagado. Durante el día, el tejido está retraído y lo que se aprecia es el patrón de cálices con los discos orales coloreados. La capa de cenosarco es fina y no cubre el esqueleto de forma laxa como en Montipora, lo que hace que cualquier recesión se vea de inmediato como una línea blanca de esqueleto desnudo.

La coloración típica es rosa-malva a violeta con los discos orales verde manzana o crema, aunque existen morfos marrones, amarillentos y verde oliva. El rosa procede de proteínas cromáticas y fluorescentes del tejido, no de las zooxantelas; por eso, con nutrientes bajos y luz media-alta el rosa se satura y con exceso de nitrato y luz débil el coral vira a marrón. Las zooxantelas son simbiontes de la familia Symbiodiniaceae, género Cladocopium (antiguo clado C), típicas de Merulinidae: aportan la mayor parte de la energía, pero E. horrida es un heterótrofo eficaz y responde muy bien a la alimentación con presas de tamaño adecuado. Es una especie bleachable: ante estrés térmico o lumínico pierde densidad de simbiontes y muestra el esqueleto a través del tejido pálido, con recuperación lenta (4-8 semanas) si los parámetros se mantienen estables.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

A diferencia de un Acropora exigente, E. horrida tolera nutrientes moderados y no necesita un sistema ultraoligotrófico; de hecho, muchos acuaristas la mantienen en tanques de LPS con NO₃ de 5-10 ppm y crece con normalidad, aunque con coloración más apagada. El punto crítico es el KH: al ser una especie de esqueleto denso y crecimiento rápido en superficie, consume alcalinidad de forma apreciable y responde a las oscilaciones con retroceso del cenosarco en los bordes de la colonia. Mantén Ca y KH con dosificación diaria o reactor y verifica con test semanal; el magnesio, con test quincenal.

En iluminación, colócala en la franja media del acuario. Con LED de espectro completo, 150-200 µmol/m²/s durante 8-10 horas reproduce bien su hábitat de laguna. Si la pieza procede de un proveedor con luz débil, empieza a 100 µmol/m²/s y sube un 10-15 % semanal: los bordes expuestos son lo primero que se fototraumatiza. En cuanto al flujo, necesita corriente que bañe el centro de la colonia sin golpearla frontalmente; un chorro laminar directo erosiona el tejido entre ramas y abre paso a algas filamentosas en el esqueleto muerto.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colócala sobre roca viva consolidada, nunca sobre arena ni en una pieza que pueda volcar: al incrustar, cementa su base al sustrato en pocas semanas y manipularla después implica romper esqueleto. Reserva un perímetro libre de 8-10 cm. Su agresividad no se basa en tentáculos barredores largos, sino en el crecimiento: el cenosarco avanza sobre el esqueleto de vecinos y digiere tejido de Montipora, Seriatopora o bases de Acropora. Mantenla separada de piezas delicadas y de zoantídeos, que también compiten por espacio. Evita las zonas con sombra profunda (pierde color y crece deformada) y las inmediaciones de bombas, donde la corriente laminar continua impide la extensión de pólipos y acaba produciendo recesión central.

El crecimiento presenta dos fases: una primera de incrustación radial sobre la roca (bordes blancos de 2-5 mm que avanzan 1-2 mm/día) y otra de elevación, en la que surgen los nódulos y ramas cortas. En condiciones estables, la expansión lineal es de 1-2 cm al mes, más rápida en la fase incrustante. Un fragmento de 3 cm puede cubrir una base de 8 cm en 6-8 meses. La forma final es plástica: en tanques con flujo fuerte y luz media tiende a hacer repisas con bordes levantados; en flujo débil se queda como un bloque nudoso.

Para fragmentar, usa cortaalambres de esqueleto o una Dremel con disco de diamante y corta preferentemente por las ramas, no por la

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Echinopora horrida (Merulinidae; en la afición se maneja habitualmente como «SPS duro» por su esqueleto compacto, aunque funcionalmente comparte rasgos con los LPS) presenta coralitos tubulares largos y espinosos de hasta 8-10 mm de proyección, con pólipos de 2-4 mm de diámetro y tentáculos cortos. Esa rugosidad extrema le confiere una agresividad defensiva media: retrae pólipos con rapidez ante contacto, pero no compensa la depredación de peces ictiófagos ni la de invertebrados móviles.

Peces de riesgo bajo. Cirujanos pastoreadores del género Ctenochaetus (C. strigosus, C. tominiensis), Acanthurus, Zebrasoma, así como Amphiprion, gobios, blénidos (Ecsenius, Salarias) y lábridos no corallívoros conviven sin daño apreciable. Los blénidos pueden posarse sobre la colonia y provocar retracción puntual, sin necrosis.

Peces de riesgo alto. Los ángeles enanos (Centropyge loricula, C. bispinosa, C. flavissima) picotean el moco y los pólipos, sobre todo en colonias de menos de 10 cm de diámetro, donde cada mordedura abre una vía de infección. Los ángeles grandes (Pomacanthus imperator, P. semicirculatus, Holacanthus passer) consumen pólipos extendidos de forma sistemática. Los Chaetodon corallívoros obligados (C. trifasciatus, C. ornatissimus, C. meyeri) y los oportunistas (C. auriga, C. vagabundus) destruyen el tejido en días. Los balístidos grandes (Balistoides viridescens, Pseudobalistes fuscus) y los tetraodóntidos (Arothron, Diodon) trituran el esqueleto, no solo el tejido.

Invertebrados. Seguros: Lysmata (L. amboinensis, L. wurdemanni), ermitaños Calcinus y Clibanarius, caracoles Trochus, Cerithium y Strombus. A vigilar: Mithraculus sculptus es oportunista y puede pellizcar tejido en colonias debilitadas; los vermétidos y los gusanos de fuego (Eurythoe complanata) irritan la base incrustante, especialmente en sistemas con exceso de alimento. A evitar: Protoreaster nodosus y Culcita novaeguineae (consumen tejido coralino), erizos Diadema/Echinometra (raspan epibiontes y excavan el esqueleto) y anémonas móviles (Entacmaea, Macrodactyla, Condylactis), cuyos nematocistos necrosan parches de 2-5 cm en una noche.

Competencia espacial. Al ser una especie incrustante y de crecimiento rápido, sobrecrece a corales lentos (Porites masivos, Montipora), pero pierde frente a Hydnophora, Galaxea y Catalaphyllia, cuyos tentáculos barredores nocturnos la necrosan. Zoanthus y palitoas pueden tapar el borde de crecimiento. Separe estos géneros al menos 15 cm.

8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMÚNes

Blanqueamiento. El umbral térmico se sitúa en 29-30 °C sostenidos más de 48 h; también se desencadena por subidas bruscas de irradiancia (incrementos superiores al 50 % de PAR en un solo día) o por lámparas con picos de UV. La colonia pasa de marrón-verdosa a translúcida en 3-7 días. E. horrida recupera bien si la causa cesa en menos de dos semanas, recolonizando desde los bordes con zooxantelas marrones.

RTN/STN. En esta especie la necrosis suele iniciarse en la base o en lesiones por manipulación. Causas típicas: alcalinidad superior a 11 dKH con nutrientes indetectables (NO₃ < 0,5 mg/L y PO₄ < 0,03 mg/L) provoca «quemadura alcalina» y necrosis apical; descensos de salinidad por reposición de agua dulce mal controlada; y acumulación de detritos en la superficie espinosa, que actúa como foco bacteriano. La RTN avanza 1-2 cm/h; fragmente 1 cm por delante del frente necrótico y aplique baño de yodo (Lugol a 5-10 ml/L, 10 minutos).

Infección por ciliados («banda blanca», «brown jelly»). Sobre heridas recientes aparece tejido marrón gelatinoso con olor fétido. Retire el material con pipeta, aumente el flujo y realice baño de yodo. Es más frecuente tras fragmentar sin desinfectar la herramienta.

Parásitos y plagas. No tiene un parásito obligado descrito comparable al gusano plano devorador de Acropora, pero sí plagas secundarias: esponjas perforantes del género Cliona (manchas marrones con poros que erosionan el esqueleto), briozoos e hidroides que colonizan esqueleto muerto, vermétidos en la base, <

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

Echinopora horrida se confunde con frecuencia con E. lamellosa; la primera tiene coralitos más gruesos y verrucosos, con espinas elevadas y placas robustas. Esta diferencia no es anecdótica: horrida soporta mejor el flujo fuerte y la luz alta que lamellosa, pero también genera placas más pesadas y con mayor capacidad de sombrear. Monta la colonia sobre roca horizontal y estable, nunca en vertical ni sobre arena, para que la placa crezca paralela al sustrato y no se autosombre. Deja 15-20 cm libres alrededor: sus tentáculos barredores nocturnos alcanzan 10-15 cm y pueden necrosar Acropora y LPS vecinos.

Iluminación: 200-350 µmol/m²/s de PAR, con aclimatación desde 120-150 durante 4-6 semanas. Por debajo de 100 PAR pierde densidad de zooxantelas y color; por encima de 400 PAR sin aclimatación blanquea los bordes expuestos. Fotoperiodo de 10-12 h. Flujo: 20-30 veces el volumen del acuario por hora, turbulento y alternante. El flujo laminar directo erosiona el tejido del borde y acumula detritus bajo la placa, lo que produce recesión basal en pocas semanas.

Química específica: dKH 7,5-8,5 con variación máxima de 0,3 dKH/día; Ca 420-450 mg/L; Mg 1300-1350 mg/L; salinidad 34-35 ppt; temperatura 24-26 °C. Es especialmente sensible a la caída de alcalinidad: por debajo de 6,5 dKH aparece recesión en la base en 5-7 días. Mantén NO3 2-5 mg/L y PO4 0,03-0,06 mg/L; valores indetectables durante semanas provocan palidez y menor expansión de pólipos. Dosifica aminoácidos 2-3 veces por semana (1 ml/100 L de producto comercial) y usa carbón activo a razón de 50-100 g/100 L, renovado cada 3-4 semanas, para adsorber alelopatías.

Plagas y cuarentena: revisa siempre la cara inferior de las placas; allí se refugian flatworms del género Waminoa y pólipos de vermétidos. Los red bugs (Tegastes acroporanus) pueden aparecer en Echinopora y extenderse a Acropora. Todo fragmento nuevo debe pasar baño de yodo según etiqueta (10-15 min) y, si se detectan planarias, praziquantel a 5 mg/L durante 6 h en recipiente separado. No cepilles el tejido: usa una jeringa para soplar detritos y una lupa para inspeccionar entre los coralitos.

Fragmentación: corta placas de 2-3 cm con cortapernos, seca la base con papel absorbente y pega con cianoacrilato gel. La cicatrización es rápida (10-14 días) a 25 °C y 8 dKH. No fragmentes en la misma semana que un cambio brusco de parámetros ni justo después de una subida de temperatura. Si la colonia crece sobre el cristal, retira los bordes con espátula antes de que la placa se desprenda por su propio peso.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

Calendario orientativo para hemisferio norte en un acuario de arrecife mixto con E. horrida. Ajusta según observación directa; las fechas son una guía estacional.

12. ✅ CONCLUSIÓN

Echinopora horrida es un SPS robusto para acuaristas avanzados que buscan una placa encrustante de crecimiento predecible, pero no es un coral “a prueba de errores”. Su punto fuerte es la tolerancia a flujo fuerte y a rangos de nutrientes moderados (NO3 2-5 mg/L; PO4 0,03-0,06 mg/L); su punto débil es la sensibilidad a oscilaciones de alcalinidad superiores a 0,3 dKH/día y a la acumulación de detritus bajo la placa. Con dKH 7,5-8,5, Ca 420-450 mg/L, Mg 1300-1350 mg/L, temperatura 24-26 °C y flujo turbulento de 20-30 veces el volumen/hora, la especie mantiene color y extiende sus placas 1-2 cm al mes.

La clave está en planificar el espacio: sus tentáculos barredores de 10-15 cm y su capacidad de sombrear hacen necesario dejar 15-20 cm de separación con Acropora y LPS. Revisa la cara inferior de las placas cada mes, cuarentena todos los fragmentos y fragmenta en primavera u otoño. Si mantienes la química estable y evitas los cambios bruscos de luz, E. horrida recompensa con una estructura laminar espectacular y una excelente indicación temprana de desequilibrios en el sistema.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Cómo distingo Echinopora horrida de E. lamellosa y E. gemmacea?

E. horrida (Dana, 1846) forma colonias ramificadas o submasivas con ramas subcilíndricas erectas de 10–20 mm de diámetro que se fusionan con frecuencia. Sus coralitos son cerioides, de 2,5–4 mm, con 12 septos en dos ciclos y lóbulos paliformes poco marcados; el coenosteo está tapizado de espínulas gruesas y romas que le confieren el aspecto erizado que le da el nombre. E. lamellosa es foliácea-laminar, con láminas horizontales y coralitos de 4–6 mm más exsertos; E. gemmacea tiende a formas incrustantes con costas más finas y espínulas menos desarrolladas. La prueba práctica sobre un esqueleto limpio: relieve áspero al tacto y ramificación vertical → horrida.

¿Qué parámetros químicos debo mantener?

Temperatura 24–26 °C, salinidad 35 PSU (1.026), calcio 420–450 mg/L, alcalinidad 7,5–8,5 dKH, magnesio 1290–1350 mg/L, nitrato 2–10 mg/L y fosfato 0,02–0,08 mg/L. Es una especie relativamente tolerante a nutrientes moderados (propia de ambientes turbios en la naturaleza), pero muy sensible a oscilaciones de alcalinidad: variaciones superiores a 1 dKH en 24 h producen quemazón de puntas y despegue de tejido. Mantén el pH entre 8,0 y 8,4 y una densidad estable; es más resistente a un NO₃ de 10 que a un KH inestable.

¿Cuánta luz y corriente necesita?

PAR de 100–250 µmol·m⁻²·s⁻¹, con picos tolerables hasta 300. Por encima de 300–350 µmol·m⁻²·s⁻¹ se aclara y blanquea las zonas expuestas; por debajo de 80 pierde color y la base se cubre de algas. Colócala en la zona media o media-baja del acuario, nunca bajo una lente LED directa. Corriente moderada-alta, aleatoria e intermitente (15–20 renovaciones/hora); la corriente laminar constante provoca crecimiento desigual y acumulación de detritus en las axilas de las ramas. La extensión de los pólipos al atardecer es el mejor indicador de que luz y corriente son correctas.

¿Es agresiva con los corales vecinos?

Sí. Echinopora desarrolla tentáculos barredores nocturnos que pueden extenderse 5–10 cm y digerir tejido de Acropora, Montipora o Seriatopora adyacentes. Deja un margen mínimo de 12–15 cm respecto a otros SPS y algo más frente a LPS de tentáculos largos. Además, su base incrustante avanza sobre la roca viva y sofoca a los corales que toca, por lo que conviene aislarla en una isla de roca propia. Es más segura hacia la parte superior de la estructura, donde su crecimiento se dirige hacia arriba y no hacia los vecinos.

¿Cómo la fragmento y con qué la pego?

Con alicates de hueso o Dremel, cortando una rama de 3–5 cm por debajo de la zona de tejido vivo, siempre sobre el esqueleto limpio. Sumerge el fragmento en solución de yodo (5 ml/L durante 3–5 min) y sécalo ligeramente la base. Fíjalo con cianocrilato en gel sobre un tapón de cerámica o directamente a la roca; el gel fragua mejor con la superficie húmeda pero no encharcada. La cicatrización se completa en 7–14 días y la primera rama nueva aparece en 3–6 semanas; en condiciones óptimas crece 1–3 cm al mes. Evita cortar durante las primeras 48 h tras un cambio de agua o un ajuste de KH.

¿Por qué pierde color o aparece tejido blanco en la base?

El blanqueamiento parcial con pólipos retraídos suele indicar exceso de luz o NO₃ por debajo de 1 mg/L; el marrón uniforme, lo contrario: nitrato por encima de 20 mg/L y fosfato alto. El tejido blanco que avanza desde la base es distinto: necrosis por acumulación de detritus o por alcalinidad inestable. Sifona la base semanalmente, mantén el magnesio por encima de 1290 mg/L y revisa la ausencia de Waminoa (planarias acoelas) y de gusanos de fuego en las axilas. Una banda blanquecina que avanza 1 cm/día es infección bacteriana: fragmenta por delante del frente de necrosis y descarta la parte afectada.

📚 REFERENCIAS

• Dana, J.D. (1846). United States Exploring Expedition during the years 1838–1842, under the command of Charles Wilkes, U.S.N. Vol. VII: Zoophytes. Lea & Blanchard, Filadelfia.
• Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, Vol. 3. Australian Institute of Marine Science, Townsville.
• Huang, D., Benzoni, F., Fukami, H., Knowlton, N., Smith, N.D. & Budd, A.F. (2014). Taxonomic classification of the reef coral families Merulinidae, Montastraeidae and Diploastraeidae (Cnidaria: Anthozoa: Scleractinia). Zoological Journal of the Linnean Society, 171(2): 277–355.
• Hoeksema, B. (Ed.). World List of Scleractinia: Echinopora horrida Dana, 1846. WoRMS – World Register of Marine Species. Consultado en marinespecies.org.
• Borneman, E.H. (2001). Aquarium Corals: Selection, Husbandry and Natural History. TFH Publications, Neptune City, NJ.
• Carpenter, K.E., Abrar, M., Aeby, G. et al. (2008). One-third of reef-building corals face elevated extinction risk from climate change and local impacts. Science, 321(5888): 560–563.

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