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Pavona decussata

Pavona decussata
Autor: Roberto Parra Jiménez 🎓 Biólogo Marino – Universidad de Hawaii (UH Mānoa)
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia

📋 ÍNDICE DEL ARTÍCULO

  • 1. 🌏 INTRODUCCIÓN
  • 2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
  • 3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
  • 4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
  • 5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
  • 6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
  • 7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
  • 8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES
  • 9. 🌍 CONSERVACIÓN Y SOSTENIBILIDAD
  • 10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
  • 11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
  • 12. ✅ CONCLUSIÓN

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Pavona decussata es un SPS laminar y bifacial de la familia Agariciidae, conocido en el hobby como «coral lechuga» u «hoja de pavona». Su seña de identidad es la disposición decusada de los cálices: las coralitas, de apenas 1,5-2 mm de diámetro y muy poco profundas, se alinean en hileras que se cruzan en ángulo, generando un reticulado fino y regular visible incluso a simple vista sobre la cara de la lámina. Las colonias adultas forman frondes de 2-5 mm de grosor que se elevan desde una base incrustante, con márgenes pálidos, casi translúcidos, que en iluminación alta viran a verde oliva o azul pálido; el centro suele mantenerse marrón-crema.

En acuariofilia ocupa un nicho muy concreto: es probablemente el SPS laminar más tolerante a parámetros «imperfectos». Donde Acropora o Montipora se necrosan, P. decussata mantiene crecimiento con nitratos de 10-25 mg/L, fosfatos de 0,08-0,15 mg/L, alcalinidad oscilante entre 7 y 9 dKH y temperatura de 24-28 °C. Esa rusticidad se explica por su origen: en la naturaleza coloniza hábitats marginales, sombreados y con sedimentación, no las crestas barreras barridas por oleaje fuerte. No es, sin embargo, un coral de arrecife blando: sigue exigiendo calcio estable (410-450 mg/L), magnesio (1.250-1.350 mg/L) y salinidad de 35 g/L.

Dos advertencias prácticas. Primero, se confunde con frecuencia con Pavona cactus, de frondes más gruesas, columnares y con coralitas profundas, y con Pavona praetorta; si el ejemplar no muestra el reticulado decusado nítido y las láminas finas, probablemente no sea decussata. Segundo, su crecimiento es rápido (una placa de 15-20 cm en 12-18 meses en condiciones óptimas) y no compite por nematocistos potentes sino por sombreado mecánico: acaba tapando a cualquier coral situado por debajo, por lo que requiere poda periódica de las frondes inferiores.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

Categoría Clasificación
Dominio Eukaryota
Reino Animalia
Filo Cnidaria
Clase Anthozoa
Subclase Hexacorallia
Orden Scleractinia
Suborden Agariciina
Familia Agariciidae
Género Pavona (Lamarck, 1801)
Especie Pavona decussata (Dana, 1846)
Sinónimos relevantes Pavona decussata var. sellowi; registros históricos bajo P. praetorta
Simbiontes Symbiodinium (predominio del clado C, con D en poblaciones someras)

La especie fue descrita por James Dwight Dana en 1846 en los Zoophytes de la United States Exploring Expedition, a partir de material del Pacífico. El epíteto decussata alude al patrón en aspa (decussis, «diez» en cruz romana) que forman las series de coralitas. El género Pavona agrupa escleractinios coloniales con esqueleto poroso, septos dispuestos en dos ciclos (el secundario reducido), columela trabecular poco desarrollada y coralitas frecuentemente compuestas —con varios centros unidos—, un rasgo visible en las zonas de crecimiento activo de P. decussata.

La familia Agariciidae se sitúa en el suborden Agariciina, separado de los Fungiina clásicos por datos moleculares; sus géneros (Pavona, Agaricia, Leptoseris, Coeloseris, Gardineroseris) comparten la tendencia a morfologías laminares o foliáceas y una fuerte dependencia de la fotosíntesis de sus zooxantelas. En P. decussata la superficie inferior de la lámina también porta coralitas —condición bifacial—, lo que duplica la superficie fotosintética útil y explica su capacidad de crecer en orientaciones casi verticales con luz lateral escasa.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Su distribución abarca el Indo-Pacífico tropical: desde el mar Rojo y la costa oriental de África (Kenia, Tanzania, Mozambique, Madagascar) hasta la Polinesia Francesa, pasando por Indonesia, Filipinas, Papúa Nueva Guinea, el mar de Coral, la Gran Barrera de Coral, Micronesia y el sur de Japón (Ryukyu). Los registros hawaianos se reasignan hoy a Pavona varians y P. duerdeni, de modo que su presencia en Hawái es dudosa.

Vive entre 0 y 30 m, con máxima abundancia entre 1 y 15 m. Ocupa preferentemente planicies arrecifales, lagunas interiores, cabezas de arrecife y el tercio superior de la pendiente, y es especialmente característica en ambientes con turbidez, escorrentía continental y sedimentación fina: praderas mixtas con rubble, bordes de manglar y zonas portuarias. Tolera temperaturas de 22-30 °C y variaciones de salinidad por aporte dulce, y soporta emersión parcial en bajamares extremas en las planicies someras, donde las colonias adoptan morfología incrustante y más compacta.

Su óptimo hidrodinámico es moderado: prospera donde el movimiento del agua renueva la capa límite pero no fractura las frondes. En crestas de oleaje fuerte cede el espacio a Acropora y a hidrocorales; en zonas de calma extrema y sombra profunda la superan Leptoseris y Mycedium. Forma a menudo poblaciones casi monoespecíficas de varias decenas de metros cuadrados, y actúa como constructor secundario de marco arrecifal en hábitats marginales, además de refugio para juveniles de peces y crustáceos.

Trasladado al acuario, ese perfil se traduce en una ubicación muy concreta: tercio medio del tanque, con iluminación de 120-250 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR), flujo de 10-20 veces el volumen del acuario por hora con movimiento alterno y sin chorros directos sobre el borde de la lámina, y una posición donde la corriente arrastre el sedimento fuera de la superficie bifacial; el polvo asentado sobre la cara superior es su principal causa de necrosis localizada en cautividad. Al ser hermafrodita y liberador de gametos en la columna de agua, no se reproduce sexualmente en el acuario doméstico; toda la propagación es por fragmentación de frondes, que se fijan con rapidez sobre roca viva rugosa.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Pavona decussata es un coral pétreo colonial de la familia Agariciidae, conocido como coral cactus o coral lámina. Su morfología es inequívoca: forma colonias compuestas por láminas verticales anastomosadas que se entrecruzan en ángulo, de ahí el epíteto decussata. Estas láminas pueden soldarse entre sí, creando estructuras foliáceas de bordes afilados y superficies con crestas y valles irregulares. En ejemplares jóvenes predomina una fase incrustante que después se eleva en placas; en colonias grandes, el conjunto puede superar los 30-40 cm de diámetro, aunque lo habitual en acuario es mantener ejemplares de 10-20 cm. El esqueleto es de aragonito poroso, relativamente ligero y frágil: las láminas se quiebran con facilidad al manipularlas, especialmente en los bordes de crecimiento.

Los coralitos son pequeños, inmersos, de aproximadamente 1-1,5 mm de diámetro, distribuidos de forma irregular sobre ambas caras de las láminas. Presentan septos exertos y una columela trabecular poco profunda; a simple vista la superficie parece punteada, no con cálices prominentes como en Acropora o Montipora. Los pólipos son diminutos, con tentáculos cortos, y su expansión es principalmente nocturna; durante el día el tejido suele quedar retraído, lo que da a la colonia un aspecto más liso. La coloración típica va del verde oliva al marrón claro, crema o beige, con márgenes de crecimiento pálidos; en ejemplares sometidos a luz intensa pueden aparecer tonos verdosos más vivos, mientras que en sombra domina el marrón. Las zooxantelas simbióticas (Symbiodiniaceae) son las responsables de esta pigmentación y de la mayor parte de su nutrición; por ello, la colonia se aclara de forma alarmante cuando pierde simbiontes por estrés térmico o lumínico.

Pavona decussata
Pavona decussata · Foto: (c) Debra Baker, some rights reserved (CC BY) (CC-BY)

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Pavona decussata no es un SPS de aguas ultraoligotróficas: en la naturaleza habita lagunas, laderas protegidas y zonas con cierta turbidez, donde tolera nutrientes moderados. En acuario se comporta como un coral robusto, pero conviene evitar extremos. La tabla siguiente recoge valores probados para mantenimiento estable; los rangos amplios indican tolerancia, no objetivos.

Parámetro Valor objetivo Observaciones específicas
Temperatura 24-27 °C (rango 23-28 °C) Evitar oscilaciones superiores a 1,5 °C/día; por encima de 29 °C aumenta el riesgo de blanqueo.
Salinidad 34-35 ppt (densidad 1.025-1.026) Medir con refractómetro calibrado; tolera peor los cambios bruscos que un valor ligeramente alto.
pH 8,1-8,4 Estabilizar con buena aireación; evitar descensos nocturnos por debajo de 7,9.
KH (alcalinidad) 7-9 dKH Mantener estable; cambios de más de 1 dKH al día estresan el tejido laminar.
Calcio 400-450 mg/L Consumo moderado; reponer con balling o reactor según crecimiento.
Magnesio 1250-1350 mg/L Por debajo de 1200 mg/L se dificulta la estabilidad del KH y el depósito de carbonato.
Nitratos (NO3) 5-15 mg/L Tolera nutrientes moderados; valores persistentes por encima de 25 mg/L favorecen algas sobre las láminas.
Fosfatos (PO4) 0,03-0,10 mg/L No requiere niveles indetectables; evitar superar 0,15 mg/L para no frenar la calcificación.
Luz 150-250 PAR (moderada a alta) Aclimatar 2-3 semanas en zona sombreada; fotoperiodo de 8-10 h. La luz muy intensa directa puede blanquear los bordes.
Flujo Moderado-fuerte, turbulento 15-25 veces el volumen del acuario por hora, indirecto y caótico; evitar chorros directos que desgarren las láminas.

La iluminación debe ser suficientemente intensa para mantener el verde oliva, pero P. decussata procede a menudo de ambientes no excesivamente luminosos. En acuarios de SPS con 300-400 PAR en la parte superior, colóquela en la zona media o baja; si se sube demasiado rápido, aparecen zonas pálidas en los bordes de las láminas. El flujo ideal es cruzado y variable, no laminar: las láminas ofrecen mucha superficie y retienen detritos, por lo que una corriente suave pero constante entre ellas evita acumulaciones de sedimento y favorece la extensión de pólipos. No necesita corrientes de alta energía como Acropora digitífera, pero un flujo demasiado débil provoca zonas marrones y acumulación de materia orgánica en las uniones laminares.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Coloque Pavona decussata sobre roca viva, en la zona media o media-baja del acuario, dejando un margen de 10-15 cm alrededor. Su crecimiento laminar proyecta sombra y puede invadir corales vecinos, especialmente zoantídeos y montíporas de crecimiento rápido. No la sitúe sobre arena ni en rincones con detritos: la base necesita roca firme y agua renovada. Fíjela con epoxy de dos componentes o cianoacrilato en gel, aplicando la masilla solo en la base esquelética y sin cubrir tejido vivo. Si recibe luz muy fuerte, realice una aclimatación lumínica progresiva de dos a tres semanas; de lo contrario, los bordes blanquean y tardan meses en recuperar color.

El crecimiento es relativamente rápido para un SPS: en condiciones estables produce nuevas láminas y ensancha los bordes de crecimiento de forma visible, pudiendo duplicar su diámetro en 6-12 meses. La forma foliácea hace que la colonia gane volumen y sombree la roca inferior; conviene podar las láminas que toquen cristales, bombas o corales vecinos. El fraging es sencillo: corte fragmentos de 3-5 cm con alicate de hueso o sierra de joyero, eligiendo zonas con tejido sano y evitando el borde de crecimiento más fino. Mantenga los fragmentos en agua del acuario durante el corte, monte verticalmente sobre roca o tapón con cianoacrilato, y déjelos 2-4 semanas en zona de luz moderada y flujo suave. Un baño de yodo diluido de 5-10 minutos tras el corte reduce el riesgo de infección; la cicatrización completa suele verse en un mes. Use guantes y gafas: las láminas son frágiles y los bordes cortantes, y el esqueleto desprendido puede dañar bombas y skimmers.

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Pavona decussata no es un SPS pasivo. Carece de los tentáculos barredores largos y espectaculares de Euphyllia o Galaxea, pero compensa con dos mecanismos muy eficaces: digestión extracorpórea mediante filamentos mesentéricos extrudidos por el borde de las láminas y crecimiento por sobrecrecimiento físico. En el acuario esto se traduce en líneas de necrosis blanquecina en colonias vecinas de Montipora, Seriatopora o Stylophora que estén a menos de 4-6 cm del margen de la placa, y en que la Pavona acaba tapando la base de corales más lentos. Deja siempre un margen de 8-10 cm respecto a otros SPS y varios centímetros respecto a LPS de tejido blando, porque también libera metabolitos alelopáticos que afectan a Sarcophyton y Sinularia en volúmenes pequeños.

Peces compatibles sin reservas: Amphiprion, Chromis, Pseudanthias, Cirrhilabrus, Paracheilinus, gobios (Gobiodon, Elacatinus), blénidos, Synchiropus y cirujanos de dientes de cepillo (Ctenochaetus), que pastan film algal sobre la superficie de la placa sin dañar el cenosarco. Los cirujanos grandes de género Zebrasoma y Acanthurus son útiles contra las algas, pero un Acanthurus de más de 15 cm puede abrasar los bordes finos al maniobrar en cuevas estrechas.

Riesgo real: ningún pez es depredador obligado de P. decussata (a diferencia de Chaetodon trifascialis con Acropora), de modo que el peligro proviene de generalistas. Chaetodon auriga, C. vagabundus y C. collare picotean el moco y los pólipos; Zanclus cornutus y los pomacántidos grandes (Pomacanthus imperator, Holacanthus) arrancan tejido de las placas horizontales; los tetraodóntidos (Arothron, Canthigaster) trituran el borde calcáreo, y Cantherhines o Amanses dejan marcas de raspado inconfundibles. Los lábridos y pseudocromís no suponen amenaza.

Invertebrados: seguros Lysmata, Stenopus, Alpheus, cangrejos ermitaños pequeños, caracoles Trochus, Cerithium y Nassarius, pepinos de mar y ofiuros. Evita Diadema y erizos grandes en acuarios pequeños (desplazan y erosionan la base), y por supuesto Acanthaster planci, Drupella cornus y el gasterópodo Coralliophila violacea, capaces de vaciar una colonia mediana en semanas. La Pavona alberga fauna comensal beneficiosa entre sus láminas —ofiuros, cangrejos majidos, gambas críptidas y pequeños góbidos— que contribuye a la limpieza del espacio interlamelar.

8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES

Blanqueamiento: P. decussata es uno de los escleractinios más termotolerantes del Indo-Pacífico, precisamente porque coloniza llanuras intermareales turbias y someras con oscilaciones fuertes de temperatura. En acuario tolera picos de 30-31 °C durante días, pero mantenida por encima de 32 °C más de tres semanas pierde zooxantelas: las láminas se vuelven translúcidas, aunque los pólipos permanecen retraídos pero visibles. La recuperación es buena (6-10 semanas) si se estabilizan temperatura, alcalinidad y nutrientes; el error habitual es subir la luz de golpe, lo que agrava el estrés del tejido clareado.

RTN/STN: el cenosarco de los agarícidos es fino, y la necrosis bacteriana rápida suele iniciarse en el borde libre de la placa o en una fractura reciente, avanzando varios centímetros al día y dejando el esqueleto blanco desnudo con olor fétido. La causa más frecuente en acuario no es un patógeno exótico, sino acumulación de detrito en el ángulo entre láminas superpuestas y zonas de flujo nulo; el tejido muere por asfixia y las bacterias colonizan después. Corta la parte afectada con disco de diamante dejando 1 cm de margen sano, refuerza el movimiento de agua y mantén la alcalinidad estable (7,5-8,5 dKH); una caída brusca por debajo de 7 dKH provoca regresión marginal idéntica a una STN.

Parásitos y organismos perforadores: los cirrípedos pirgomátidos (Pyrgoma, Cantellius) excavan la superficie de la placa creando oquedades que no dañan a la colonia pero delatan recolección en el medio natural. Los cangrejos críptidos (Cryptochiridae) generan fosas y agallas redondeadas. Esponjas perforadoras del género Cliona y bivalvos Lithophaga colonizan la base muerta y pueden socavar una colonia vieja. Los platelmintos acelos (Waminoa) forman películas pardas que sombrean y deben retirarse con sifón o baño de KCl.

Plagas y competencia: cianobacterias filamentosas e Dictyota invaden enseguida el esqueleto expuesto de la cara inferior y las zonas sombreadas bajo las láminas; el sombreado propio es el fallo típico de acuario, cuando la colonia crece y la base queda sin luz ni flujo hasta necrosarse. Las Drupella deja marcas blancas de raspado de 1-2 mm en el borde y deben retirarse mecánicamente. Antes del baño de yodo, verifica siempre lesiones de base: un baño sobre tejido necrótico acelera la pérdida de la colonia.

9. 🌍 CONSERVACIÓN Y SOSTENIBILIDAD

Todos los Scleractinia, incluida Pavona decussata, figuran en el Apéndice II de CITES: su comercio internacional exige permisos de exportación y certificados de origen, y en la UE la importación requiere certificado CITES válido y trazabilidad documental del exportador. La especie está evaluada como «Preocupación menor» (LC) en la Lista Roja de la UICN, lo que no la exime de presión local: la amenaza principal es la degradación del hábitat (blanqueamiento masivo, sedimentación, acidificación) y no el comercio ornamental, muy secundario frente a la pesca y la contaminación costera.

La acuacultura es aquí especialmente viable. Un fragmento de placa de 3-5 cm se adhiere con cemento o resina en 3-6 semanas, con extensión lineal

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

Pavona decussata (Dana, 1846), familia Agariciidae, tiene una ventaja poco habitual entre los SPS: calcifica rápido, tolera aguas con nutrientes elevados y turbidez, y soporta picos térmicos que blanquearían a un Acropora. Quien la trata como un coral delicado acaba con una colonia marrón y compacta; quien la trata como un colonizador agresivo obtiene en meses placas de crestas decusadas —entrecruzadas en ángulo— con márgenes verde pálido o rosado. Estos son los puntos que marcan la diferencia.

  1. Lee la morfología como un registro de parámetros. Con luz alta y corriente fuerte desarrolla columnas erguidas y crestas muy marcadas; con luz baja y flujo pobre aplana, forma placas finas horizontales y se vuelve marrón uniforme. Si los márgenes de las crestas no muestran una banda pálida de calcificación activa, revisa KH y renovación de corriente antes que la alimentación.
  2. Montaje inclinado 30-45°. Sobre una base plana y pegada con cianoacrilato gel tiende a incrustar y expandirse lateralmente con rapidez; inclinada sobre un saliente desarrolla la morfología de placas y columnas que la define. Reserva 10-15 cm de radio libre: es una de las agarícíidas que con más facilidad sobrecrece roca viva y tejido muerto de vecinos.
  3. La sedimentación en los valles es su primer factor de necrosis. Los surcos entre crestas retienen detrito y el tejido necrosa en franjas, empezando siempre por la base. Dirige una bomba hacia la colonia con movimiento alterno (no laminar continuo) y sopla los valles con jeringa o pera dos veces por semana; el caracol de limpieza no llega donde llega el agua.
  4. Agresividad real, aunque silenciosa. Extiende filamentos mesentéricos y digiere tejido de corales vecinos, y además los cubre por crecimiento. Sepárala de Seriatopora, de acróporas de rama fina y de zoántidos; frente a LPS de tentáculos largos (Catalaphyllia, Euphyllia) pierde si el contacto es nocturno y repetido.
  5. Alelopatía de blandos: no es un mito con esta especie. En sistemas con Sarcophyton o Sinularia se observa freno de calcificación y crestas más romas. Carbón activo a 200-300 mL por 100 L, cambiado cada 3-4 semanas, y separación física de los blandos.
  6. Aclimatación luminosa en 4-6 semanas. Tolera PAR de 250-400 µmol·m⁻²·s⁻¹ con picos de 500 sin daño, pero no el salto brusco: sube desde el fondo en escalones de 15 cm semanales. Un exceso repentino blanquea primero las crestas altas; la falta de corriente blanquea primero la base.
  7. Nutrientes: otra liga que Acropora. Mantiene color y crecimiento con NO₃ entre 5 y 15 mg/L y PO₄ entre 0,05 y 0,12 mg/L. Si se vuelve marrón oscuro con crecimiento explosivo, reduce nutrientes y sube espectro azul; si se aclara en exceso, alimenta con fitoplancton y aminoácidos dos veces por semana.
  8. El color verde o rosado es cuestión de espectro. Se intensifica con 400-490 nm bien representados; lámparas con dominante roja o blancos cálidos la apagan. No hay evidencia de que el yodo intensifique su pigmentación; la estabilidad de KH (±0,3 dKH/día) influye mucho más.
  9. Fragmentar es sencillo; curar bien, imprescindible. Corte con sierra de diamante o cizalla dejando 3-4 crestas por fragmento; secado al aire inferior a 60 s y encolado en seco sobre base rugosa. Curación en zona de corriente moderada 5-7 días antes de devolverla a su posición definitiva.
  10. Cuarentena y revisión de la base. 45 días en sistema independiente. Inspecciona la cara inferior: vermétidos y esponjas cliónidas perforan el esqueleto y pasan desapercibidos hasta que la colonia se desprende. Revisa también los valles por planarias y por lesiones blanquecinas de avance rápido (tipo banda blanca), que en esta especie suelen asociarse a acumulación de detrito más que a patógeno primario.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

En un acuario cerrado las estaciones no existen; usa esta tabla como ciclo de revisión, ajustando si tu sistema recibe luz natural o sufre oscilación térmica estacional.

Estación Iluminación y fotoperíodo Alimentación Parámetros y ajustes Mantenimiento específico
Primavera Subida gradual a 11-12 h; incremento del 10 % de PAR cada dos semanas Fitoplancton 2×/semana; aminoácidos 1×/semana Vigilar consumo de KH al acelerarse el crecimiento: 7-9 dKH, Ca 420-450 mg/L, Mg 1300-1350 mg/L Soplado de valles 2×/semana; revisar bandas pálidas de crecimiento; primer corte de fragmentos del año
Verano Fotoperíodo 10-11 h; reducir 1-2 h si la temperatura supera 28 °C Igual o ligeramente reducida; evitar picos de materia orgánica Temperatura 24-27 °C (máximo sostenido 28,5); aumentar aireación y renovación superficial; vigilancia de O₂ nocturno Reforzar corriente para compensar la menor solubilidad de O₂; revisar bombas por cal; no hacer cambios bruscos de salinidad
Otoño Mantener 10-11 h; limpieza de pantallas y tubos antes de subir potencia 2-3 tomas semanales de plancton para reservas previas al invierno Estabilidad de salinidad 35 (1,026); corregir Mg antes de que caiga el KH Poda de sobrecrecimiento sobre vecinos; fragmentos nuevos a cuarentena; revisión de esponjas perforadoras en la base
Invierno 10 h; reducir 10-15 % PAR si el crecimiento se ralentiza de forma natural 1 toma semanal; suspender aminoácidos si NO₃ supera 15 mg/L KH 7,5-8,5 estable; PO₄ 0,05-0,10 mg/L; evitar descensos de temperatura por debajo de 23 °C Cambio de carbón activo; soplado de valles 1×/semana; comprobar que la placa no ha perdido apoyo en la roca

12. ✅ CONCLUSIÓN

Pavona decussata es el SPS que recomiendo a quien quiere aprender a leer una colonia antes de comprar acróporas caras: perdona errores de nutrientes, tolera temperaturas altas y crece lo suficiente como para evidenciar en semanas si la corriente, la alcalinidad o el espectro están mal. Su talón de Aquiles no es la química del agua, sino la hidrodinámica: los valles entre crestas decusadas acumulan detrito y la necrosis empieza siempre ahí, en la base, cuando el flujo es laminar o insuficiente. Resuelto eso, la especie responde con márgenes de crecimiento pálidos, crestas definidas y una capacidad de colonización que obliga a planificar la ubicación con criterio de espacio y de agresividad, no solo estético.

No la infravacunes: un sistema con NO₃ indetectable y PO₄ a cero la empalidece y frena la calcificación, un error frecuente al trasladar protocolos de Acropora. Mantén 5-15 mg/L de nitrato, 7-9 dKH con oscilación menor de 0,3 dKH al día y corriente turbulenta alterna, y tendrás una colonia que en doce meses habrá duplicado su superficie y servido de referencia para ajustar el resto del arrecife.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Por qué Pavona decussata tolera menos luz que la mayoría de SPS?

Porque su hábitat natural no es la cresta arrecifal batida y transparente, sino lagunas someras, fondos de back-reef y zonas con turbidez estacional. Sus colonias se asientan habitualmente entre 1 y 15 m en aguas con alta carga de partículas en suspensión, donde la irradiancia media es muy inferior a la de un acuario dominado por Acropora. En la práctica, 80–200 µmol/m²/s de PAR con fotoperiodo de 10–12 h es suficiente; por encima de 300 µmol/m²/s sin aclimatación progresiva de 4–6 semanas aparecen decoloraciones en los ápices de las láminas. Es un coral marcadamente heterótrofo: captura presas de 100–500 µm y aprovecha bien la alimentación con fitoplancton concentrado o náuplios, lo que compensa la baja producción autótrofa.

¿Cómo distingo Pavona decussata de P. cactus y P. clavus?

P. decussata forma ramas aplanadas y bifaciales (con coralitos en ambas caras) que se disponen en abanico, con cálices de 1–1,5 mm alineados en hileras cortas separadas por crestas septocostales marcadas y coenosteum con espínulas finas. P. cactus presenta ramas más finas, erectas y paralelas, con hileras de cálices continuas y mayor densidad de ramificación; P. clavus muestra ramas claviformes abiertas y coralitos irregulares, no alineados. Conviene recordar que el concepto taxonómico clásico de P. decussata es amplio y agrupa linajes crípticos con morfología plástica, modulada por corriente y luz: dos fragmentos del mismo genotipo pueden parecer especies distintas según el régimen hidrodinámico.

¿Qué parámetros químicos exactos debo mantener?

Salinidad 35 g/L (1.025–1.026), temperatura 24–26 °C, pH 8,1–8,3, alcalinidad total 7,5–8,5 dKH, calcio 420–450 mg/L, magnesio 1300–1350 mg/L, potasio ≈400 mg/L. A diferencia de otros SPS, admite nutrientes moderados: NO₃ 2–10 mg/L y PO₄ 0,03–0,10 mg/L son valores seguros y su crecimiento se resiente en sistemas ultrabajos en nutrientes (ULNS). Su punto débil no son los nutrientes, sino la estabilidad de la alcalinidad: oscilaciones superiores a 1 dKH en 24 h provocan necrosis rápida desde la base de las ramas, un cuadro que se confunde con infección bacteriana.

¿Por qué se acumula sedimento y cómo lo evito?

La arquitectura bifacial crea cámaras donde el flujo no penetra y el sedimento queda retenido; la necrosis basal por asfixia es la causa más frecuente de pérdida de colonias. Necesita corriente turbulenta e indirecta, con renovación de 20–30 veces el volumen del acuario por hora y alternancia de dirección, no chorros laminares directos que erosionan el tejido. Colócala sobre roca viva, nunca en la arena, con la lámina perpendicular a la corriente dominante. El sifonado o el soplado con pera dos veces por semana es obligatorio en acuarios con peces que remueven el sustrato; su eficiencia de rechazo de sedimento es limitada en comparación con corales masivos.

¿Es realmente un SPS «fácil»?

Es tolerante, no indestructible. Soporta bien variaciones de nutrientes, iluminación moderada y temperatura, pero crece despacio: 1–3 cm anuales en condiciones óptimas, con una fase inicial de expansión incrustante de varios meses antes de Levantar ramas. Tolera y sobrevive a episodios que matarían a un Acropora, lo que lo hace idóneo para iniciarse en SPS. Sin embargo, es un competidor por espacio eficaz: sus láminas sombrean y sobrecrecen a corales vecinos, por lo que debe mantenerse a 10–15 cm de otros SPS. La fragmentación es sencilla: corte con disco en la base de una rama, fijación con cianoacrilato en gel y curación en 2–3 semanas.

¿Qué simbiontes y patógenos debo buscar al comprarla?

Inspecciona las ramas en busca de agallas calcáreas hemisféricas: son cangrejos galícolas de la familia Cryptochiridae (género Opecarcinus), comensales casi benignos que deforman el esqueleto y debilitan la rama, pero no se propagan. Revisa también la presencia de planarias blanquecinas (Waminoa) sobre el tejido, indicadoras de exceso de materia orgánica, y de algas filamentosas en los bordes de necrosis, que colonizan en 48 h cualquier herida. Los cuadros de banda blanca y las necrosis por estrés térmico son sus patologías más habituales; ante cualquier pérdida de tejido, fracciona inmediatamente por encima del margen necrótico y descarta la base afectada.

📚 REFERENCIAS</h2

Roberto Parra Jiménez 🎓 Biólogo Marino – Universidad de Hawaii (UH Mānoa)
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia

© 2026 Roberto Parra Jiménez – Biólogo Marino (UH Mānoa). Todos los derechos reservados.

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