Leptoseris mycetoseroides

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Leptoseris mycetoseroides Wells, 1954 es un escleractínio zooxantelado de la familia Agariciidae cuyo nombre específico alude a su parecido superficial con el género fósil Mycetoseris. Se trata de un coral de morfología laminar-incrustante, esqueleto notablemente fino y crecimiento unifacial: los cálices se disponen exclusivamente sobre la cara superior, mientras el reverso queda liso, costulado y sin pólipos, en contacto directo con el sustrato o elevado en repisas de bordes translúcidos. Es una de las especies de Leptoseris más frecuentes en el comercio europeo, aunque rara vez se identifica a nivel específico: llega al acuario bajo la etiqueta genérica «Leptoseris» mezclada con L. papyracea, L. incrustans e incluso con cicloséridos de morfología convergente.

Su interés en acuariofilia marina es doble. Por un lado, es un SPS genuino —esqueleto aragonítico, pólipos retráctiles, simbiosis con Cladocopium— pero con exigencias lumínicas propias de ambientes mesofóticos, lo que permite mantenerlo en zonas del acuario donde la mayoría de los SPS pequeños pólipos blanquean. Por otro, su tolerancia a parámetros estables pero no ultraprecisos lo convierte en una excelente especie «puente» para acuaristas que dominan el mantenimiento de LPS y quieren iniciarse en corales pétreos sin asumir el riesgo de un Acropora.

Conviene desterrar la idea de que se trata de un coral «de relleno». Bien asentado, coloniza la roca viva con una lámina delgada que avanza lentamente —del orden de milímetros a pocos centímetros al año— y desarrolla un patrón de costillas radiales y cálices inmersos de 1,5-3 mm de diámetro que, con iluminación actínica, revela fluorescencias verdes, ocres o anaranjadas en el margen de crecimiento. Su punto débil no es la química del agua, sino la competencia por espacio y la irradiancia excesiva, que provoca retracción persistente de pólipos y blanqueamiento en pocos días.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

La posición taxonómica de L. mycetoseroides es estable desde su descripción, aunque la delimitación de especies dentro del género sigue dependiendo de caracteres esqueletales finos (número de ciclos septales, desarrollo de sináptículos y densidad de cálices), lo que explica las frecuentes identificaciones erróneas del material comercial.

El género Leptoseris se distingue de Pachyseris por la ausencia de crestas continuas y de Agaricia por la carencia de cálices en la cara inferior. La clave práctica en el acuario es la combinación de lámina finísima con cálices inmersos pequeños y un borde de crecimiento pálido y translúcido, no elevado.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Su distribución abarca el Indo-Pacífico tropical: mar Rojo, África oriental, Madagascar, islas del Índico, Sudeste asiático, mar de China Meridional, Japón meridional, Gran Barrera de Coral, Micronesia, Hawái y Polinesia Francesa. Se cita desde el nivel del mar hasta más de 40 m, pero su óptimo está en laderas profundas y ambientes protegidos de la radiación directa: repisas horizontales bajo salientes, paredes verticales sombreadas, techos de cuevas y canales entre cabezas de coral muerto. En el género existen registros mesofóticos por debajo de 100 m, lo que da idea de la plasticidad fotobiológica de estos agarícidos.

El hábitat típico es agua oligotrófica, muy transparente, con temperatura de 24-29 °C, salinidad estable en torno a 34-35 y valores de nutrientes disueltos bajos. La irradiancia incidente en muchas de sus poblaciones es inferior a 100 µmol·m⁻²·s⁻¹, e incluso por debajo de 50 en estaciones profundas; el espectro dominante es azul, con rápida atenuación del rojo. Esta adaptación se traduce en colonias con esqueleto ligero y alta relación superficie/volumen, y en una maquinaria fotosintética con pigmentos ajustados a baja luz: por eso la exposición directa a lámparas de LED de alta potencia es su principal causa de pérdida en cautividad.

En términos de biología de arrecife, L. mycetoseroides no es una especie constructora de armazón: actúa como colonizador secundario que cementa sustrato muerto, cubre superficies horizontales libres y contribuye a la consolidación del arrecife en zonas donde la acreción carbonatada es lenta. Compite por espacio mediante crecimiento marginal lento pero persistente, y puede sobrecrecer a esponjas incrustantes, zoántidos y algas calcáreas; a su vez, es vulnerable al sobrecrecimiento por corales masivos de crecimiento rápido y por macroalgas en arrecifes eutrofizados. Su presencia se asocia a zonas de flujo suave a moderado, no a crestas batidas, ya que la lámina delgada se fractura con oleaje fuerte.

Para el acuarista, la traslación de este hábitat es directa: colocación en la mitad inferior o en zonas de sombra del acuario, con flujo indirecto y difuso —no chorro directo de bomba—, sustrato rugoso donde la base se adhiera y espacio libre lateral para que la lámina avance sin ser invadida. Los parámetros de referencia son calcio 400-450 mg/L, alcalinidad 7-9 dKH, magnesio 1250-1350 mg/L, nitrato 2-10 mg/L y fosfato 0,03-0,10 mg/L; valores de nutrientes en cero sostenidos provocan palidez, mientras que la luz intensa sin aclimatación desencadena retracción y necrosis marginal.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Leptoseris mycetoseroides (familia Agariciidae, orden Scleractinia) es un coral zooxantelado de morfología muy plástica, lo que explica buena parte de sus identificaciones erróneas en el comercio. En la naturaleza se presenta como colonia incrustante-nodular en sustratos verticales o en zonas de sombra, y como láminas horizontales superpuestas cuando dispone de sustrato libre y luz suficiente. Las placas son extraordinariamente finas —1,5-3 mm de espesor en el margen, algo más gruesas en el centro de la colonia— con bordes libres, ondulados y ligeramente elevados, que dejan ver la cara inferior estriada. Los bordes son frágiles: se fracturan con la manipulación y con corrientes fuertes.

El rasgo diagnóstico es la superficie: crestas meandriformes anastomosadas que forman un retículo denso, con los coralitos alojados en los valles entre crestas, no sobre ellas. Esto produce el aspecto «arrugado» o «cerebriforme» que da nombre a la especie. Los coralitos son inmersos, de 1-1,5 mm de diámetro, con 12-24 septos que se fusionan en septo-costas y continúan como estrías sobre el coenosteum; la columela es escasa o ausente y el borde septal presenta dentición fina. La densidad de coralitos es alta, del orden de 30-60 por cm², lo que da a la colonia un aspecto de superficie «graneada» a contraluz.

Los pólipos son pequeños, con tentáculos cortos y cónicos, apenas visibles durante el fotoperiodo. La expansión real es nocturna, con tentáculos filiformes finos y una corona de nematocistos débil: es un coral de baja agresividad, que no gana en conflictos por contacto frente a Acropora, Montipora de crecimiento rápido o Euphyllia. La boca suele presentar color contrastante (verde, turquesa o crema) frente a un tejido pardo-anaranjado, y es el mejor indicador de salud y de pigmentación estable.

Las zooxantelas (Symbiodiniaceae) se distribuyen de forma densa en el tejido, con una relación superficie/volumen altísima propia de las placas delgadas, lo que maximiza la captación de luz. L. mycetoseroides es una especie de amplio rango batimétrico, frecuente en taludes profundos y aguas turbias (habitualmente 10-40 m, con registros mesofóticos mucho más profundos), y sus poblaciones simbiontes muestran alta eficiencia fotosintética a irradiancias bajas, pero también escasa protección frente al exceso de luz: el tejido expuesto a PAR alto y a espectros pobres en azul se blanquea o adopta tonos marrón claro. La coloración (verde, naranja, rosa, púrpura) se debe a proteínas fluorescentes y cromoproteínas, moduladas por la luz y por los nutrientes disponibles. El margen de crecimiento activo se reconoce como una banda pálida de 2-5 mm sin pigmentación densa. Es mixótrofo: captura bacterias, fitoplancton de pequeño tamaño y detritus, y aprovecha materia orgánica disociada, un aporte relevante cuando se mantiene con luz moderada.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Es un coral tolerante a la variación de nutrientes, pero poco tolerante a la inestabilidad de la alcalinidad y a los cambios bruscos de salinidad. La clave es la estabilidad por encima de los valores absolutos. Los rangos que siguen están orientados a mantener pigmentación y crecimiento, no solo supervivencia.

Sobre la luz: por su origen mesofótico, responde mejor a la calidad espectral que a la intensidad. Un exceso de PAR con espectro completo y poco azul induce blanqueamiento del centro de la placa mientras el margen permanece coloreado, un patrón inverso al de muchos SPS. Sobre el flujo: la superficie estriada retiene detritos con facilidad; sin una corriente laminar que los arrastre, aparecen zonas necróticas localizadas bajo el sedimento. No requiere alimentación particulada obligatoria, pero 1-2 aportes semanales de fitoplancton de 5-30 µm o de alimentos para corales de tamaño fino mejoran la densidad de pigmento en sistemas con nutrientes bajos.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocación. Zona media-baja del acuario, sobre roca rugosa y con la placa ligeramente inclinada (15-30°) para que el detrito resbale. Tolera bien la semisombra y crece aceptablemente bajo salientes, pero no prospera en sombra total. Necesita una superficie de contacto firme: la colonia debe quedar apoyada en al menos el 60 % de su cara inferior, porque se fija por acreción de esqueleto en los puntos de contacto y tarda semanas en hacerlo. Evitar la vecindad de corales de crecimiento rápido y de anémonas o corales con tentáculos largos: su baja agresividad hace que sea sobrecrecido en pocos meses. Separación recomendada de 5-8 cm respecto a otros corales. Ojo con la acumulación de detritos en el borde inferior de placas montadas verticalmente: es el punto de entrada más habitual de necrosis por sedimento.

Crecimiento. Es un coral de crecimiento lento: en condiciones óptimas, la expansión radial de una placa joven es de 1-3 cm al año, y en colonias ya establecidas se reduce a 5-15 mm/año en el margen. El crecimiento se manifiesta primero como una banda pálida periférica y, en la cara inferior, como nuevas estrías de fijación al sustrato. Con KH y calcio estables y NO₃ en 2-8 mg/L, el borde avanza de forma continua; con alcalinidad oscilante, el margen se engrosa, se oscurece y deja de extenderse. Los crecimientos sobre roca muerta pueden cubrir 4-6 cm²/año; sobre cristal o plástico, la fijación es prácticamente nula.

Fragging. Se fragmenta cortando la placa con cizalla de hueso o, mejor, con disco de diamante a baja velocidad y refrigeración con agua del acuario. Cortes perpendiculares a la superficie, dejando al menos 5 mm de tejido sano desde el borde de crecimiento; fragmentos de 2-3 cm de diámetro son el tamaño mínimo viable. Evitar fragmentos con zonas de tejido necrótico o con epibiontes. La cicatrización del corte tarda 7-15 días y el nuevo borde de crecimiento aparece a las 2-3 semanas. Opcionalmente, baño de yodo diluido (1 gota de Lugol por 100 mL de agua del acuario, 5 minutos) para reducir infección bacteriana del corte. Fijación con cianoacrilato gel sobre roca viva o con epoxi en la base, nunca cubriendo tejido vivo. El fragmento debe quedar en la misma orientación lumínica que la colonia madre durante las dos primeras semanas y, si se cambia de nivel de luz, aclimatar como si fuera una pieza nueva. La tasa de éxito es alta (habitualmente >80 %) siempre que la temperatura y la salinidad se mantengan estables durante la cicatrización.

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Leptoseris mycetoseroides es un SPS incrustante-laminar, de tejido fino y crecimiento lento. Su principal riesgo no es la agresividad, sino el picoteo y el daño físico sobre placas frágiles. En acuario se integra bien en sistemas maduros, con roca estable y espacio libre alrededor, pero no debe colocarse en zonas de paso donde los peces rocen la colonia.

• Peces normalmente seguros: Amphiprion, cardenales (Pterapogon, Zoramia), anthias, blénidos, gobios no coralívoros, dragones (Synchiropus) y cirujanos pequeños que pastan algas sin dañar tejido. Los lábridos limpiadores y Halichoeres pequeños suelen ser compatibles, aunque pueden voltear fragmentos mal fijados.
• Peces de riesgo alto: loros, ángeles grandes (Pomacanthus, Pygoplites), mariposas (Chaetodon), filefish, peces globo, triggers y algunos Centropyge picotean tejido o mucus. Los hawkfish se posan sobre las placas y pueden irritar el borde de crecimiento.
• Invertebrados seguros: caracoles Trochus, Cerithium y Nassarius; cangrejos ermitaños con conchas de repuesto; camarones limpiadores (Lysmata) y pepinos de mar no coralívoros. Los erizos pequeños ayudan con algas, pero Diadema y erizos grandes pueden raspar la placa.
• Invertebrados problemáticos: cangrejos Xántidos, cangrejos gorila, Trapezia fuera de su hospedador natural, nudibranquios coralívoros, planarias (Waminoa, Convolutriloba), Asterina en exceso y anémonas que se desplazan. Los camarones pistola (Alpheus) pueden excavar bajo la colonia y desestabilizarla.
• Corales: mantén Leptoseris mycetoseroides lejos de LPS agresivos (Galaxea, Hydnophora, Euphyllia) y de montíporas de crecimiento rápido que la sombreen o la sobrecrezcan. No es un coral dominante; compite mal por espacio.

Cuarentena de 4-6 semanas y revisión del reverso de la placa son imprescindibles: los huevos de planarias y nudibranquios pasan desapercibidos. Un baño de yodo no elimina huevos; repítelo según el ciclo del parásito.

8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMÚNes

La patología más frecuente en L. mycetoseroides es el blanqueamiento por estrés lumínico o térmico. Es una especie de aguas profundas y baja irradiancia; exposiciones superiores a 150-200 PAR, temperaturas sostenidas por encima de 28-29 °C o cambios bruscos de alcalinidad producen palidez y retracción del tejido. La recuperación exige luz baja, 24-26 °C, salinidad estable (34-35 g/L) y parámetros estables, no “correcciones” rápidas.

• RTN/STN: la necrosis rápida puede arrasar una placa en 24-48 h. Suele desencadenarse por estrés de envío, choque de salinidad, alcalinidad inestable o infección bacteriana oportunista. Corta el margen sano con disco y sierra, descarta tejido necrótico, mejora el flujo y mantén parámetros estables; no cubras la herida con pegamento sobre tejido vivo.
• Blanqueamiento moteado: pérdida de zooxantelas en parches, a menudo por luz alta o cambios de espectro. Reduce la intensidad y prolonga el fotoperiodo de forma gradual; evita mover la colonia repetidamente.
• Parásitos y plagas: planarias y nudibranquios pueden cubrir el borde y sombrear el tejido; los copépodos y protozoos ciliados aparecen en tejido necrótico y no siempre son la causa primaria. Aiptasia, algas filamentosas y Valonia invaden bordes muertos. Los caracoles depredadores y cangrejos Xántidos deben retirarse manualmente.
• Problemas de manejo: la placa se fractura con facilidad; una mala fijación produce necrosis por presión. Evita epoxi abundante sobre el borde de crecimiento y no entierres el tejido en la arena.

Un dip de yodo o baño antiparasitario comercial ayuda con planarias y nudibranquios adultos, pero no sustituye la cuarentena. Si aparece RTN, no bañes toda la colonia en yodo si el tejido está abierto: primero corta y estabiliza.

9. 🌍 CONSERVACIÓN Y SOSTENIBILIDAD

Leptoseris mycetoseroides es un escleractínio incluido en el CITES Apéndice II como todos los Scleractinia. Su comercio internacional requiere permisos CITES y documentación de origen; no es Apéndice I, pero eso no autoriza recolección sin trazabilidad. Antes de comprar, exige al vendedor identificación específica, origen (maricultivo, acuacultura o silvestre) y número de permiso.

• Acuacultura: la fragmentación de placas es viable, aunque lenta. Los fragmentos deben tener borde de crecimiento y fijarse sobre base cerámica o roca con cianoacrilato, sin cubrir tejido vivo. Un fragmento de 2-3 cm puede tardar meses en formar una placa estable; no es una especie de producción rápida.
• Recolección silvestre: su hábitat profundo y su crecimiento lento la hacen vulnerable a la extracción de colonias maduras. La recolección ornamental debe ser manual, selectiva y con cuotas; rechaza placas arrancadas del sustrato natural o con base rocosa fracturada.
• Sostenibilidad: prioriza maricultivo y fragmentos de acuario; mantén cuarentena para no introducir plagas en sistemas de otros aficionados; no liberes material de acuario al mar. La especie no es una constructora principal de arrecife, pero forma parte de la fauna críptica y mesofótica que da complejidad al hábitat.

Su estado de conservación debe verificarse en la evaluación IUCN vigente; muchas especies del género tienen datos limitados. No la presentes como “no amenazada” sin fuente actualizada: la presión sobre arrecifes someros y mesofóticos, la mala calidad del agua y la recolección no traz

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

Leptoseris mycetoseroides es un escleractinio zooxantelado de la familia Agariciidae, de morfología incrustante a laminar, con coralitos pequeños e inmersos y septos poco exertos. En acuario no es un SPS de primera línea: su nicho real es la pared vertical, la repisa sombreada y la zona baja del arrecife, donde recibe luz indirecta y agua con partículas finas. Por eso rinde mejor en el tercio inferior o bajo un saliente, con PAR medido de 50-150 µmol·m⁻²·s⁻¹; puede aclimatarse a 200 si la subida es lenta, pero por encima de 250-300 µmol·m⁻²·s⁻¹ suele blanquear o perder color. No lo coloques en la cima de la roca viva.

• Luz y color: la coloración verde, naranja o marrón depende más del espectro y de los nutrientes que de una luz intensa. Con azul dominante y PAR bajo mantiene fluorescencia; con NO₃ por debajo de 1 ppm y PO₄ indetectable se vuelve pálido y crece casi en horizontal. Busca NO₃ 2-10 ppm y PO₄ 0,03-0,10 ppm.
• Flujo: moderado e indirecto, equivalente a 10-15 renovaciones por hora en la zona del coral. Evita bombas dirigidas de forma directa: el tejido marginal se retrae y deja expuesto el esqueleto. Un flujo laminar suave que mueva el moco sin arrancarlo es lo correcto.
• Parámetros: temperatura 24-26 °C, salinidad 35 g/L (1.025-1.026), pH 8,0-8,3, KH 7,5-8,5 dKH, Ca 400-450 mg/L, Mg 1250-1350 mg/L. Es más tolerante a nutrientes que Acropora, pero no a oscilaciones de KH superiores a 0,3 dKH/día; con luz baja su calcificación es menor y el consumo de alcalinidad puede pasar desapercibido.
• Sustrato y colocación: necesita roca sólida, no arena. Puede encrustar cristal y desbordar la placa base; deja 8-10 cm de margen respecto a Montipora o Acropora de crecimiento rápido, que la sombrean y acaban cubriéndola. No es agresiva, pero su borde incrustante puede invadir esqueletos muertos y roca desnuda.
• Alimentación: vive de sus zooxantelas; no requiere target feeding. Si se alimenta, usa partículas de 50-200 µm y aminoácidos muy diluidos, retirando el exceso. El alimento particulado sin skimmer eleva PO₄ y favorece algas filamentosas sobre su borde.
• Cuarentena y plagas: revisa la base y el borde en busca de planarias, copépodos harpacticoides y caracoles vermétidos. Un baño de yodo a media dosis, 5-8 minutos, es suficiente; evita KCl fuerte porque esta especie produce mucho moco y puede desprender tejido. No la cepilles.
• Fragmentación: al ser incrustante, corta con alicates de hueso un fragmento con tejido sano y pégalo con cianoacrilato gel sobre una base rugosa. No apliques pegamento sobre el tejido; deja 2-3 mm de margen y coloca el fragmento en sombra durante 7-10 días.

Un error frecuente es tratarla como un coral de arrecife somero. Si la subes a la zona alta para “mejorar el color”, activas blanqueamiento y estrés oxidativo. Si la mantienes en sombra con nutrientes estables, se expande como una lámina continua y puede convertirse en un fondo de color muy útil para zonas bajas del acuario.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

12. ✅ CONCLUSIÓN

Leptoseris mycetoseroides es un SPS de nicho sombreado, no un coral para la zona alta del arrecife. Su punto fuerte es ocupar paredes y repisas con PAR de 50-150 µmol·m⁻²·s⁻¹, flujo moderado y nutrientes detectables (NO₃ 2-10 ppm; PO₄ 0,03-0,10 ppm). Con KH estable en 7,5-8,5 dKH, Ca 400-450 mg/L y Mg 1250-1350 mg/L, se expande de forma lenta pero continua, sin la agresividad de otros incrustantes. La clave es no someterla a luz directa intensa, no limpiar su tejido y dejarle margen físico frente a corales de crecimiento rápido. Bien ubicada, es una especie duradera y visualmente útil en zonas bajas del acuario; mal ubicada, blanquea o es overgrowth por Montipora en pocas semanas.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

1. ¿Cómo distingo Leptoseris mycetoseroides de otras «Leptoseris» del comercio?

Leptoseris mycetoseroides Wells, 1954 (familia Agariciidae) forma colonias incrustantes que desarrollan láminas delgadas, a menudo superpuestas y con el borde libre elevado; la cara inferior de esas láminas es lisa, sin coralitos, detalle que ya la separa de agarícidos incrustantes como Pachyseris. Los coralitos son inmersos, pequeños (0,7–1,5 mm de diámetro), muy próximos entre sí, con septos rectos y finos dispuestos en dos ciclos y columela trabecular profunda. Se diferencia de L. incrustans por sus coralitos menores y más densos, de L. scabra por la superficie irregular con crestas y de L. papyracea por láminas menos frágiles y sin papilas. En el mercado se vende como «lepto naranja», «jack-o’-lantern» o «rainbow».

2. ¿Qué iluminación necesita exactamente?

Es un coral de ambientes crípticos y de arrecife mesofótico: en la naturaleza se registra desde pocos metros hasta más de 100 m de profundidad. En acuario trabaja bien entre 30 y 120 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR), con fotoperiodo de 8–10 horas. Por encima de 200 µmol·m⁻²·s⁻¹ aparece blanqueo en la zona expuesta, con bordes que conservan color: es la primera señal de exceso. Colócala en paredes verticales, bajo salientes o en zonas de sombra parcial; la aclimatación desde luz baja hacia media debe hacerse en 4–6 semanas subiendo un 10–15 % de intensidad semanal.

3. ¿Qué corriente y qué ubicación le doy?

Requiere flujo indirecto y moderado, del orden de 10–20 cm/s, suficiente para que ninguna partícula se deposite sobre las láminas. El detritus acumulado entre placas es la causa más frecuente de necrosis focal en esta especie. Evita el lecho de arena y las esquinas de baja renovación. Es un competidor débil: cualquier Montipora incrustante, Palythoa o alga filamentosa que la toque la cubrirá en semanas, así que deja 3–5 cm de margen libre alrededor del fragmento.

4. ¿Qué parámetros químicos son los adecuados?

Temperatura 24–26 °C; salinidad 35 g/L (1,026); pH 8,1–8,3; alcalinidad 7,5–8,5 dKH con fluctuación inferior a 0,5 dKH/día; calcio 420–450 mg/L; magnesio 1300–1350 mg/L; nitrato 2–5 mg/L y fosfato 0,03–0,06 mg/L. Su tejido es muy fino (menos de 2 mm) y responde a los desequilibrios antes que otros SPS: una subida brusca de alcalinidad produce desprendimiento laminar en 24–48 h. Mantén el relleno de osmosis con controlador y evita oscilaciones de salinidad superiores a 1 g/L.

5. ¿Hay que alimentarlo?

Es mixótrofo obligado: depende de sus zooxantelas, pero captura presas de 50–200 µm. Con iluminación adecuada sobrevive sin alimentación directa, aunque la adición 2–3 veces por semana de rotíferos, nauplios de Artemia o microparticulado (Oyster-Feast, Reef-Roids muy diluido) acelera el crecimiento marginal. Los pólipos extienden tentáculos de noche: dosifica con la bomba de circulación en modo suave y con el skimmer apagado 30–45 minutos. No abuses: el exceso de materia orgánica se acumula en las láminas y provoca necrosis.

6. Se ha puesto blanco en el centro: ¿qué hago?

La pérdida de tejido central suele ser abiótica: golpe de luz, fluctuación de KH, sedimento retenido o contacto con pegamento. Confirma que no hay caracoles del género Coralliophila ni planarias Waminoa sobre la superficie. Solución: extrae la colonia, recorta con sierra de diamante todo el margen blanco hasta tejido sano coloreado y pega el fragmento en una zona de 50–80 µmol·m⁻²·s⁻¹. La extensión marginal típica es de 1–3 mm al mes, por lo que un fragmento de 2 cm tarda 2–4 meses en cubrir un tapón; el crecimiento es laminar, no vertical.

📚 REFERENCIAS

• Wells, J.W. (1954). Recent corals of the Marshall Islands. U.S. Geological Survey Professional Paper 260-I: 385–486.
• Dinesen, Z.D. (1980). A revision of the coral genus Leptoseris (Scleractinia: Fungiina: Agariciidae). Memoirs of the Queensland Museum 20(1): 181–235.
• Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, Vol. 2. Australian Institute of Marine Science, Townsville.
• Kahng, S.E., Garcia-Sais, J.R., Spalding, H.L., Brokovich, E., Wagner, D., Weil, E., Hinderstein, L. & Toonen, R.J. (2010). Community ecology of mesophotic coral reef ecosystems. Coral Reefs 29: 255–275.
• Houlbrèque, F. & Ferrier-Pagès, C. (2009). Heterotrophy in tropical scleractinian corals. Biological Reviews 84(1): 1–17.
• Delbeek, J.C. & Sprung, J. (2005). The Reef Aquarium, Volume Three: Science, Art, and Technology. Two Little Fishies, Miami Gardens.

© 2026 Roberto Parra Jiménez – Biólogo Marino (UH Mānoa). Todos los derechos reservados.