Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia
📋 ÍNDICE DEL ARTÍCULO
- 1. 🌏 INTRODUCCIÓN
- 2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
- 3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
- 4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
- 5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
- 6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
- 7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
- 10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
- 11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
- 12. ✅ CONCLUSIÓN
1. 🌏 INTRODUCCIÓN
Duncanopsammia axifuga (Milne Edwards & Haime, 1848) es un coral pétreo colonial de la familia Dendrophylliidae, conocido en el hobby como «coral Duncan» o «whisker coral» (coral de bigotes). Su interés no es ornamental sino biológico: es la excepción que rompe la regla de los LPS. Se trata de un coral azooxantelado, es decir, carece de zooxanthellae simbiontes en sus tejidos, y sin embargo es uno de los pocos no fotosintéticos que un acuarista avanzado puede mantener con éxito sin un sistema dedicado de alimentación continuada. Frente a Tubastraea o Dendrophyllia, que exigen flujo unidireccional constante y alimentación varias veces al día, D. axifuga tolera perfectamente la iluminación de un acuario de arrecife mixto y responde de forma agresiva y rápida a la comida congelada.
La colonia es faceloide: cada pólipo secreta un coralito tubular e independiente, unido a los vecinos únicamente por una lámina basal de coenosteum poroso, sin fusión de paredes. Los coralitos miden habitualmente entre 9 y 14 mm de diámetro y pueden alcanzar 4-6 cm de altura en colonias maduras, que llegan a superar los 20-30 cm de extensión. El tejido es de color marrón grisáceo, verdoso o pardo, con el disco oral frecuentemente teñido de rosa, magenta o salmón. Los tentáculos son largos, cónicos y translúcidos, con un tentáculo por septo —24 a 36 en coralitos adultos— y ápices blancos o crema que le dan el aspecto de una margarita o de un bigote, de ahí sus nombres vernáculos. Esta dotación tentacular, inusualmente larga para un dendrofílido, es una adaptación a la captura de zooplancton en suspensión.
En acuariofilia su comportamiento es muy predecible: al detectar extracto de ajo, mysis o artemia, los pólipos extienden los tentáculos en 30-90 segundos y capturan activamente. La gemación es extratentacular, a partir del coenosarc basal, y en condiciones de alimentación intensiva la colonia puede duplicar el número de coralitos en 12-18 meses. Es un coral poco agresivo en comparación con otros LPS, pero sus tentáculos barrenderos pueden dañar tejidos blandos vecinos si se le deja crecer contra ellos.
2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
Duncanopsammia es un género monotípico erigido por Milne Edwards y Haime en el siglo XIX y mantenido sin cambios en las revisiones filogenéticas moleculares de Scleractinia. Se sitúa en el suborden Dendrophylliina, un linaje casi exclusivamente azooxantelado que incluye también a Tubastraea, Dendrophyllia, Balanophyllia, Rhizopsammia y Turbinaria. La posición de Duncanopsammia dentro de la familia se apoya en caracteres esqueléticos: septos porosos con bordes dentados y dispuestos en tres ciclos, pared septal con perforaciones y ausencia de simbiontes en el tejido.
| Categoría | Clasificación |
|---|---|
| Reino | Animalia |
| Filo | Cnidaria |
| Clase | Anthozoa |
| Subclase | Hexacorallia |
| Orden | Scleractinia |
| Suborden | Dendrophylliina |
| Familia | Dendrophylliidae |
| Género | Duncanopsammia (monotípico) |
| Especie | Duncanopsammia axifuga |
| Autor y año | Milne Edwards & Haime, 1848 |
| Nutrición | Azooxantelado (heterótrofo obligado) |
| Forma colonial | Faceloide / dendroide con coenosarc basal |
| Estado IUCN | Preocupación menor (LC) — evaluación global de corales escleractinios |
El nombre genérico alude a su parecido con Duncania (hoy Dendrophyllia) y con Psammocora; el epíteto axifuga describe la base del coralito. No existen subespecies ni sinónimos taxonómicos vigentes, aunque en el comercio se han manejado morfotipos con diferencias apreciables de coloración (ejemplares de disco rosado intenso frente a formas pardas monótonas) que no tienen respaldo taxonómico y probablemente corresponden a variación intraespecífica o a fotoadaptación en origen. Es importante no confundirlo con Tubastraea coccinea: los pólipos del Duncan son solitarios, grandes y de tentáculos largos, mientras que los de Tubastraea son más pequeños, de tentáculos cortos y bordes naranjas característicos.
3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
Su área de distribución comprende el Índico oriental y el Pacífico oeste-central: norte y oeste de Australia (Kimberley, puerto de Darwin, Tierra de Arnhem, Gran Barrera de Coral y Queensland meridional), Papúa Nueva Guinea, mar de Arafura y diversas localidades de Indonesia oriental. Se cita desde la superficie hasta unos 40 m de profundidad, con la mayor densidad entre 5 y 25 m. Curiosamente, no es un coral de arrecife prístino: aparece con frecuencia en aguas costeras turbias, en hábitats de sedimentación alta y visibilidad reducida, lo que explica su tolerancia a parámetros menos limpios que los de un acuario SPS.
Microhábitat típico: laderas verticales, paredes de roca caliza, repisas y techos de cuevas, bloques de coral muerto, pilotes y estructuras sumergidas, siempre en zonas con corriente de marea que renueva el plancton sin golpear directamente la colonia. En Darwin o en Kimberley prefiere los sectores laterales de los arrecifes costeros, con sedimento fino en suspensión y fuertes corrientes tidales; rara vez se asienta sobre la cresta expuesta. La forma de crecimiento tubular y la fijación mediante coenosarc favorecen su establecimiento en sustratos con acumulación de sedimento, ya que los coralitos se elevan por encima de la capa de limo.
Del hábitat natural se derivan parámetros concretos de mantenimiento: temperatura de 24-30 °C (óptimo 25-27 °C con estabilidad térmica), salinidad 33-35, dureza de carbonatos 7-9 dKH, nitratos entre 2 y 10 mg/L y fosfatos 0,03-0,10 mg/L. El flujo ideal es medio e indirecto —una renovación de 15-25 veces el volumen del acuario por hora, sin chorros directos sobre los pólipos—, porque un flujo laminar fuerte impide la captura de alimento y un flujo nulo provoca acumulación de detritus entre coralitos. La iluminación es indiferente para su nutrición; en la práctica se mantiene bajo luz baja o media, en zonas sombreadas o en el tercio inferior del tanque, donde la exposición excesiva de PAR puede inducir la retracción parcial de los pólipos por estrés lumínico. La combinación de esta tolerancia a la turbidez, su alimentación heterótrofa y su capacidad de gemación rápida lo convierten en uno de los pocos dendrofílidos realmente recomendables como primer coral no fotosintético.
4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
Duncanopsammia axifuga es un coral escleractinio colonial de la familia Dendrophylliidae, conocido en acuariofilia como “Duncan” o “whisker coral”. Su arquitectura es faceloide: cada pólipo vive dentro de un coralito tubular y alargado, y varios coralitos nacen de una base común de coenosteum, sin formar ramas macizas ni láminas. Los coralitos miden habitualmente entre 8 y 15 mm de diámetro, con pared fina, porosa y de aragonito, lo que explica que el esqueleto sea relativamente frágil frente a golpes o presión excesiva. Los septos se disponen en ciclos y presentan bordes dentados; no son los septos gruesos y masivos de un Favites ni la estructura meandroide de un Caulastraea.
El pólipo expandido muestra un disco oral central con boca y una corona de tentáculos largos, cónicos y translúcidos, a menudo con tonalidades verdes, grises, marrones o rosadas según el morfo. Esos tentáculos pueden extenderse varios centímetros y le dan el aspecto de “bigotes” que justifica su nombre común; no son tentáculos sweeper especializados como los de algunos Lobophyllia, pero sí aumentan mucho el radio de contacto del coral. La coloración procede en buena parte de las zooxantelas simbióticas alojadas en el gastrodermo; se trata de dinoflagelados de la familia Symbiodiniaceae. La simbiosis aporta fotosintatos, pero D. axifuga conserva una capacidad heterótrofa muy marcada: captura mysis, copépodos, artemia enriquecida y alimento particulado con los nematocistos de los tentáculos. Cuando se contrae, el pólipo se retrae dentro del coralito y queda visible el tubo calcáreo; una retracción prolongada sin causa mecánica suele indicar estrés por luz, flujo, alcalinidad o nutrientes.
El crecimiento se produce por gemación lateral basal: aparecen nuevos coralitos en la periferia de la colonia, inicialmente cortos, que se alargan y se separan del progenitor. Esto produce colonias de aspecto arbustivo pero hueco, no compacto. El coralito viejo puede quedar cubierto por incrustaciones o algas si no recibe luz y flujo suficientes, mientras los pólipos nuevos crecen en la base. La densidad del esqueleto y la porosidad del coenosteum hacen que la fijación al sustrato sea importante: un fragmento mal pegado puede volcar y dañar los pólipos.
5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
Duncanopsammia axifuga es robusto dentro de los LPS, pero no tolera bien los extremos oscilantes. Requiere agua madura, estable y con alcalinidad controlada; los cambios bruscos de KH son una causa frecuente de retracción y de pérdida de tejido en la base de los coralitos. Mantén densidad y temperatura estables, y evita variaciones superiores a 1 °C al día. La iluminación debe ser moderada y aclimatada: pasa de 75 a 100 PAR durante varias semanas antes de acercarlo a 150 PAR. Un exceso de luz directa puede blanquear los pólipos, sobre todo si los nutrientes están muy bajos; una luz demasiado débil hace que los tentáculos se alarguen en exceso y que la colonia pierda color.
| Parámetro | Valor recomendado | Observaciones específicas |
|---|---|---|
| Temperatura | 24-26 °C (rango 23-27 °C) | Evitar más de 28 °C; estabilidad diaria ±0,5-1 °C |
| Salinidad | 34-35 ppt (1,025-1,026) | Medir con refractómetro calibrado; no usar hidrómetro de burbuja |
| pH | 8,1-8,4 | Evitar bajadas nocturnas fuertes; buena aireación |
| KH | 7-9 dKH (2,5-3,2 meq/L) | Mantenerlo estable; no perseguir valores altos si hay poco consumo |
| Calcio | 420-450 mg/L | El coralito tubular consume calcio de forma moderada |
| Magnesio | 1.250-1.350 mg/L | Por debajo de 1.200 mg/L cuesta mantener Ca y KH |
| Nitratos | 2-10 mg/L NO3 | Con NO3 indetectable se empobrece el color y disminuye la extensión |
| Fosfatos | 0,03-0,08 mg/L PO4 | Evitar 0,00 mantenido; por encima de 0,15 aparece algas en coralitos viejos |
| Luz | 75-150 PAR, moderada | Fotoperíodo 8-10 h; aclimatar a la baja si viene de luz fuerte |
| Flujo | Moderado e indirecto | Alternancia suave; evitar chorro laminar directo sobre los pólipos |
El flujo ideal mueve los tentáculos sin plegarlos de forma permanente. En un arrecife mixto, colócalo en una zona con corriente intermitente que renueve el agua alrededor de los coralitos, pero sin impactar de frente sobre el disco oral. Un flujo demasiado fuerte impide la expansión y favorece retracciones; uno demasiado débil permite acumulación de detritos entre los tubos. La alimentación con mysis o pellets pequeños dos o tres veces por semana mejora el crecimiento de nuevos coralitos, siempre retirando el exceso para no disparar fosfatos.
6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
Coloca Duncanopsammia axifuga en la parte baja o media del acuario, sobre roca estable y con espacio libre alrededor. Su coralito tubular necesita una base sólida donde el coenosteum se adhiera; no lo dejes suelto sobre arena, porque el movimiento lo entierra parcialmente y daña los pólipos inferiores. Calcula un margen de 10-15 cm respecto a corales vecinos: los tentáculos extendidos pueden contactar con otros LPS y generar competencia, aunque el Duncan suele ser menos agresivo que un Euphyllia o un Lobophyllia. Evita colocarlo bajo montajes de Acropora o en corrientes descendentes que arrastren detritos hacia los tubos.
El crecimiento es moderado: primero aparecen yemas basales pequeñas, luego se alargan los coralitos y la colonia gana volumen. Con parámetros estables y alimentación regular, una colonia sana puede duplicar su número de pólipos en varios meses, pero no es un coral de crecimiento rápido. La luz moderada favorece la calcificación sin blanquear; la alimentación aporta proteínas para la gemación. Si los pólipos se alargan mucho y pierden color, revisa luz y nutrientes antes de aumentar la comida.
Para fragmentar, usa cortaalambres de hueso o una sierra de coral limpia y corta preferentemente entre coralitos o a través de un tubo con un pólipo completo. Cada fragmento debe incluir al menos un pólipo sano, parte del coralito y algo de coenosteum basal; un trozo sin pólipo no regenera una colonia viable. Haz cortes limpios, evita aplastar la pared porosa y seca el exceso de mucus. Fija el fragmento con cianocrilato gel o masilla epoxi sobre un fragmento de roca o plug, sin cubrir el disco oral ni los tentáculos. Deja curar en una zona de flujo moderado y luz media-baja durante 7-14 días; si hay retracción intensa, mantén el fragmento sin corriente directa y revisa KH y salinidad. Un baño de yodo suave tras el corte puede reducir infección, pero no sustituye una técnica limpia ni una buena estabilidad química.
7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
Duncanopsammia axifuga es un coral pasivo, sin tentáculos barrendores eficaces (los suyos no superan 3-5 cm y son débiles) y con un esqueleto faceloidal de ramas tubulares finas que se rompen con facilidad. Su principal defensa no es química ni agresiva, sino la retracción rápida del pólipo. Esto condiciona toda la lista de compañeros: el riesgo no es que el Duncan dañe, sino que sea dañado o desestabilizado.
Peces seguros. Centropyge loricula, C. acanthops y C. argi ignoran sistemáticamente al Duncan; Genicanthus spp. son los únicos ángeles grandes que no lo picotean. Ctenochaetus y Zebrasoma raspan algas de la base del esqueleto sin tocar tejido. Cirrhitichthys oxycephalus se posa sobre las ramas sin causar lesión, aunque comprime los pólipos mientras permanece. Blénidos como Salarias fasciatus o Ecsenius spp. pastan entre coralitos y son inofensivos. Synchiropus splendidus y los Gramma/Pseudochromis pequeños no interactúan con el coral.
Peces de riesgo. Descarta Pomacanthus, Holacanthus y Apolemichthys: picotean el disco oral y provocan retracción crónica. Cualquier Chaetodon coralívoro obligado (C. trifasciatus, C. ornatissimus, C. meyeri) lo destruye en días; el menos problemático del género es C. kleinii, y aun así es una apuesta. Balístidos, Arothron y Diodon trituran el esqueleto tubular; Cantherhines
10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
- Ancla la colonia; no la «apoyes». Duncanopsammia axifuga construye corallites tubulares y ramificados de 10-14 mm de diámetro que crecen en vertical, desplazando el centro de gravedad de la colonia hacia arriba. Una colonia de 20 polígonos ya vuelca con el empuje de una bomba de 3.000 l/h, y la rotura se produce siempre en la unión basal, el punto mecánicamente más débil. Fija la base con masilla epoxi sobre roca plana y deja que el tejido incrustante colonice la piedra: en 3-4 meses el propio esqueleto la asegura. Si el coral toca una roca lateral, emite yemas nuevas sobre ella.
- La alimentación es el factor limitante del crecimiento. Es una especie zooxantelada, pero su tasa de crecimiento depende casi linealmente del alimento particulado. Suministra mysis, krill picado o langostino en trozos de 2-3 mm tres o cuatro veces por semana. El polípodo solo captura si el alimento contacta con los tentáculos: usa pipeta o campana de alimentación para que los peces no se lo lleven. La captura y cierre del polípodo tarda entre 5 y 15 minutos; retira con sifón lo que quede fuera a los 20 minutos.
- Distingue el hambre de la luz. No confundas este coral con un Tubastraea (no fotosintético): el Duncan extiende tentáculos durante el día si está bien alimentado y aclimatado, pero en cuanto la luz supera los 250-300 PAR retrae los polígonos de forma sostenida y el disco oral palidece. Rango óptimo: 100-200 PAR, 8-10 horas de fotoperiodo.
- Flujo moderado y alternante, con limpieza activa. El movimiento debe mecer los tentáculos sin doblarlos. El punto crítico es el espacio entre corallites: allí se acumula detrito que provoca recesión tisular en la base de los tubos, el fallo más habitual en esta especie. Una jeringa de 20 ml o una pera de goma dirigida a la base una vez por semana previene el problema mejor que cualquier aditivo.
- Alcalinidad sin oscilaciones. Con alimentación intensa el consumo de carbonatos se dispara: mantén dKH 8-9, calcio 420-450 ppm y magnesio 1.300-1.350 ppm, con variaciones inferiores a 1 dKH al día. Una caída brusca por debajo de 7 provoca recesión del tejido basal en 48-72 horas, y es el error más frecuente en acuarios con kalkwasser mal dosificado.
- Aprovecha su yemación para fragmentar. Las yemas aparecen en la pared lateral del corallite, cerca de la base. Con alimentación sostenida, una colonia de 6 polígonos puede superar los 30 en un año. Corta ramas con alicates de hueso dejando 2-3 polígonos por fragmento, sécalos al aire menos de 30 segundos, pégalos con cianocrilato gel y mantenlos 2 semanas en zona de flujo suave.
- Espacio de seguridad de 6-8 cm. No es un coral agresivo, pero sus tentáculos largos con acrosferas blancas son un blanco fácil: pierde frente a Euphyllia, Galaxea y ante cualquier especie que lo sofoque por crecimiento lateral (zoantídeos, montíporas incrustantes).
- Indicadores de salud concretos. Disco oral verde-azulado a turquesa y tentáculos translúcidos con punta blanca = colonia sana. Disco marrón oscuro y retracción diurna persistente = flujo excesivo o irradiancia alta. Recesión anular en la base del tubo = detrito acumulado o desestabilización del dKH.
- Compra y cuarentena. Rechaza colonias con la base agrietada, masilla antigua o tejido retraído en el extremo de los tubos (necrosis por transporte). Cuarentena de 3-4 semanas y baño de yodo suave: tolera bien las inmersiones. Evita compañeros de tanque que picoteen tentáculos largos: Pomacanthus, Chaetodon y los camarones Lysmata, que les roban el alimento directamente del polípodo.
11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
| Estación | Tareas específicas | Parámetros objetivo | Riesgo a vigilar |
|---|---|---|---|
| Primavera (mar-abr-may) | Subir a 4 tomas semanales de mysis para estimular la yemación; revisar y reforzar el anclaje de colonias volcadas; limpiar con jeringa el espacio entre corallites. | 25 °C; dKH 8,5; Ca 430; Mg 1.320; NO₃ 5-10; PO₄ <0,05 | Subida de temperatura por cambio de luz ambiental; yemas rotas al manipular. |
| Verano (jun-jul-ago) | Priorizar refrigeración y relleno de evaporación; reducir a 2-3 tomas si el agua supera 27 °C; evitar sol directo sobre el acuario. | 25-26 °C (máx. 27 °C); salinidad 35 ppt; dKH 8-9 | Pico térmico → retracción y blanqueo del disco; fallo de bomba de relleno → salinidad alta. |
| Otoño (sep-oct-nov) | Fragmentar ramas y resembrar; recalibrar sondas de dKH y salinidad; aumentar la observación del consumo de carbonatos tras el crecimiento estival. | 25 °C; dKH 8,5-9; Ca 440; Mg 1.330 | Consumo de alcalinidad infravalorado; infección de las superficies de corte. |
| Invierno (dic-ene-feb) | Mantener 3 tomas semanales; revisar calentador y humedad de la sala; no recortar el fotoperiodo por debajo de 8 horas. | 25 °C; dKH 8; NO₃ 5-10; PO₄ <0,05 | Fallo del termostato (agua fría) y bajada de apetito; acumulación de detrito por menor movimiento de agua. |
12. ✅ CONCLUSIÓN
Duncanopsammia axifuga es probablemente el LPS colonial con mejor relación entre facilidad, velocidad de crecimiento y espectáculo visual: extiende tentáculos de día, acepta alimento congelado de forma inmediata y produce yemas visibles en semanas. Precisamente por eso se subestima. No es un coral «de dejarse»: sin alimento particulado 3-4 veces por semana el crecimiento se estanca, y sin alcalinidad estable aparece la recesión basal que arruina colonias por lo demás sanas.
La receta que funciona es corta: anclaje firme con epoxi, 100-200 PAR, flujo alternante moderado, dKH 8-9 con oscilaciones mínimas, temperatura de 25-26 °C y alimentación generosa con retirada de restos. Añade limpieza mecánica entre corallites cada semana y tendrás una colonia que pasa de 6 a 30 polígonos en un año y que puedes fragmentar para cambiar por otros corales.
Si buscas un primer LPS ramificado, empieza por aquí; si ya lo tienes, revisa el dKH y la alimentación antes de culpar a la iluminación. Es un coral que perdona errores de luz, pero no errores de estabilidad química ni de nutrición.
🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS
El acoplamiento crítico de Duncanopsammia axifuga es el que une alimentación, alcalinidad y disponibilidad de calcio: es un dendrofílido con esqueleto poroso y crecimiento rápido por gemación, y una colonia de 30–40 pólipos bien alimentada puede consumir 0,4–0,7 dKH/día en 200 L, además de 8–12 mg/L de calcio diarios. Mantén KH 7,5–8,5, Ca 420–440 mg/L, Mg 1290–1320 mg/L, salinidad 34,5–35 y temperatura 25,5–26,5 °C. La regla práctica es que cada incremento de alimentación —tres tomas semanales de mysis o krill de 3–5 mm— eleva la demanda alcalina un 25–35 % en dos semanas; si no subes la dosificación, el KH cae y aparecen recesiones basales que se atribuyen erróneamente a enfermedad. A la inversa, en sistemas ULNS (NO₃ <1 mg/L, PO₄ <0,03 mg/L) la especie pierde extensión de pólipos y adelgaza tejido: tolera bien NO₃ 5–15 mg/L y PO₄ 0,05–0,12 mg/L. No persigas valores de arrecife oligotrófico con este coral; ajusta exportación y alimentación en paralelo, nunca por separado.
En competencia química, D. axifuga es más vulnerable de lo que su aspecto sugiere. Compite de forma física con tentáculos barredores nocturnos de 4–8 cm y everte filamentos mesentéricos sobre la roca adyacente, pero pierde casi siempre frente a Euphyllia, Galaxea, Echinopora o Palythoa, cuyas toxinas y nematocistos provocan necrosis lineal en 48–72 h. El conflicto más insidioso es alelopático: Sinularia, Sarcophyton y Lobophytum liberan terpenos que, con el carbón agotado, reducen la extensión de pólipos y frenan la calcificación sin lesión visible. Usa carbón activado a 0,5–1 g/L, cambiado cada 15 días, y respeta 12–15 cm de separación con LPS agresivos y 20 cm con blandos de crecimiento rápido. Señal de alerta: pólipos abiertos de noche pero retraídos de día, con agua amarillenta. Si tras el carbón y un cambio de agua del 20 % la extensión no vuelve en 10 días, busca contacto oculto de un blando sobre la base del esqueleto.
D. axifuga responde a la luz con lentitud y de forma poco intuitiva: su rango cómodo
❓ PREGUNTAS FRECUENTES
1. Si es azooxantelado, ¿necesita iluminación intensa?
No. Duncanopsammia axifuga carece de zooxantelas simbióticas: es un heterótrofo obligado. En su hábitat natural vive en fondos costeros turbios y sombreados del norte de Australia (Kimberley, Territorio del Norte y Queensland) y del sur de Nueva Guinea, aproximadamente entre 5 y 30 m, donde la luz es difusa y la carga de plancton, alta. En acuario se mantiene perfectamente con PAR de 100–250 µmol·m⁻²·s⁻¹, e incluso en sombra parcial bajo salientes; la luz no es un factor limitante. Una exposición excesiva solo favorece la colonización de algas sobre el esqueleto expuesto de los cálices tubulares y el estolón que los une. Colócalo en la zona baja o media, con 8–10 cm libres alrededor para facilitar la alimentación dirigida.
2. ¿Cómo y con qué frecuencia hay que alimentarlo?
Es el punto crítico de la especie. Cada pólipo captura presas de 3–8 mm: mysis, krill descongelado y enjuagado, gamba o calamar picado, y pellets de 2 mm humedecidos. Mínimo tres veces por semana; lo ideal es alimentación diaria en raciones pequeñas, pólipo a pólipo. Usa pipeta o jeringa para depositar la papilla sobre el disco oral y retira el excedente con una bomba a los 15–20 minutos para no disparar el fosfato. Ni los aminoácidos líquidos ni el fitoplancton sustituyen una presa completa: los tentáculos de 2–3 cm están diseñados para capturar macroplancton. El indicador real de éxito es el crecimiento del cáliz y la emisión de nuevos estolones, no la apertura del pólipo.
3. ¿Qué parámetros exactos requiere?
Temperatura 24–26 °C, salinidad 34–35 g/L, alcalinidad 7–9 dKH con oscilación diaria inferior a 0,3 dKH, calcio 400–450 mg/L y magnesio 1250–1350 mg/L. A diferencia de los corales fotosintéticos, tolera y agradece sistemas con nutrientes moderados-altos: NO₃ 5–20 mg/L y PO₄ 0,03–0,10 mg/L. Los sistemas ultralow nutrient lo matan de inanición. Mantén el yodo y el estroncio dentro de rangos naturales sin dosificaciones empíricas.
4. ¿Por qué se retraen los pólipos o se produce «bailout»?
La causa número uno es la inanición: dos o tres semanas sin presas suficientes producen retracción progresiva, adelgazamiento del tejido y reabsorción de cálices. Otras causas son flujo laminar directo e intenso, cambios bruscos de salinidad o alcalinidad, depredadores (cangrejos, caracoles, nudibranquios), incrustación de algas o vermétidos en el esqueleto desnudo y competencia por contacto con tejido blando vecino. El bailout —desprendimiento del pólipo con fragmento de esqueleto— es una respuesta a estrés agudo y suele ser recuperable si el pólipo desprendido se fija en una zona de flujo suave y se alimenta a diario.
5. ¿Cómo se fragmenta sin dañar la colonia?
La especie es faceloide: cálices tubulares independientes unidos por estolones basales, lo que permite cortar el esqueleto con sierra de coral o Dremel atravesando el tubo por debajo del tejido retraído. Deja 2–4 pólipos por fragmento y conserva siempre tejido continuo hasta la base, porque el esqueleto es poroso y se astilla con facilidad. Fija con cianocrilato en gel o masilla epoxi sobre un fragmento de roca, en zona de flujo moderado. La cicatrización tarda 2–4 semanas con alimentación diaria. La gemación extratentacular natural genera nuevos cálices sobre el estolón y produce colonias densas en 12–18 meses.
6. ¿Se confunde con Tubastraea y es agresivo con sus vecinos?
Se distingue bien: Duncanopsammia axifuga presenta cálices tubulares unidos por estolones y tentáculos gris-verdosos con ápices blancos dispuestos en dos series; Tubastraea micranthus es ramificado y negro-verdoso, y T. coccinea tiene pólipos menores y anaranjados. Su agresividad es moderada: no se le conocen tentáculos barredores largos documentados, pero el contacto daña tejido blando. Sepáralo de Euphyllia, Galaxea y Catalaphyllia, y sobre todo de colonizadores rápidos como Zoanthus o Briareum, que lo cubren y lo asfixian. Depredadores habituales: cangrejos ermitaños y caracoles que raspan el tejido. Recuerda que todas las Scleractinia están en el Apéndice II de CITES y requieren documentación de origen legal.
📚 REFERENCIAS
- Milne Edwards, H. & Haime, J. (1848). Recherches sur les polypiers. Monographie des Astréides. Annales des Sciences Naturelles, Zoologie, 3e série, 10. Descripción original como Dendrophyllia axifuga.
- Cairns, S.D. (2001). A generic revision and phylogenetic analysis of the Dendrophylliidae (Cnidaria: Scleractinia). Smithsonian Contributions to Zoology, 615: 1–75.
- Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, Vol. 3. Australian Institute of Marine Science, Townsville.
- WoRMS Editorial Board. Duncanopsammia axifuga (Milne Edwards & Haime, 1848). World Register of Marine Species, Flanders Marine Institute.
- Borneman, E.H. (2001). Aquarium Corals: Selection, Husbandry and Natural History. T.F.H. Publications, Neptune City.
- Delbeek, J.C. & Sprung, J. (2005). The Reef Aquarium, Vol. 3: Science, Art and
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