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Merulina ampliata

Merulina ampliata
Autor: Roberto Parra Jiménez 🎓 Biólogo Marino – Universidad de Hawaii (UH Mānoa)
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia

📋 ÍNDICE DEL ARTÍCULO

  • 1. 🌏 INTRODUCCIÓN
  • 2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
  • 3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
  • 4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
  • 5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
  • 6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
  • 7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
  • 10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
  • 11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
  • 12. ✅ CONCLUSIÓN

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Merulina ampliata es, probablemente, el coral más mal identificado del comercio español: aparece como «Hydnophora», «Mycedium», «Echinopora» o simplemente «coral de placa» en las listas de mayoristas. Su esqueleto no se organiza en cálices individuales como en un Favites o un Caulastraea, sino en colinas sinuosas y continuas (collines) que delimitan valles cortos de 3–8 mm de anchura y 10–30 mm de longitud, con septos perforados y carinas agudas que se fusionan mediante sinaptículos. El resultado visual es un «cerebro venoso» de relieve acentuado, no las cúpulas cónicas del género Hydnophora ni los coralitos circulares y bien definidos de Mycedium.

La forma colonial es su segundo carácter diagnóstico: colonias flabeladas, en abanico o repisa, de 30–60 cm de diámetro, con bordes finos y ondulados y un punto de anclaje estrecho, aunque en condiciones de luz alta y flujo fuerte desarrolla morfologías incrustantes con engrosamientos nodulares. Las coloraciones habituales son crema, mostaza, verde oliva y lavanda, siempre con el margen de crecimiento pálido o blanquecino: ese borde claro es el mejor indicador de crecimiento activo en el acuario.

En acuariofilia ocupa un nicho particular. Es un coral relativamente rápido (2–5 mm de extensión radial al mes en condiciones óptimas), resistente y con capacidad de incrustar la roca viva, pero con dos exigencias no negociables: estabilidad química y espacio físico. Recesiones lineales a lo largo de las colinas, con esqueleto blanco expuesto, son la firma clásica de una oscilación de alcalinidad (variaciones superiores a 1,0 dKH en 24 h) o de una caída de salinidad por reposición mal hecha. Además, no se puede pegar con cianoacrilato: la base es frágil y las placas se fracturan al manipularlas; hay que apoyarlo sobre roca o encajarlo en una oquedad y dejarlo fijarse.

Es un coral de dificultad media, apto para acuaristas con el acuario maduro (6+ meses) y parámetros monitorizados. Los fragmentos procedentes de acuacultura (farming indonesio, maricultura australiana) son notablemente más fiables que las colonias silvestres, que sufren pérdidas del 30–50 % en las primeras cuatro semanas por daños de recolección, estrés térmico de transporte y necrosis rápida de tejido.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

Categoría Clasificación
Reino Animalia
Filo Cnidaria
Clase Anthozoa
Subclase Hexacorallia
Orden Scleractinia (Zoantharia)
Familia Merulinidae
Género Merulina Ehrenberg, 1834
Especie Merulina ampliata (Ellis & Solander, 1786)
Basónimo Madrepora ampliata Ellis & Solander, 1786
Sinónimos frecuentes Merulina vaughani, Merulina regularis (formas de placa de gran tamaño)
Especies congéneres en el hobby M. scabricula (más delicada, valles irregulares), M. triangularis, M. scheeri
Tipo de coral Duro (escleractinio) colonial, zooxantelado

La familia Merulinidae agrupa hoy, tras la reorganización molecular de Budd y colaboradores (2012) y Huang y colaboradores (2014), a la mayoría de los antiguos Faviidae: Favites, Platygyra, Goniastrea, Hydnophora, Caulastraea, Echinopora y Merulina. Esto explica por qué M. ampliata comparte con Hydnophora un coenosteum perforado y carinas agudas (el llamado patrón «hidnoforoide»), aunque Merulina carece de montículos cónicos y presenta valles meandroides continuos.

Caracteres esqueléticos diagnósticos: septos en dos ciclos, a menudo fusionados por sinaptículos, con dientes finos y regulares; columela trabecular poco desarrollada; muros perforados y carinas agudas en el borde superior de las colinas; coralitos no individualizados, sino series meandroides que en colonias pequeñas pueden confundirse con valles cortos de Favites. La confusión con Mycedium elephantotus se resuelve observando el borde: en Mycedium hay coralitos con centro y costas bien definidas; en Merulina, cresta continua.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Merulina ampliata presenta una distribución Indo-Pacífica amplia: mar Rojo (localidad tipo), golfo de Adén, océano Índico tropical desde Madagascar y Seychelles hasta las islas Andamán y el oeste de Australia, y en el Pacífico desde Indonesia, Filipinas, Palau, Papúa Nueva Guinea, Gran Barrera de Coral y Nueva Caledonia hasta Fiyi, las islas Ryukyu al norte y el archipiélago de Dampier al sur. Está ausente de Hawái y de gran parte de la Polinesia oriental.

Su rango batimétrico útil va de 0 a 30 m, con máxima abundancia entre 3 y 15 m. No es un coral de arrecife frontal batido puro: prospera en taludes arrecifales, lagunas de agua turbia, bordes de canales y paredes verticales; es frecuente encontrarlo bajo salientes y en grietas, donde la irradiancia cae un 50–80 % respecto a la superficie, así como incrustando coral muerto y cascajo. En ambientes someros y con oleaje fuerte aparece con morfología encrustante y engrosada, mientras que en profundidad baja a 15–25 m desarrolla las placas finas y amplias típicas del hobby.

En el medio natural soporta temperaturas de 24 a 30 °C, salinidad de 34–36, saturación de carbonato cálcico elevada y niveles de nutrientes moderados a altos para un coral pétreo (nitrato 1–8 mg/L en lagunas costeras). Esto tiene consecuencias directas en el acuario: tolera peor un sistema ultraoligotrófico (NO₃ < 1 mg/L, PO₄ < 0,02 mg/L) que un acuario con nutrientes mesurados, donde el tejido se mantiene denso y las colinas conservan color. La alimentación es opcional: obtiene la mayor parte de su energía de las zooxantelas y captura bacterias, fitoplancton y detritos; no necesita presas de gran tamaño, y los alimentos secos que se acumulan en los valles pudieron provocar picos de amonio localizados, por lo que el flujo medio debe mantener esos valles barridos sin golpear la placa de forma laminar directa.

Es una especie hermafrodita con desove sincronizado de gametos al agua y larva planctónica fototáctica; el asentamiento requiere sustrato consolidado y señales de algas coralinas incrustantes. En el arrecife compite por espacio con eficacia: segrega filamentos mesentéricos y llega a incrustar parcialmente a vecinos de crecimiento más lento. Ese mismo comportamiento es el que obliga, en acuario, a reservar un radio de 8–12 cm a sotavento de cada placa, sin Acropora, Montipora ni Seriatopora en contacto.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Merulina ampliata es una especie colonial de esqueleto pétreo y crecimiento laminar-encrustante, con colonias que pueden formar placas finas, onduladas o ligeramente masivas. Aunque se comercializa como LPS por su esqueleto meandroide y su tejido aparentemente carnoso, su histología es más delgada que la de un Euphyllia o un Lobophyllia: la capa de tejido sobre las crestas es fina y se daña con facilidad. Los coralitos son meandroidos, con valles sinuosos de 3-6 mm de anchura separados por crestas elevadas, a menudo dentadas y exertas. Los pólipos ocupan esos valles de forma continua, no como cabezas aisladas, y suelen mostrar tentáculos cortos y transparentes, más visibles con iluminación tenue y flujo suave al atardecer. En ejemplares bien aclimatados se aprecia una coloración marrón-verdosa, crema o rosa pálido, con centros de valle más claros y crestas a veces teñidas de verde o azul.

El esqueleto es poroso, ligero y frágil en los bordes de la lámina; las colonias grandes pueden romperse por manipulación o por corrientes demasiado directas. La superficie inferior de la placa suele quedar sombreada y es colonizada por algas calcáreas o por incrustaciones, pero no debe enterrarse en arena. Las zooxantelas, del grupo Symbiodiniaceae, se alojan en el tejido del pólipo y aportan una parte importante de la energía; su densidad responde a la luz y a los nutrientes, de modo que una iluminación excesiva con nitratos y fosfatos muy bajos puede provocar blanqueamiento localizado, sobre todo en las crestas expuestas. La especie no tiene una respuesta de expansión tan agresiva como otros LPS: sus pólipos rara vez forman tentáculos largos y no conviene tratarla como coral de alimentación intensiva. La inspección de los valles es clave: valles abiertos y continuos, sin necrosis en las crestas, indican buena salud; crestas blancas y tejido retraído sugieren irritación por sedimento, flujo directo o fluctuaciones de alcalinidad.

  • Pólipos: pequeños, continuos en los valles, con tentáculos cortos; expansión máxima nocturna.
  • Esqueleto: meandroide, laminar y frágil; crestas finas y valles de 3-6 mm.
  • Zooxantelas: simbiontes intracelulares; sensibles a cambios bruscos de luz y nutrientes.
  • Color: marrón-verdoso, crema o rosa pálido; no siempre intensamente fluorescente.
Merulina ampliata
Merulina ampliata · Foto: (c) Ryan McMinds, some rights reserved (CC BY) (CC-BY)

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

M. ampliata tolera bien acuarios maduros, pero es menos permisiva con picos de alcalinidad y con sedimentación sobre la lámina. Los valores deben mantenerse estables; más que buscar un número perfecto, conviene evitar oscilaciones diarias de KH superiores a 0,5 dKH y cambios de salinidad por reposición mal calibrada.

Parámetro Rango objetivo Nota específica para Merulina ampliata
Temperatura 24-26 °C Evitar picos por encima de 27 °C; la lámina fina sufre con calor prolongado.
Salinidad 34-35 g/L (1.025-1.026 a 25 °C) Medir con refractómetro calibrado; evitar descensos bruscos por reposición.
pH 8,1-8,4 Estable; un pH bajo prolongado afecta a la calcificación y al tejido de las crestas.
KH 7-9 dKH No bajar de 6,5 dKH; oscilaciones mayores de 0,5 dKH/día irritan los valles.
Calcio 420-450 mg/L Mantener con dosificación estable; el esqueleto laminar consume calcio de forma continua.
Magnesio 1280-1350 mg/L Por debajo de 1250 mg/L se dificulta mantener calcio y KH estables.
Nitratos (NO3) 2-5 mg/L Niveles detectables ayudan a conservar color; evitar 0 absoluto y picos >10 mg/L.
Fosfatos (PO4) 0,03-0,08 mg/L Por encima de 0,1 mg/L aumenta la sedimentación y el riesgo de algas sobre crestas.
Luz 100-150 PAR Moderada; fotoperíodo de 8-10 h. Aclimatar 4-6 semanas si viene de luz baja.
Flujo Moderado e indirecto; 10-15 renovaciones/hora Aleatorio y difuso; evitar chorro directo sobre la placa y zonas de sedimento muerto.

La iluminación ideal es la de zona media, con sombra parcial en las horas centrales si el acuario usa LED de alta potencia. Un exceso de PAR sobre una lámina inclinada puede blanquear las crestas superiores mientras los valles permanecen oscuros. El flujo debe renovar el agua alrededor de la colonia sin golpear el tejido: un chorro directo continuo retrae los pólipos y favorece la acumulación de detritus en los valles. En acuarios con arena fina, dirigir una corriente suave a 10-15 cm del coral ayuda a mantener limpia la lámina sin enterrarla.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocar Merulina ampliata sobre roca firme, en la mitad media-baja del acuario, con la lámina inclinada entre 20° y 30° para que el sedimento resbale. Evitar sustrato blando, zonas de baja corriente y cuevas donde se acumule detritus. Dejar al menos 15-20 cm alrededor porque la placa se extiende de forma horizontal y puede sombrear corales vecinos; no es una especie de crecimiento rápido, pero ocupa superficie de roca de forma progresiva. No debe quedar bajo rebosaderos que goteen ni en contacto con macroalgas filamentosas, que colonizan con facilidad las crestas muertas. La fijación con cemento de arrecife o epoxi debe hacerse sobre una base rígida, sin enterrar los bordes vivos.

El crecimiento es lento-moderado: en acuarios estables, el borde laminar avanza aproximadamente 1-2 cm al año, y puede acelerar algo con calcio, KH y magnesio estables, luz moderada y nitratos detectables. La forma típica es una placa ondulada que se engrosa en el centro y se adelgaza en el margen; los fragmentos pequeños tardan meses en formar una colonia reconocible. La reproducción sexual no es habitual en acuario; la propagación práctica es por fragmentación.

  • Herramienta: sierra de diamante o alicates de corte limpios; evitar arrancar la colonia de la roca base.
  • Corte: fragmentos de 3-5 cm con varias crestas y valles completos; cortar el coenosarc de forma limpia, sin aplastar el esqueleto poroso.
  • Post-fragging: fijar a escombros de roca con cemento, mantener en zona de flujo suave y luz moderada 2-3 semanas; cicatrización visible en 3-4 semanas.
  • Riesgo: las crestas expuestas son propensas a infección por manipulación; evitar baños agresivos y revisar que no queden restos de tejido necrótico entre los valles.

No conviene fragmentar una colonia recién importada ni una que muestre retracción persistente: primero debe estabilizarse y mostrar expansión nocturna y bordes con tejido adherido. En tanques con peces que picotean roca, la placa puede servir de refugio de microfauna, pero también acumular sedimento; una jeringa o pera de agua dirigida a los valles cada semana, sin tocar el tejido, reduce el riesgo de necrosis localizada.

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Merulina ampliata es un coral de agresividad baja-media con una particularidad que condiciona toda la compatibilidad: su colonia es laminar y se expande horizontalmente, así que no compite «hacia arriba» sino trepando por el sustrato. Necesita una franja libre de 10-12 cm alrededor, no por tentáculos barredores (no los desarrolla de forma habitual, a diferencia de Galaxea o Euphyllia), sino porque acabará incrustándose sobre zoantídeos, Discosoma o Briareum y digiriéndolos por contacto. Extruye filamentos mesentéricos con facilidad y gana a la mayoría de blandos, pero pierde siempre frente a Hydnophora, Galaxea, Lobophyllia y Acanthastrea.

Peces sin riesgo real: gobios (Gobiodon, Elacatinus), blénidos (Salarias, Ecsenius), lábridos pequeños (Cirrhilabrus, Halichoeres), anthias, cardenales (Pterapogon), Siganus vulpinus y S. unimaculatus (ignoran el tejido y solo pastan algas del esquele

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

Merulina ampliata se vende como «coral coliflor» o «coral de crestas», pero no es un blando ni un LPS de los fáciles: es un merulínido de lámina fina que perdona poco el desorden. Estos doce puntos marcan la diferencia entre una colonia que se expande con borde blanco de crecimiento y una que se apaga desde la base en seis meses.

  1. Montaje sobre pedestal, nunca sobre arena. La lámina basal requiere agua bajo ella. Si la apoyas plana sobre el sustrato o encajada entre rocas, el envés se sombrea, se llena de detritus y la recesión empieza por ahí sin aviso visible desde arriba. Pega solo el punto de unión, deja el resto en voladizo.
  2. Flujo aleatorio de 15-20× el volumen/hora, jamás un chorro directo. El patrón de valles y crestas es un colector de sedimento por diseño. Un chorro laminar de bomba erosiona el tejido de las crestas en dos semanas; dos bombas cruzadas con giro alterno lo mantienen limpio.
  3. Soplado semanal con pera de goma o jeringa. Pasa la punta a 1 cm de la superficie y recorre los valles en el mismo sentido. Es la única rutina que evita la colmatación y, con ella, las algas filamentosas entre las crestas.
  4. PAR de 200-350 µmol·m⁻²·s⁻¹, con rampa de aclimatación del 50 %. A más de 450-500 PAR las crestas se decoloran a blanco mientras los valles conservan el color: eso es sobreiluminación, no blanqueo total. Sube un 10 % semanal desde el punto de compra.
  5. Alcalinidad estable por encima de todo. dKH 7,5-8,5 con oscilación máxima de 0,3-0,5 por día. Es un coral de calcificación rápida en las crestas y muy sensible a los cambios bruscos: una caída a 6 dKH provoca recesión marginal en 48-72 horas.
  6. Lee el borde de crecimiento. Margen libre con nuevo esqueleto blanco y tejido translúcido = colonia sana. Margen con alga incrustante, burbujas o hueso desnudo = baja el flujo o reduce la luz antes de que avance.
  7. Ca 420-450 ppm y Mg 1300-1350 ppm. Con magnesio por debajo de 1250 las crestas se deforman y el patrón meandroide se aplana. No dosifiques yodo ni oligoelementos a ciegas: solo con ICP previo.
  8. Distancia de seguridad de 10-15 cm. Extiende filamentos mesentéricos y ataca sin previo aviso. Mantenla lejos de Euphyllia, Galaxea, Acanthastrea y de cualquier zoantídeo que crezca rápido hacia ella.
  9. No la alimentes por rutina. Sus cálices miden 1,5-2,5 mm y captura mal. El microplancton nocturno una vez por semana es el techo razonable; el exceso sube PO₄ y se traduce en algas en los valles, su punto débil.
  10. Fragmenta en horizontal y con cianoacrilato en gel, no con epoxy. Un bloque de masilla sobre el corte asfixia el tejido. Corta con disco de diamante, seca el punto de unión, pega la placa paralela al suelo y mantenla 7-10 días en zona de luz media y flujo suave.
  11. Compra colonias con margen continuo. Rechaza ejemplares con bandas blancas (necrosis), puntos rojos de cianobacteria o caracoles piramidélidos en el envés. Revisa también el reverso de la lámina en busca de planarias y de cangrejos comensales: estos últimos son inofensivos y conviene conservarlos.
  12. No la metas en acuarios nuevos. Exige tanque maduro (6-9 meses), NO₃ 2-10 ppm y PO₄ 0,03-0,08 mg/L. Por encima de 20 ppm de nitrato tolera mal la competencia con algas y pierde color de forma irreversible.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

Calendario pensado para un acuario de arrecife mixto con temperatura controlada; ajústalo a tu régimen de aditivos, pero respeta la estacionalidad de las revisiones.

Estación Iluminación y fotoperiodo Flujo y limpieza Parámetros y aditivos Revisiones específicas
Primavera (mar-abr-may) Rampa de subida hasta 10-12 h; recalibrar la altura de las lámparas si has cambiado la óptica. Soplado de valles 2×/semana; revisar que ninguna bomba apunte directo a la lámina tras la limpieza de roca. ICP-OES completo; ajustar Mg a 1300-1350 y Ca a 420-450; verificar dKH diario durante una semana. Fotografiar el borde de crecimiento para comparar en otoño; comprobar simetría del patrón de crestas.
Verano (jun-jul-ago) 11 h máximo; si la temperatura sube, reducir 1 h antes que subir la refrigeración de golpe. Vigilar temperatura: nunca por encima de 26,5 °C; ventilador o enfriador, no bajadas bruscas de más de 1 °C/día. Mayor evaporación: control de salinidad a 35 g/L (1,025-1,026); rellenar con agua de ósmosis automática. Inspección semanal del envés de la lámina (punto ciego de recesión); sifonar detritus acumulado bajo el voladizo.
Otoño (sep-oct-nov) Vuelta a 10 h; limpiar protectores y difusores, que restan PAR de forma acumulativa. Cepillado suave de los bordes con pincel de cerdas blandas si aparecen filamentosas; reforzar el giro aleatorio. Test de Ca y dKH 2×/semana; carbón activo 3-4 días al mes para retirar alelopatía disuelta. Temporada de adquisiciones: cuarentena de 3-4 semanas con baño de yodo antes de montar el fragmento.
Invierno (dic-ene-feb) 8-10 h; evitar fotoperiodos largos con calefacción doméstica y ventanas cerradas (exceso de CO₂, pH bajo). Revisar que el flujo no haya disminuido por incrustaciones en las bombas: limpiar rodetes cada 6-8 semanas. Consumo de alcalinidad más irregular: medir dKH 2×/semana y ajustar el dosificador sin cambios mayores del 10 %. No trasladar ni fragmentar: dejar la colonia estable; revisar ausencia de burbujas en los valles (dinoflagelados).

12. ✅ CONCLUSIÓN

Merulina ampliata no es un coral para principiantes, pero tampoco merece la fama de delicado que arrastra: la mayoría de los fracasos no vienen de parámetros químicos exóticos, sino de tres errores de montaje. Primero, apoyar la lámina sobre el sustrato y condenar el envés a la oscuridad. Segundo, colocar la colonia frente a una bomba que desgarra el tejido de las crestas. Tercero, ignorar los valles como trampas de detritus durante meses. Corrige esos tres puntos y tendrás un coral de crecimiento lento pero constante, con un patrón meandroide inconfundible y un borde blanco de calcificación que funciona como termómetro de la estabilidad del sistema.

Su gran valor en acuariofilia es el diagnóstico: es un indicador honesto. Recesión marginal = alcalinidad inestable o flujo insuficiente; crestas decoloradas = exceso de luz; valles con alga = materia orgánica acumulada; pérdida de relieve en las crestas = magnesio bajo. Aprende a leerlo y te ahorrará problemas en el resto del arrecife. Reserva para él una repisa estable, con luz alta pero difusa, corriente cruzada, 10-15 cm de margen frente a otros corales y un tanque con al menos seis meses de madurez. A cambio, te dará una de las morfologías más reconocibles del arrecife y una longevidad excelente en cautividad si respetas la regla de oro: estabilidad antes que optimización.

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

Merulina ampliata no se comporta como un escleractinio «promedio»: su lámina foliácea de apenas 2-4 mm de espesor tiene una relación superficie/volumen altísima, y eso hace que su calcificación responda al estado de saturación de aragonito casi en tiempo real. Mantén Ca 420-440 mg/L, KH 7,5-8,5 dKH, Mg 1300-1350 mg/L y densidad 1,025-1,026. Con Mg por debajo de 1250 mg/L el primer síntoma no es un blanqueamiento, sino la recesión de los bordes laminares, que se afinan y dejan visible la trama septal desnuda. Acepta nutrientes moderados (NO3 5-10 mg/L, PO4 0,03-0,08 mg/L) porque procede de lagunas turbias y sombreadas, pero no tolera la oscilación de KH que suele acompañarlos: una caída de 1,5 dKH en 24 h provoca el despegue del cenosarco desde el margen hacia el centro, un «skirt lifting» que ya no se revierte. Estabiliza por dosificador peristáltico, nunca por adición manual.

A pesar de su aspecto robusto, es un competidor químico mediocre. Carece de tentáculos barredores y su único recurso ofensivo es la extrusión de filamentos mesentéricos desde los valles meandroides, con un alcance real de 10-20 mm: puede digerir tejido de Euphyllia o Favia en contacto directo, pero pierde siempre en la competencia por compuestos disueltos frente a Sinularia, Sarcophyton o Palythoa, que la inhiben a distancia sin tocarla. El síntoma típico es una placa que deja de expandirse por el lado expuesto al rebosadero de una colonia blanda, con el margen engrosado. Deja 5-8 cm respecto a LPS agresivos (Galaxea, Hydnophora, Catalaphyllia), 10 cm respecto a zoantídeos, colócala aguas abajo de ellos y mantén carbón activo en rotación. Vigila también las zonas de sombra bajo la propia placa: allí prosperan cianobacterias que necrosan el cenosarco por anoxia, no por alelopatía.

Su fotobiología está adaptada a ambientes mesofóticos y turbios: la colonia crece horizontal, con toda la superficie superior expuesta, de modo que un incremento lumínico del 20-25 % en menos de una semana no produce blanqueamiento apical como en Acropora, sino un viraje a crema pálido y la retracción de los pólipos en el fondo de los valles, acompañada de sábana de moco. La recuperación lleva 3-5 semanas; sube la intensidad en escalones del 10 % cada 10-14 días. En flujo, sus valles meandroides son auténticas trampas de sedimento: con corriente laminar se forma una cresta de detrito en el margen de crecimiento y el tejido se retrae por detrás. Necesita régimen turbulento y oscilante, 10-20 cm/s, con inversión de dirección cada 6-12 h. Por encima de ~25 cm/s las láminas grandes flexan y se fisuran en la unión con la base: no es un coral para bombas frontales de 20.000 L/h.

Dos patologías rara vez descritas afectan específicamente a esta especie. La primera es la perforación por cirrípedos pirgomátidos y por el cangrejo galícola Cryptochirus coralliodytes: orificios oscuros de 2-4 mm en la lámina, con tejido retraído alrededor y sin regeneración posible, que debilitan la placa y suelen preceder a fracturas. No existe tratamiento; solo estabilizar la pieza y evitar manipularla. La segunda es la necrosis en línea de fractura tras el frag: si cortas transversalmente las crestas meandroides, el cenosarco se retrae 5-10 mm y se necrosa en 48 h. Corta en paralelo a las crestas con sierra de banda de diamante, sella el corte con resina y aplica baño de yodo a 10 mg/L durante 8-10 min. Si detectas Hermodice carunculata en la base, retírala de inmediato: devora el cenosarco basal antes de que aprecies la lesión.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

1. ¿Cómo distingo Merulina ampliata de otras plaquetas parecidas?

Merulina ampliata (Ellis & Solander, 1786) es la especie tipo del género y presenta un esqueleto meandroide inconfundible: series de cálices fusionados que forman valles sinuosos de 4–8 mm de anchura separados por crestas continuas, sin muros individuales visibles y con dentición septal fina. La colonia adulta es laminar, a veces con varias placas superpuestas y un margen ondulado de color pálido. Se confunde a menudo con Merulina scabricula (valles más estrechos, 2–4 mm, y dentición mucho más marcada), con Mycedium elephantotus (cálices individuales con muros en embudo, no meandroidos) y con Echinophyllia/Oxypora, cuyos cálices están claramente separados. Coloración típica: crema, verde o marrón con bordes claros y puntas púrpura.

2. ¿Qué parámetros exactos necesita?

Temperatura 24–27 °C (evitando picos por encima de 28 °C), salinidad 35 PSU (1.025–1.026), dureza carbonatada 7–8,5 dKH, calcio 420–450 mg/L, magnesio 1300–1350 mg/L, nitrato 2–10 mg/L y fosfato 0,03–0,08 mg/L. Tolera nutrientes moderados, pero es especialmente sensible a las oscilaciones de alcalinidad: variaciones superiores a 1 dKH en 24 horas provocan recesión del margen laminar. En sistemas con nutrientes indetectables durante semanas pierde intensidad de color y adelgaza el tejido de la placa. Mantén el yodo en niveles detectables (0,03–0,06 mg/L) si observas palidecimiento.

3. ¿Qué iluminación y corriente requiere?

Iluminación moderada, en el rango de 80–200 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR), con espectro completo; la exposición directa a lámparas de 400+ µmol·m⁻²·s⁻¹ blanquea las zonas altas de la placa. Colócala a media altura, sobre roca firme y con 10–15 cm libres alrededor para que la lámina se expanda sin tocar cristales ni roca. La corriente debe ser moderada, indirecta y alterna (10–15 cm/s): los chorros directos de bomba desgarran el tejido de las láminas finas y, en el extremo opuesto, una corriente insuficiente acumula sedimento en los valles y desencadena necrosis local.

4. ¿Cómo se alimenta en acuario?

Sus pólipos son pequeños (1–2 mm de diámetro extendido) y capturan partículas de 0,2–2 mm: rotíferos, nauplios de Artemia, copépodos vivos, microfauna del refugio y alimento en polvo de granulometría fina. Alimenta de noche, cuando extiende los tentáculos, con bomba de circulación reducida y dosis pequeñas repartidas. La mayor parte del aporte energético proviene de sus zooxantelas, pero la captura de presas acelera el crecimiento del margen. No acepta trozos de gamba o pescado: se descomponen en los valles, donde es casi imposible retirarlos, y provocan necrosis focal.

5. ¿Se puede fragmentar y a qué ritmo crece?

Sí, es una de las especies laminares más fáciles de propagar. Corta la placa con tenaza de hueso dejando al menos 1 cm de margen con tejido vivo alrededor del corte, realiza un baño de yodo (10–20 gotas de lugol por litro, 10 minutos) y fija el fragmento a una base de roca con masilla epoxi o cianoacrilato. La cicatrización tarda 2–3 semanas y el nuevo margen se extiende del orden de 1–2 cm anuales en condiciones óptimas. Al ser una especie CITES apéndice II, trabaja siempre con fragmentos de cultivo y documenta su procedencia.

6. ¿Qué problemas de salud y compatibilidad presenta?

Los fallos más habituales son la recesión del borde inferior por sombreado y acumulación de detrito, la infección por ciliados («banda marrón») tras una herida, la presencia de platelmintos del género Waminoa sobre la superficie, esponjas perforantes y algas sobre esqueleto expuesto. Respeta 8–10 cm de separación con otros corales, porque compite por espacio por contacto y puede dañar tejido vecino. Revisa la pieza tras cada cambio de posición: los cangrejos ermitaños y caracoles grandes la vuelcan y rompen las láminas finas con facilidad.

📚 REFERENCIAS

  • Ellis, J. y Solander, D. (1786). The Natural History of Many Curious and Uncommon Zoophytes. Benjamin White & Son, Londres (descripción original como Madrepora ampliata).
  • Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, vol. 2. Australian Institute of Marine Science, Townsville.
  • Huang, D., Licuanan, W.Y., Baird, A.H. y Fukami, H. (2014). Taxonomic classification of the reef coral families Merulinidae, Montastraeidae and Diploastraeidae (Cnidaria: Anthozoa: Scleractinia). Zoological Journal of the Linnean Society, 171(2): 277–355.
  • Carpenter, K.E., Abrar, M., Aeby, G. et al. (2008). One-third of reef-building corals face elevated extinction risk from climate change and local impacts. Science, 321(5888): 560–563.
  • Borneman, E.H. (2001). Aquarium Corals: Selection, Husbandry
Roberto Parra Jiménez 🎓 Biólogo Marino – Universidad de Hawaii (UH Mānoa)
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia

© 2026 Roberto Parra Jiménez – Biólogo Marino (UH Mānoa). Todos los derechos reservados.

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