Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia
📋 ÍNDICE DEL ARTÍCULO
- 1. 🌏 INTRODUCCIÓN
- 2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
- 3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
- 4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
- 5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
- 6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
- 7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
- 10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
- 11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
- 12. ✅ CONCLUSIÓN
1. 🌏 INTRODUCCIÓN
Acanthastrea lordhowensis Veron & Pichon, 1980 —comercializada como Acan Lord, Lordhowensis o rainbow acan— es uno de los LPS más apreciados del hobby y, al mismo tiempo, uno de los que genera más confusión taxonómica y más decepciones en el envío. Se trata de un coral pétreo colonial de hábito masivo o incrustante, con cálices cerioides y un coenosarcos carnoso y grueso que cubre por completo las paredes y los septos, de modo que la colonia se ve como una superficie mórbida y continua, casi de corallimorfario, hasta que el pólipo se contrae y deja al descubierto la estructura esquelética.
Los pólipos son grandes para un músculo: entre 6 y 14 mm de diámetro (hasta ~20 mm en cálices distendidos), con 16-24 septos dispuestos en tres ciclos y lóbulos paliformes a menudo muy marcados. La colonia en acuario rara vez supera los 15-30 cm, y crece despacio: del orden de 5-10 mm de radio al año en condiciones óptimas, lo que convierte cada centímetro ganado en un bien escaso y explica los precios del morfo «rainbow».
Su atractivo es cromático: la especie presenta una variabilidad extraordinaria, con discos orales verdes, turquesa o amarillos rodeados de anillos granate, rojo ladrillo, naranja o violeta, y patrones moteados, rayados o concéntricos que se mantienen relativamente estables al fragmentar. Ese polimorfismo, junto con su anatomía, la ha convertido en objeto de una intensa selección artificial por parte de acuaristas, hasta el punto de que existen líneas de cultivo nombradas y estabilizadas.
En el plano práctico es un coral de dificultad media: tolera bien parámetros estables y luz baja, acepta alimento carnoso con avidez y se fragmenta con facilidad, pero es propenso a necrosis rápida de tejido y a infecciones por «gelatina marrón» (brown jelly) tras el transporte, la manipulación o un pico de temperatura. Es también un agresor notable: despliega filamentos mesentéricos y digestión extracoelentérica sobre cualquier coral vecino a su alcance, incluidas otras colonias de Acanthastrea.
2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
La especie fue descrita sobre material de la isla de Lord Howe y ubicada en el género Acanthastrea, dentro de la familia Mussidae. Los análisis moleculares de la última década demostraron que Acanthastrea era polifilético y que A. lordhowensis se agrupaba con Micromussa; Arrigoni y colaboradores (2016) la reasignaron formalmente como Micromussa lordhowensis, criterio aceptado hoy por WoRMS pero que no se ha consolidado en la literatura de acuariofilia ni en el comercio, donde sigue usándose «Acan Lord». Otras especies del mismo género nominal (A. echinata, A. bowerbankii, A. pachysepta, A. amakusensis) permanecen en géneros distintos —Homophyllia, Micromussa—, lo que hace que las identificaciones visuales del comercio sean poco fiables.
| Rango | Taxón |
|---|---|
| Reino | Animalia |
| Filo | Cnidaria |
| Clase | Anthozoa (Hexacorallia) |
| Orden | Scleractinia |
| Suborden / clado | Faviina — clado «Robusta» |
| Familia | Lobophylliidae (antes Mussidae) |
| Género | Acanthastrea / Micromussa (revisión de 2016) |
| Especie | Acanthastrea lordhowensis Veron & Pichon, 1980 |
| Sinónimo aceptado | Micromussa lordhowensis (Veron & Pichon, 1980) |
| Localidad tipo | Lord Howe Island, mar de Tasmania (Australia) |
| Nombre común | Acan Lord, Lordhowensis, rainbow acan |
Los caracteres diagnósticos que separan esta especie de sus congéneres de acuario son: cálices cerioides monocentricos de 6-14 mm con paredes compartidas y no exsertas; septos en tres ciclos con dientes finos y lóbulos paliformes prominentes; columela trabecular poco desarrollada; y un coenosarcos muy grueso que oculta las paredes y confiere a la colonia contorno redondeado y superficie lisa. Frente a Micromussa amakusensis, los cálices son claramente mayores y más poligonales; frente a Homophyllia bowerbankii, la gemación es intracalicular y la colonia menos meandroide; frente a A. echinata, carece de costas exsertas y de la apariencia «erizada» de aquella.
3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
La especie es propia de Australia oriental templado-cálida: isla de Lord Howe (31,5° S, localidad tipo), Gran Barrera de Coral y mar del Coral. Es, por tanto, un coral de arrecife subtropical y de arrecifes marginales, no un habitante típico del triángulo de Coral; la mayor parte del material salvaje del comercio procede de pesquerías australianas gestionadas y de cultivo de fragmentos. En Lord Howe vive en un régimen térmico estacional amplio, con mínimas invernales de 17-18 °C y máximas estivales de 25-26 °C, salinidad de 34-35 y aguas a menudo turbias y ricas en plancton.
Ocupa el arrecife inferior y los ambientes crípticos: paredes verticales, repisas, grietas y techos de cuevas entre 5 y 30 m, con frecuencia en zonas de luz atenuada y sedimento fino en suspensión. En la Gran Barrera aparece también en fondos lagunares y llanuras arrecifales someras, pero siempre en microhábitats protegidos del oleaje directo y de la irradiancia máxima. Es un coral de sustrato consolidado, que se fija a roca muerta y a esqueleto de otros corales, y que compite por espacio mediante digestión extracoelentérica más que por crecimiento rápido: su estrategia es de persistencia y defensa del territorio, no de colonización veloz.
Estas coordenadas ecológicas se traducen directamente en el diseño del nicho en acuario: iluminación baja a media-baja (150-250 µmol·m⁻²·s⁻¹ de PAR, con picos superiores tolerados solo si el coral procede de zonas someras), fotoperiodo de 8-10 h, flujo suave e indirecto que renueve el agua sobre el coenosarcos sin golpear el tejido, y ubicación en la mitad inferior del tanque o bajo repisas. La temperatura de mantenimiento debe situarse en 24-26 °C, con margen de seguridad estrecho en verano: por encima de 28 °C sostenidos la especie muestra contracción persistente de pólipos y es candidata a necrosis. Iluminaciones intensas y flujos directos fuertes son la causa más frecuente de pérdida de color y de recesión de tejido en esta especie, mucho más que los desequilibrios de nutrientes.
4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
Bajo el nombre comercial de Acanthastrea lordhowensis se comercializa hoy una especie reasignada por filogenia molecular al género Micromussa (Arrigoni et al., 2016): Micromussa lordhowensis (Veron & Pichon, 1980). Procede de Lord Howe Island y del Mar de Coral, un entorno subtropical con temperaturas invernales de 18-19 °C, lo que explica su tolerancia a rangos térmicos algo más frescos que la mayoría de LPS indopacíficos. No debe confundirse con Acanthastrea echinata (cálices de 15-25 mm, septos muy exsertos y dientes gruesos) ni con Micromussa amakusensis (cálices menores, 4-6 mm, patrón de color más uniforme).
Colonia y esqueleto. La colonia es masiva a incrustante, con superficie convexa o ligeramente domo. El esqueleto es cerioide: coralitos poligonales (4-6 lados) íntimamente empaquetados que comparten muros, de 6-11 mm de diámetro (media 8-9 mm en colonias maduras; los ápices recién formados rondan los 5 mm). Los septos se disponen en tres ciclos (6+6+12), con dientes agudos y lóbulos paliformes en los ciclos internos; la columela es trabecular y poco profunda, lo que da al cáliz un aspecto de «plato» más que de copa. Las costas son confluentes entre coralitos adyacentes y las paredes presentan porosidad marcada. El coenosarc que cubre los muros es fino y translúcido, mientras el tejido del pólipo es carnoso y distensible: un pólipo alimentado puede aumentar su volumen un 40-50 % respecto al estado retraído.
Pólipos y color. El disco oral mide 3-6 mm con el pólipo expandido; los tentáculos son cortos, cónicos y se despliegan preferentemente con luz actínica baja o tras la adición de alimento. Es una de las especies con mayor variabilidad cromática del hobby: existen morfos rojos, verdes, naranjas, «rainbow» y «ultra» en los que el disco oral contrasta con el muro mediante reticulados, rayados radiales o motas. Esta variabilidad es intraespecífica y estable en cultivo, aunque el patrón puede saturarse o palidecer según nutrientes e intensidad lumínica.
Zooxantelas y nutrición. Hospeda Symbiodinium del clado C, pero es marcadamente mixótrofa: la captura de presas es su principal vía de aporte proteico. Los pólipos aceptan mysis, krill, pellets de 2-3 mm y artemia enriquecida, con respuesta tanto diurna como nocturna. También puede evertir filamentos mesentéricos sobre el sustrato adyacente, señal de competencia y de digestión extracorpórea.
5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
| Parámetro | Rango óptimo | Observaciones específicas |
|---|---|---|
| Temperatura | 24-25,5 °C (límites 22-27 °C) | Origen subtropical: por encima de 28 °C se dispara el riesgo de blanqueo y de infección bacteriana. |
| Salinidad | 35 ppt (34-36) | Medir con refractómetro calibrado; tolera mal oscilaciones rápidas por encima de 1,5 ppt. |
| pH | 8,1-8,4 | Evitar caídas nocturnas por debajo de 7,9; afecta a la calcificación del coenosarc. |
| KH (alcalinidad) | 7,5-9,0 dKH | Estable a ±0,5 dKH; valores superiores a 11 provocan retracción y necrosis marginal. |
| Calcio | 410-450 ppm | Consumo moderado; colonias grandes de 30+ pólipos consumen de forma apreciable. |
| Magnesio | 1300-1350 ppm | Por debajo de 1250 se desestabiliza el KH y aparecen bordes blanquecinos. |
| Nitratos (NO₃) | 3-10 ppm | Por debajo de 1 ppm el color palidece; por encima de 20 se favorecen algas sobre tejido muerto. |
| Fosfatos (PO₄) | 0,03-0,10 ppm | Rango alto dentro de lo habitual en SPS: prioriza color y crecimiento del esqueleto. |
| Iluminación | PAR 50-150 µmol/m²/s (máx. 200) | Baja a media; aclimatar del 40 % al 100 % en 4-6 semanas si viene de luz débil. Espectro con pico en 420-460 nm. |
| Flujo | Bajo-moderado, indirecto (10-20× volumen/hora) | Nunca corriente laminar directa: erosiona el coenosarc entre coralitos y favorece infecciones. |
La combinación crítica es nutrientes moderados + luz baja + flujo suave. Con NO₃ por debajo de 2 ppm y PO₄ indetectable, los morfos rojos y «rainbow» tienden a decolorarse hacia tonos pastel y el crecimiento se detiene; con NO₃ superior a 20 ppm y PO₄ por encima de 0,2 ppm el esqueleto se recubre de algas filamentosas y la retracción de pólipos se vuelve crónica. El flujo debe garantizar renovación de agua sobre el tejido sin doblar los pólipos: una corriente que mantenga los tentáculos en movimiento suave y arrastre los detritos del cáliz es la referencia correcta.
Es sensible al exceso de luz más que a la insuficiencia: bajo LED de alta potencia en la zona media-alta del acuario aparecen áreas translúcidas en el disco oral en 10-15 días. Mantén la pieza en el tercio inferior y sombreada parcialmente por roca, y ajusta la aclimatación lumínica siempre que cambies de sistema.
6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
Colocación. Sobre roca viva o placa cerámica en el tercio inferior, con la cara superior del coralito paralela a la luz. Deja una separación mínima de 10-15 cm respecto a otros corales: M. lordhowensis no es agresiva por tentáculos barredores, pero sí por filamentos mesentéricos y por competencia directa de coenosarc, y a su vez puede ser dañada por Euphyllia, Galaxea o Hydnophora situados a menos de un palmo. Fíjala con cianoacrilato en gel o masilla epoxi sin cubrir tejido vivo; la base incrustante necesita contacto firme con el sustrato para expandirse lateralmente.
Crecimiento. Es un coral de crecimiento lento: la expansión lateral del coenosarc avanza del orden de 1-3 mm al mes en condiciones óptimas, y una colonia de 10 pólipos suele duplicar su número de coralitos en 12-18 meses. El crecimiento se produce por división intracalicular (el cáliz se estrecha y se divide) y por gemación marginal en el borde incrustante; los nuevos pólipos tardan 3-5 meses en alcanzar el tamaño de los adultos. El aporte regular de alimento (2-3 veces por semana, un trozo de mysis o krill por pólipo) acelera de forma medible la gemación frente a colonias solo autótrofas.
Fragging. El corte debe atravesar tejido vivo y esqueleto: usa sierra de banda o disco de diamante con refrigeración, nunca una tenaza que aplaste los coralitos. Realiza el corte entre dos coralitos completos, dejando al menos un cáliz íntegro con coenosarc en cada fragmento; los fragmentos de un solo pólipo son viables pero con mayor tasa de «polyp bailout» y de infección. Tras el corte, aplica un baño de yodo a dosis de fabricante o CoralRx durante 5-8 minutos, y deja curar el fragmento en zona de flujo suave y luz baja. El borde cortado cierra en 2-4 semanas; reanuda la alimentación a los 7-10 días, cuando aparezcan tentáculos. Fija el fragmento con cianoacrilato gel sobre una base plana y evita cubrir el corte con pegamento: la línea de sutura debe quedar expuesta para cerrar. Las zonas de contacto entre morfos distintos no se fusionan: mantienen una línea de demarcación y crecen como colonias adyacentes, lo que permite «grafting» estético sin riesgo de mezcla genética.
7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
Acanthastrea lordhowensis (reclasificada como Micromussa lordhowensis en 2016) es un LPS de tejido carnoso y uno de los más agresivos del acuario. Sus tentáculos barredores se extienden 5-10 cm por la noche y pueden digerir tejido de Euphyllia, Favia, Favites, Caulastrea e incluso SPS. Deja 15 cm de separación con otros corales y no la pegues a una roca compartida con colonias SPS. Distintos morfos de M. lordhowensis también se atacan: mantén separación incluso entre colonias de procedencias distintas. No la coloques junto a Discosoma o zoántidos, que puede invadir y picar.
Peces: evita loros (Scarus, Chlorurus), ángeles grandes (Pomacanthus imperator, Holacanthus ciliaris), mariposas (Chaetodon spp.), filefishes (Pervagor, Oxymonacanthus), puffers (Arothron) y triggers (Balistoides): todos pueden picotear o triturar pólipos. Los ángeles enanos (Centropyge loricula, C. bispinosa) son un riesgo medio; observa las primeras semanas. Los cirujanos (Acanthurus, Ctenochaetus) suelen ser seguros, pero Siganus puede morder tejido blando si está hambriento. Los payasos (Amphiprion ocellaris, A. percula) pueden intentar acoger la colonia y rozarla; evítalos con colonias pequeñas. Gobios de arena (Valenciennea) y jawfish entierran coral: coloca la pieza en roca elevada, nunca en el sustrato.
Invertebrados: los camarones limpiadores (Lysmata amboinensis) roban alimento de los pólipos; alimenta con pipeta y jeringa. Lysmata wurdem
10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
Acanthastrea lordhowensis se reclasificó en 2016 como Micromussa lordhowensis (Arrigoni et al.); en el comercio sigue vendiéndose como “Acan lord”. Es un LPS encrustante de Lord Howe Island, no un coral de arrecife somero tropical: en la naturaleza vive en fondos de 10-30 m, bajo salientes y en zonas de luz atenuada. Esa biología explica casi todos sus fallos en acuario.
- Luz: 50-150 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR), fotoperiodo de 8-10 h. Por encima de 200 µmol·m⁻²·s⁻¹ pierde saturación de color y muestra márgenes pálidos; por debajo de 30 µmol·m⁻²·s⁻¹ se expande mucho pero crece muy lento y pierde pigmentación.
- Flujo: indirecto y alterno, no laminar. Un chorro directo de 20× el volumen del acuario provoca retracción crónica y recesión del tejido en el borde del esqueleto. Apúntalo a una roca o cristal para que rebote.
- Posición: sobre roca viva, nunca en arena. La arena se introduce entre pólipos, irrita el tejido y favorece infecciones bacterianas. Ideal en una repisa inclinada o bajo un saliente, a 10-20 cm del sustrato.
- Parámetros: temperatura 24,5-26,0 °C; salinidad 34,5-35,5 ppt; dKH 7,5-8,5 (nunca por encima de 9); Ca 420-450 mg/L; Mg 1300-1350 mg/L; NO₃ 5-15 mg/L; PO₄ 0,03-0,10 mg/L. Es intolerante a dKH inestable: una oscilación de 1,5 dKH en 24 h puede provocar bailout.
- Nutrientes: no lo metas en sistemas ultrabajos de nutrientes (NO₃ 25 mg/L se oscurece y aparecen algas filamentosas en el esqueleto muerto.
- Alimentación: 2-3 veces por semana, por pólipo, 2-3 mysis o un pellet de 1-2 mm. Los tentáculos se extienden 5-10 minutos después de oler comida; alimenta entonces, no antes. El exceso de comida no consumida entre pólipos es la principal causa de “brown jelly” en esta especie.
- Respuesta de alimentación: si un pólipo no captura en 15 minutos, no insistas: retira el alimento con una pipeta. La falta de respuesta repetida indica flujo demasiado fuerte, luz excesiva o dKH desviado.
- Agresividad: moderada, pero real. Extiende filamentos mesentéricos y digiere tejido de Acropora, Montipora y otros LPS vecinos. Deja 8-10 cm de separación; en una colonia grande, el radio de daño puede superar los 5 cm.
- Crecimiento: encostrante lento: 2-5 pólipos nuevos al año en condiciones óptimas. No esperes cubrir una roca en meses. La tasa se dispara con alimentación regular y estabilidad de dKH, no con luz intensa.
- Fragmentación: sierra de banda, corte con 1 cm de margen de esqueleto alrededor del pólipo. Fragmentos de 2-3 pólipos curan en 2-3 semanas; los de un solo pólipo tienen mortalidad notablemente mayor. Baño de yodo (Lugol 1 gota/500 ml, 10 min) tras el corte.
- Plagas: revisa la base y los espacios entre pólipos buscando Waminoa (platelmintos planos marrones). No suelen matar, pero sombrean y estresan. Baño de CoralRx 5 min y repetir a los 7 días; el yodo no elimina sus huevos.
- Bailout: bajo estrés agudo puede expulsar pólipos completos. Si ocurre, coloca el pólipo suelto en una zona de flujo suave y sombra; puede reasentarse y regenerar esqueleto en 4-8 semanas. No lo pegues con cianocrilato directamente sobre el tejido.
- Color: los morfos “rainbow” dependen de pigmentos y de la comunidad de zooxantelas; mantén K⁺ en 380-420 mg/L y yodo en 0,05-0,08 mg/L, con cambios de agua del 10 % semanal. La luz alta blanquea los rojos y amarillos; la luz baja los apaga.
- Cuarentena: 45 días en tanque aparte con observación semanal. Es propenso a infecciones bacterianas tras daño mecánico; cualquier herida blanca debe tratarse con baño de yodo y mejora de flujo, no con antibióticos preventivos.
11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
| Estación | Parámetros y observación | Alimentación | Mantenimiento específico |
|---|---|---|---|
| Primavera | Comprueba dKH dos veces por semana (objetivo 8,0). Revisa márgenes del esqueleto por recesión y algas. Mide NO₃ y PO₄. | 3 veces por semana, 2 mysis por pólipo; aprovecha para valorar respuesta de captura. | Fragmenta colonias de más de 8 pólipos si el dKH lleva un mes estable. Calibra refractómetro y sonda de temperatura. Revisa Waminoa. |
| Verano | Riesgo térmico: no superes 27 °C ni 24 h; ideal 25 °C con ventilador o enfriador. La evaporación eleva la salinidad: repón agua osmótica a diario. | 2 veces por semana; con calor, alimenta después del apagado y retira restos a los 20 min. | Limpia bombas y rejillas: el flujo directo por obstrucción es típico en esta época. No cambies la posición del coral. |
| Otoño | Ajusta fotoperiodo a 8 h si la luz natural incide en el acuario. Verifica Mg (1300-1350) y K⁺. Observa si aparecen pólipos pálidos en la base. | 2-3 veces por semana; introduce alimento variado (mysis, krill picado, pellet). | Baño de cuarentena a cualquier coral nuevo antes de acercarlo. Revisa la base por caracoles y platelmintos. Limpieza de skimmer. |
| Invierno | Riesgo de fallo del calentador: sonda con alarma a 23,5 °C. Mantén 24,5-26,0 °C. Evita corrientes de aire frío sobre el acuario. | 2 veces por semana; no aumentes comida para “compensar” el frío. | Revisa enchufes y calentador. No fragmentes con el acuario a menos de 24 °C: la cicatrización se retrasa. Cambios de agua del 10 % semanal. |
12. ✅ CONCLUSIÓN
Micromussa lordhowensis es un LPS excelente para acuaristas avanzados que acepten su ritmo lento y su sensibilidad a la estabilidad química. No es un coral de “poner y olvidar”: exige alimentación dirigida 2-3 veces por semana, luz atenuada de 50-150 µmol·m⁻²·s⁻¹, flujo indirecto y un dKH clavado en 7,5-8,5. Su gran fortaleza es la resistencia a nutrientes moderados (NO₃ 5-15 mg/L) y su capacidad de regeneración tras fragmentación; su gran debilidad son los cambios bruscos de alcalinidad, el flujo laminar directo y la comida no retirada, que abre la puerta a infecciones bacterianas.
Si vienes de SPS con nutrientes ultrabajos, ajusta primero el sistema: este coral se vuelve translúcido y pierde color antes de morir. Si vienes de blandos, vigila la agresividad: sus filamentos mesentéricos dañan vecinos a varios centímetros. Con cuarentena de 45 días, revisión de Waminoa, separación de 8-10 cm y fragmentación con sierra de banda, una colonia de 6-8 pólipos puede duplicarse en 12-18 meses. Es un coral de paciencia y observación, no de correcciones rápidas.
❓ PREGUNTAS FRECUENTES
¿Debo llamarlo Acanthastrea o Micromussa lordhowensis?
Ambos nombres circulan en el comercio, pero el válido en la actualidad es Micromussa lordhowensis. La especie fue descrita por Veron y Pichon en 1980 con localidad tipo en la isla de Lord Howe (mar de Tasmania), y la revisión molecular y morfológica de la familia Lobophylliidae (Arrigoni et al., 2016; Huang et al., 2016) la transfirió al género Micromussa. En acuariofilia se sigue usando «Acan lord» por inercia comercial. No la confundas con Acanthastrea echinata —cálices mayores, más cónicos y con tejido menos expansivo— ni con Micromussa amakusensis, de cálices de 3-6 mm frente a los 5-15 mm de M. lordhowensis.
¿Qué parámetros exactos necesita?
Temperatura 24-26 °C; salinidad 35 g/L (densidad 1.025-1.026); alcalinidad 7,5-9 dKH con oscilación diaria inferior a 0,5 dKH; calcio 420-450 mg/L; magnesio 1300-1350 mg/L; nitrato 5-15 mg/L y fosfato 0,03-0,08 mg/L. Tolera agua con nutrientes moderados mejor que un sistema ultraoligotrófico: en NO₃ por debajo de 2 mg/L los pólipos se aclaran y el crecimiento se detiene. El factor crítico no es el valor absoluto sino la estabilidad: los desajustes de alcalinidad producen retracción del tejido en 24-48 horas, y la exposición prolongada a dKH superior a 11 provoca necrosis marginal.
¿Cuánta luz y corriente admite?
Es un coral de arrecife protegido: 50-150 µmol/m²/s de PAR (fotosintéticamente activa), es decir, fondo o zona baja con espectro cargado de azul. Por encima de 250 µmol/m²/s aparece blanqueamiento de los centros de los pólipos en una o dos semanas. Corriente moderada e indirecta; un giro de 10-20 veces el volumen del acuario por hora a nivel de tanque es adecuado, pero nunca dirigida frontalmente sobre la colonia, porque el flujo laminar fuerte erosiona el tejido blando entre cálices. Emite tentáculos barrendero y ejerce alelopatía: deja 8-10 cm de separación con otros LPS y aleja zoantídeos y corales blandos del contacto directo.
¿Cómo y con qué frecuencia la alimento?
Es un heterótrofo voraz. Suministra mysis, krill picado o camarón en trozos de 3-5 mm, dos o tres veces por semana, preferiblemente con luz apagada, cuando extiende los tentáculos captores. Cada pólipo admite dos a cuatro mysis por toma; los trozos mayores de 6 mm los regurgita y ensucian el agua. Un tarro de 100 g de mysis a la semana para una colonia de 20 pólipos es una pauta razonable. La alimentación sostiene la tasa de crecimiento encepante (5-10 mm lineales al mes en condiciones óptimas); los aminoácidos líquidos no la sustituyen. Si el nitrato sube por encima de 20 mg/L, reduce la ración antes de aumentar el cambio de agua.
¿Se puede fragmentar sin matarla?
Sí, es uno de los LPS más sencillos de propagar. Usa sierra de banda con hoja de diamante o cortapernos (no tijeras) y secciona atravesando las paredes calcáreas, dejando al menos un pólipo completo con su boca en cada fragmento y evitando cortar tejido blando desgarrado. Desinfecta con yodo (baño de 10 minutos a dosis de 5 ml/L de solución de Lugol), coloca los fragmentos en zona de corriente suave y luz baja, y espera dos a tres semanas antes de reubicar. La regeneración del esqueleto es rápida, pero cada corte abre una vía de entrada para infecciones bacterianas, así que no fragmentes más de una vez cada dos meses por colonia.
¿Por qué se retrae el tejido o pierde color?
La causa más frecuente es el «brown jelly»: una infección por ciliados que convierte el pólipo en una masa parda y lo destruye en 24-48 horas. Actúa de inmediato: fragmenta lo sano, descarta lo afectado y haz baño de yodo; no intentes salvar el pólipo necrosado. En segundo lugar, revisa plagas: pequeños platelmintos poliplados se adhieren a la base de los pólipos y devoran tejido, y el camarón Lysmata puede picar los pólipos si le falta alimento. El blanqueamiento selectivo de los centros suele ser fotoinhibición, no enfermedad. Y descarta siempre una oscilación de alcalinidad o de salinidad en los últimos diez días antes de medicar nada.
📚 REFERENCIAS
- Arrigoni, R., Benzoni, F., Huang, D., Fukami, H., Chiari, Y., Hoeksema, B.W., Bonnard, I., Berumen, M.L. y Chen, C.A. (2016). «When forms meet genes: revision of the scleractinian genera Micromussa and Homophyllia (Lobophylliidae) with a description of two new species and one new genus». Zootaxa, 4131(5): 1-85.
- Huang, D., Arrigoni, R., Benzoni, F., Fukami, H., Knowlton, N., Smith, N.D., Stolarski, J., Chou, L.M. y Budd, A.F. (2016). «Taxonomic classification of the reef coral family Lobophylliidae (Cnidaria: Anthozoa: Scleractinia)». Zoological Journal of the Linnean Society, 178(3): 436-481.
- Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, vol. 2. Australian Institute of Marine Science, Townsville, 429 pp.
- Borneman, E.H. (2001). Aquarium Corals: Selection, Husbandry and Natural History. TFH Publications, Neptune City, 464 pp.
- Delbeek, J.C. y Sprung, J. (2005). The Reef Aquarium, vol. 3: Science, Art and Technology. Two Little Fishies, Miami Gardens, 680 pp.
- Calfo, A. y Fenner, B. (2003). Reef Invertebrates: An Essential Guide to Selection, Care and Compatibility. Reading Trees, Monroeville, 400 pp.
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia
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