Anthelia glauca

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Anthelia glauca es un octocoral blando incrustante de la familia Xeniidae que no construye ramas ni tallos erectos: la colonia se expande como una membrana basal de coenosarco adherida al sustrato, de la que emergen directamente pólipos alargados de 5–15 mm, con ocho tentáculos pinnados y no retráctiles en sentido estricto (se contraen y arrugan, pero no desaparecen dentro de un cáliz). El color típico es gris azulado, verde glauco o marrón verdoso —de ahí el epíteto glauca, «verde azulado»—, con el disco oral más pálido y, en algunas morfas, matices rosados en la base de los tentáculos. En el mercado se vende con frecuencia de forma genérica como «Anthelia» o confundida con Xenia, pese a que una observación de cinco minutos la distingue sin ambigüedad: los pólipos de Anthelia no pulson de forma rítmica y continua como los de Xenia y Heteroxenia; solo se abren y cierran lentamente en respuesta a estímulos.

Su fama de coral «fácil» está justificada: tolera rangos amplios de parámetros, perdona errores de iluminación y no requiere alimentación particulada, ya que vive en simbiosis con zooxantelas. Sin embargo, el acuarista debe saber que su principal reto no es mantenerla viva, sino contenerla. El coenosarco avanza sobre la roca viva a razón de varios milímetros por semana, y en un año puede cubrir 20–30 cm de sustrato, sofocando Zoanthus, discosomas, montíporas y acróporas de base. Es además un coral con defensa química: libera diterpenos y otros metabolitos alelopáticos que inhiben el crecimiento de corales vecinos, por lo que en sistemas mixtos conviene mantenerla sobre una isla de roca aislada por arena y emplear carbón activo de forma continua. Bien gestionada, es una especie excelente para iniciación, para refugios de invertebrados y para dar movimiento y textura a la parte baja del arrecife.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

La familia Xeniidae se caracteriza por la ausencia total de escleritos (no hay espículas calcáreas que den rigidez al tejido), un coenosarco blando con cavidades gastrovasculares interconectadas y pólipos monomórficos con ocho tentáculos pinnados. Dentro de este grupo, Anthelia se distingue por su base membranosa incrustante, la ausencia de tallos individuales y la ausencia de sifonozooides: todos los pólipos son autozooides tróficos. Se separa de Cespitularia porque esta forma tallos ramificados conspicuos; de Xenia porque los pólipos de esta última nacen de tallos cortos pero definidos y pulsan rítmicamente (30–60 ciclos/min); y de Heteroxenia porque esta última es dimórfica —presenta autozooides grandes y sifonozooides reducidos— y también pulsa. La identificación se confirma con la observación de la membrana basal continua, el tamaño homogéneo de los pólipos y la ausencia de pulsación espontánea. La revisión filogenética de McFadden y colaboradores (2022) reubicó Xeniidae en el orden Malacalcyonacea, por lo que es normal encontrar ambas denominaciones en la literatura. No existe una diferenciación de morfos comerciales validada científicamente; las variantes «verde», «azul» y «rosada» que circulan corresponden a plasticidad pigmentaria y a la densidad de zooxantelas (complejo Symbiodiniaceae, típicamente clado C) más que a taxones distintos.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Especie de amplia distribución indopacífica: mar Rojo, África oriental, Madagascar, islas Andamán, Indonesia, Filipinas, Papúa Nueva Guinea, Gran Barrera de Coral y Micronesia. Ocupa preferentemente planicies arrecifales someras, lagunas y zonas de reef flat entre 0 y 15 m de profundidad, con máxima abundancia en los primeros 5–8 m. Es un colonizador pionero de sustrato desnudo: cascajo, coral muerto, roca cubierta de algas e incluso arena gruesa consolidada, donde la lámina basal avanza y estabiliza el sedimento. Soporta bien la turbidez y la sedimentación ligera, la exposición temporal al aire en bajamares extremos y fluctuaciones térmicas de 24 a 30 °C. En el arrecife se comporta como competidor por espacio más que por luz: crece en horizontales y paredes verticales con luz media, evitando las zonas de máxima irradiancia y las superficies expuestas a oleaje rompiente fuerte, aunque requiere movimiento de agua constante para arrastrar el moco que produce y evitar la acumulación de detritus entre los pólipos.

Traslación práctica al acuario, basada en esos hábitats:

• Temperatura: 24–26 °C (tolera picos a 28 °C, no sostenidos).
• Salinidad: 34–35 g/L (densidad 1.025–1.026).
• pH / alcalinidad: 8,1–8,4; KH 7–9 dKH.
• Ca / Mg / K: 400–450 ppm; 1250–1350 ppm; 380–420 ppm.
• Nutrientes: NO₃ 1–10 ppm; PO₄ 0,03–0,10 ppm. Valores indetectables sostenidos provocan palidez y reducción del tamaño de los pólipos.
• Iluminación: media, PAR aproximado de 100–250 µmol·m⁻²·s⁻¹; admite pantallas de LED de gama media en la mitad inferior del tanque.
• Flujo: medio a medio-fuerte, indirecto y turbulento (10–20 renovaciones/hora), evitando la corriente laminar directa que aplasta los pólipos.

No necesita alimentación exógena: obtiene carbono y nitrógeno de sus zooxantelas y captura, de forma oportunista, bacterias y materia orgánica disuelta. En acuarios de arrecife maduros se multiplica por fisión del coenosarco; para propagarla basta con cortar un fragmento de membrana basal de 2–3 cm adherido a una laja y fijarlo con cianoacrilato en gel en un punto de roca rugosa, manteniéndolo con flujo suave durante 5–7 días. Vigile la aparición de babosas del género Phyllodesmium y de planarias depredadoras, así como la necrosis por acumulación de detritos en zonas de poco movimiento: son sus dos causas principales de pérdida en cautividad.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Anthelia glauca (Klunzinger, 1878) es un octocoral zooxantelado de la familia Xeniidae (clásicamente Antheliidae), descrito del Mar Rojo y ampliamente distribuido por arrecifes someros del Indo-Pacífico. Su arquitectura colonial es el primer carácter diagnóstico en acuario: colonia estrictamente incrustante, sin ramas erectas ni pedúnculos. El coenenquima forma una lámina de apenas 1-3 mm de espesor que tapiza la roca, y de él emergen los pólipos directamente, sin el tallo conspicuo que separa a Xenia y Heteroxenia del sustrato. Si al mirar la colonia de perfil se aprecia un pie cilíndrico bajo cada pólipo, la identificación es incorrecta.

El pólipo alcanza un disco oral de 4-8 mm de diámetro, con ocho tentáculos pinnados de pinnulas cortas, numerosas y dispuestas en dos hileras, lo que da al tentáculo un aspecto plumoso y simétrico. La columna es retráctil y responde en segundos a estímulos mecánicos, colapsando la colonia en una masa de discos cerrados de color crema. En densidad alta pueden contarse 30-50 pólipos por cada 10 cm² de superficie colonizada. No pulsa: la ausencia de pulsación rítmica (presente en Xenia y Heteroxenia) es un criterio de campo fiable incluso antes de observar la base.

El esqueleto es prácticamente inexistente: la especie carece de escleritos en tentáculos y cálices, y presenta únicamente microescleritos corpusculares escasos, concentrados en el coenenquima basal. Esta ausencia de refuerzo calcáreo explica tres cosas de interés práctico: la colonia no puede crecer en vertical, se desgarra con facilidad al manipularla y se desprende de rocas lisas si el flujo es demasiado laminar.

Las zooxantelas (Symbiodinium del clado C) son densas y constituyen la vía trófica dominante; en hábitats someros el aporte fotosintético supera holgadamente el 80 % de la demanda energética. La coloración típica es beige-rosada con matiz gris azulado (de ahí glauca), con el disco oral más pálido y las pinnulas blanquecinas. En iluminación insuficiente la colonia se aclara, alarga los pólipos y pierde el matiz azulado en 3-4 semanas. La captura de materia orgánica disuelta y bacterias es secundaria, pero explica su tolerancia a aguas con nutrientes detectables.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

La combinación crítica es luz alta + nutrientes detectables + flujo turbulento. Con luz alta y agua ultrapura (NO₃ indetectable, PO₄ <0,02 mg/L) la colonia se blanquea y entra en el clásico «melting» de los xénidos, en el que el coenenquima se deshace en jirones mucosos en 48-72 h. El yodo (0,03-0,06 mg/L, verificado por ICP) mejora la expansión de los pólipos, aunque no es imprescindible.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocación: zona media-alta del paisaje, entre 20 y 40 cm de la superficie con LED de 150-350 PAR. Necesita roca rugosa, madura y estable, preferiblemente en una isla aislada del sustrato principal, porque su crecimiento incrustante avanza 1-3 cm lineales al mes y termina cubriendo cualquier superficie anexa, incluidos cristales y rebosadero. Dejar 10-15 cm de separación respecto a Acropora, Montipora y Seriatopora: los xénidos liberan diterpenos y sesquiterpenos alelopáticos que inhiben la calcificación de los escleractinios vecinos. Con colonias de xénidos grandes, carbón activado a razón de 100-200 g por 200 L, renovado cada 3-4 semanas, reduce la carga organoléptica y la competencia química.

Crecimiento: en condiciones óptimas la lámina basal se expande de forma centrífuga y genera nuevos pólipos por fisión; la densidad de pólipos aumenta hasta saturar el espacio disponible. Es indicador biológico: expansión rápida con pólipos cortos y pálidos señala exceso de nutrientes; pólipos muy alargados y colonia contraída de forma persistente, déficit de luz o flujo excesivo.

Fragging: no requiere sierra ni cortador; se realiza con tijera o bisturí sobre la lámina. Procedimiento:

• Cortar fragmentos de 2-3 cm² con un mínimo de 15-20 pólipos y algo de coenenquima; los fragmentos menores se lisan con facilidad.
• Adherir con cianoacrilato en gel sobre esquirla seca de roca o base cerámica. Alternativa para láminas finas: fijar con tul de malla fina y goma elástica durante 7-10 días en zona de flujo suave.
• Curado en bandeja o zona baja del acuario con luz moderada y flujo indirecto 5-7 días; el tejido se regenera desde los bordes del corte.
• Baño de yodo a 10-20 mg/L durante 3-5 minutos si hay sospecha de infección bacteriana; secar el exceso de mucosidad antes del baño.
• No exponer los fragmentos a aire ni a saltos térmicos >2 °C durante el manejo: es la causa más frecuente de necrosis post-fragging.

La tasa de éxito es alta (habitualmente >90 %) siempre que la alcalinidad y la temperatura permanezcan estables; el fallo casi siempre se debe a agua con NO₃/PO₄ a cero o a flujo laminar directo sobre el injerto en las primeras 72 horas.

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Anthelia glauca no posee nematocistos de descarga potente —sus pólipos son incapaces de picar a un pez—, pero sí está defendida químicamente: como el resto de los Xeniidae, sintetiza diterpenos (cembranoides y xenicinas) que inhiben el asentamiento y el crecimiento de corales vecinos y hacen su tejido poco apetecible para la mayoría de los peces óseos. Esa combinación de tejido blando, sin esqueleto y químicamente protegido la sitúa entre los corales más «seguros» del arrecife domesticado, con excepciones concretas y previsibles.

• Peces sin riesgo real: gobios (Gobiodon, Elacatinus), blénidos, apogónidos, crisípidos, lábridos pequeños de los géneros Cirrhilabrus y Paracheilinus, antias, Chromis, peces payaso, Pterapogon kauderni y la mayoría de los cirujanos del género Ctenochaetus. Ninguno ramonea el tapete. Conviene evitar caballitos de mar en tanques dominados por Anthelia: los pólipos no soportan el peso ni sirven de anclaje, y el animal acaba con abrasiones.
• Peces de riesgo alto: gángsteres enanos (Centropyge loricula, C. bispinosa, C. eibli) picotean xénidos de forma个体 variable, a menudo tras meses de convivencia aparentemente pacífica; Pomacanthus y Holacanthus juveniles son más destructivos. Chaetodon kleinii, C. collare y C. auriga consumen corales blandos de forma sistemática. Acreichthys tomentosus, usado contra Aiptasia, puede pasar a morder el tapete cuando escasean las anémonas, y Oxymonacanthus longirostris es incompatible por su dieta obligada. Balístidos, Arothron y escáridos destruyen colonias por puro desgaste mecánico.
• Damiselas territoriales: Stegastes spp. cultivan algas sobre la roca y «siegan» el tapete para ampliar su jardín; el daño es progresivo pero real en acuarios grandes.
• Invertebrados compatibles: Trochus, Cerithium, Nassarius y Strombus (gasterópodos), cangrejos ermitaños (Clibanarius, Calcinus), Lysmata y Alpheus, ofiuras y estrellas del género Linckia o Archaster. Todos transitan el tapete sin consumirlo.
• Invertebrados problemáticos: Protoreaster nodosus y otras estrellas de alimentación carnívora depredan activamente sobre octocorales; Diadema y Tripneustes abrasionan el tejido al pastorear y abren vías de infección. Hermodice carunculata (gusano de fuego) es un depredador directo de corales blandos documentado. Las anémonas grande (Entacmaea, Stichodactyla) y los LPS con tentáculos barredores (Galaxea, Euphyllia, Hydnophora) ganan siempre la contienda física: deja 15-20 cm de separación.

El verdadero problema no es lo que come Anthelia, sino lo que Anthelia hace: al ser un coral incrustante de crecimiento rápido, tapiza la roca, asciende por el vidrio y libera terpenos al agua. Con carbón activado (100-200 g/500 L, cambiado cada 3-4 semanas) y separación física de la roca base se controla; sin ello, achicharra Zoanthus y montíporas vecinas en pocos meses.

8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES

Blanqueamiento. La pérdida de zooxantelas en A. glauca se manifiesta como pólipos translúcidos, pálidos, con el cenénquima gris-azulado tornándose blanquecino. Causas, por orden de frecuencia real: (1) hambre nutricional en sistemas ULNS con NO₃ < 1 mg/L y PO₄ < 0,02 mg/L —los xénidos dependen en gran medida de la captación de nitrógeno y fósforo disueltos y de bacterias—; (2) shock lumínico al pasar de 100 a 250+ µmol·m⁻²·s⁻¹ sin aclimatación; (3) temperatura sostenida por encima de 29 °C; (4) salinidad por debajo de 1,023. Corrige primero parámetros (objetivo: NO₃ 2-10 mg/L, PO₄ 0,03-0,10 mg/L, 25-26 °C, 1.025-1.026, dKH 8-9) y luego reintroduce luz de forma gradual; el tejido

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

1. Aíslala en una isla de roca desde el primer día. Anthelia glauca no forma un tallo erecto: se expande como un cenénquima basal encostrado, sin escleritos, que avanza sobre cualquier sustrato calcificado. En condiciones óptimas el frente de crecimiento progresa 2–4 mm al día, y una vez toca roca viva ya no se retira sin rasparla. Fija la colonia sobre una plaqueta de roca suelta de 10–15 cm y apóyala en la arena o sobre un soporte magnético: podrás extraerla entera para podar, cuarentenar o vender fragmentos.

2. Aprende a leer la retracción de los pólipos. A diferencia de Xenia, Anthelia sí retrae los pólipos dentro del cenénquima. La retracción nocturna es normal; una retracción diurna mantenida más de 24–48 h es un aviso. Causas típicas y verificables: salto de salinidad superior a 0,002 (34–35 ‰), descenso de KH por debajo de 7 dKH, yoduro por debajo de 0,03 mg/L, chorro laminar directo sobre la colonia, o proximidad de un vecino con tentáculos barrenderos (Euphyllia, Galaxea, Hydnophora).

3. Flujo alternante, no continuo. Apunta a 15–20 renovaciones por hora del volumen total en la zona de la colonia, con corriente oscilante (olas). Los pólipos deben ondular, no aplastarse ni quedar cerrados. El flujo laminar constante es el error más frecuente: impide la expansión y, en octocorales sin escleritos, favorece la acumulación de moco y las infecciones bacterianas del cenénquima.

4. Yodo medido, nunca a ciegas. Las Xeniidae responden al yoduro. Mantén 0,03–0,06 mg/L (test colorimétrico o ICP), subiendo con Lugol a razón de 1 gota por 100 L y semana hasta alcanzar el valor. Por encima de 0,10 mg/L tendrás explosión de algas y cianobacterias. Es un aditivo con ventana terapéutica estrecha: sin test, no dosifiques.

5. Carbón activo permanente en acuarios mixtos. Anthelia libera mucus y terpenos; 100–150 g de carbón por 500 L, cambiados cada 3–4 semanas, reducen la alelopatía y la amarillez del agua. No lo sustituyas por resinas mixtas de intercambio iónico, que alteran el equilibrio iónico.

6. Poda y contención del frente de avance. Corta con tijera curva en el borde del tapiz, dejando 5 mm de margen sin tocar tejido vivo, y retira todos los fragmentos del agua: cualquier resto de 2 mm se reimplanta y repuebla. La matriz regenera en 7–14 días. Para frenar el avance sobre la roca principal, aplica epoxi o pasta de kalk en el frente de crecimiento, nunca sobre el cenénquima activo.

7. Nutrición realista. Es autótrofa con zooxantelas, pero responde a materia orgánica disuelta: 2–3 ml de aminoácidos por 100 L, tres veces por semana, y fitoplancton de 5–30 µm dos veces por semana. No captura presas grandes; el alimento congelado troceado solo ensucia el agua. Con NO₃ en 5–15 mg/L y PO₄ en 0,05–0,15 mg/L crece con vigor; en agua ultrapura (NO₃ < 1) el tapiz se adelgaza y puede colapsar de forma súbita.

8. Cuarentena de 30 días. Revisa el envés del tapiz y la roca: platelmintos del género Waminoa y pequeños caracoles suelen pasar desapercibidos. Un baño de yodo (Lugol 12,5 mg/L, 10–15 minutos) antes de entrar al sistema principal es suficiente; no lo repitas más de una vez.

9. Aclimatación por goteo, 60–90 minutos, sin exposición al aire. El cenénquima es frágil y se desgarra al sacarlo de forma brusca; una colonia desgarrada tarda semanas en recuperar la expansión de pólipos.

10. Criterios de compra. Exige pólipos extendidos en la tienda, borde del tapiz limpio y adherido a roca, y ausencia de hilo blanquecino o base despegada. Una colonia con el cenénquima pálido y translúcido en los márgenes suele corresponder a necrosis incipiente y no remonta.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

12. ✅ CONCLUSIÓN

Anthelia glauca es un octocoral ideal para quien entiende que «fácil» no significa «inocuo». Su valor en el acuario es doble: coloniza roca desnuda con rapidez, aporta movimiento y sirve como indicador biológico de estabilidad iónica y de yodo; a cambio, exige aislamiento físico, poda periódica y una nutrición mineral y orgánica mantenida en valores concretos (34–35 ‰, 7,5–9 dKH, NO₃ 5–15 mg/L, yoduro 0,03–0,06 mg/L, 24–26 °C).

Con esos parámetros estables y flujo alternante, una colonia de 5 cm puede cubrir una plaqueta de 15 cm en cuatro o cinco meses, generando excedentes podables que funcionan como exportación de nutrientes. El riesgo real no es que enferme, sino que prospere demasiado: prográmala como si fuera un coral invasor desde el primer día y tendrás un coral resistente, vistoso y sostenible en el tiempo. Si el tapiz se retrae de día más de 48 h, no añadas nada al acuario: mide salinidad, KH y yoduro antes de actuar.

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

Anthelia glauca carece de esqueleto rígido: su cenénquima y el celenterón responden de forma casi inmediata a cualquier variación osmótica, por lo que la aclimatación debe hacerse por goteo durante 60-90 minutos hasta igualar la salinidad del sistema (35 g/L, densidad 1.026). No tolera saltos superiores a 0,001 unidades de densidad en 24 h. Mantén el KH entre 7,5 y 9 dKH con dosificación continua y test de precisión: una caída de 1,5 dKH en un día provoca contracción de pólipos y pérdida de turgencia. Calcio 420-440 mg/L y magnesio 1.300-1.350 mg/L sostienen la matriz de mucopolisacáridos del mat. El punto crítico real es la relación nutrientes/oligoelementos: por debajo de NO₃ 1 mg/L y PO₄ 0,02 mg/L la colonia adelgaza el cenénquima y se desprende del sustrato en dos o tres semanas, mientras que con NO₃ 5-10 mg/L y PO₄ 0,03-0,08 mg/L el avance lineal es de 1-2 cm al mes. El yodo conviene medirlo por ICP antes de dosificar nada.

En el acuario, Anthelia glauca compite por contacto y por vía química. Su mat reptante avanza 3-5 mm por semana y ahoga tejido de Zoanthus, Palythoa o Montipora digitata mediante sombreado y descarga de nematocistos, pero frente a Sinularia, Sarcophyton y Lobophytum pierde la partida química: los terpenos y diterpenos liberados por estos alcionáceos inhiben la extensión de sus pólipos en 24-48 h sin contacto físico alguno. La señal es inequívoca: pólipos semicerrados, tentáculos pinnados replegados y borde del mat pálido en la cara expuesta al competidor. Instala carbón activado a razón de 250-300 g por 500 L renovado cada 3-4 semanas y mantén un skimmer sobredimensionado; el ozono ajustado a 300-350 mV ORP ayuda a oxidar esos metabolitos. Deja 10-15 cm de separación frente a corales blandos grandes y orienta la corriente para que el agua salga del competidor hacia el desagüe, nunca hacia la colonia.

Anthelia glauca responde a la luz en un rango estrecho. Entre 80 y 150 µmol/m²/s de PAR mantiene pólipos largos y la tonalidad gris-azulada que le da nombre; por encima de 300 µmol/m²/s se contrae, reduce el disco oral y pierde pigmentación en 5-7 días, mientras que por debajo de 50 µmol/m²/s los pólipos se alargan, el mat se adelgaza y el crecimiento se detiene. Un fotoperiodo de 10-11 h con rampa de 30 minutos evita estrés por cambios bruscos. En flujo exige movimiento alterno e indirecto de 15-25 renovaciones por hora: la corriente laminar continua dobla los pólipos en una sola dirección y facilita la acumulación de detritos bajo la base, origen habitual de necrosis bacteriana. Tras modificar iluminación o bombas, la extensión completa tarda de 2 a 3 semanas en estabilizarse; no interpretes una contracción de 48 h como enfermedad si el resto de parámetros es correcto. La frecuencia de pulsación (0,5-1 Hz) cae con pH por debajo de 8,0.

Los fallos poco frecuentes en A. glauca suelen ser mecánicos o biológicos. El bailout de pólipos —desprendimiento de pólipos vivos que se reasientan— aparece tras picos térmicos por encima de 29 °C o baños de yodo demasiado agresivos; no superes 4-5 minutos con Lugol diluido, ya que el tejido carece de protección esquelética. El mat se despega del vidrio o de la roca cuando el flujo incide directamente bajo él: fíjalo con cianoacrilato en gel sobre piedra porosa y deja que colonice por sí mismo. Entre sus plagas específicas figuran planarias rojas (Convolutriloba retrogemma), que se camuflan entre los pólipos, y nudibranquios aeolidáceos; ambos se controlan con aspiración noct

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

1. ¿Cómo distingo Anthelia glauca de Xenia o Sansibia?

Los pólipos de A. glauca nacen directamente de una membrana basal incrustante y delgada que tapiza la roca, sin tallos ramificados: miden 5–10 mm con el disco expandido y presentan ocho tentáculos pinnados y no retráctiles, que solo se contraen parcialmente al manipularlos. Coloración típica gris plateado, azul glauco o verde grisáceo, con el disco oral más pálido. A diferencia de Xenia, no ejecuta la pulsación rítmica sostenida (ciclos de 1–2 s) de los pólipos, y frente a Sansibia —la «Xenia azul» del comercio— sus pólipos son claramente mayores y el cenénquima, más carnoso y extenso. Si dudas, observa 60 segundos sin corriente directa: Anthelia permanece estática.

2. ¿Qué parámetros físico-químicos exactos requiere?

Temperatura 24–27 °C (límite superior 29 °C), salinidad 34–35 ppt (densidad 1.025–1.026), pH 8,1–8,4, alcalinidad 7–10 dKH, calcio 400–450 mg/L, magnesio 1280–1350 mg/L, nitrato 2–15 mg/L y fosfato 0,03–0,10 mg/L. Es un xénido tolerante a nutrientes medios, pero involuciona con niveles indetectables: en tanques con NO₃ < 1 mg/L y PO₄ < 0,02 mg/L la colonia reduce el tamaño de los pólipos y se desprende del sustrato. No dosifiques yodo a ciegas: la relación entre yodo y xénidos es anecdótica y no está respaldada experimentalmente; mide antes de actuar.

3. ¿Qué iluminación y corriente necesita?

Especie fotosimbiótica de aguas someras y batidas (arrecifes de Mar Rojo, África oriental, Indonesia y Gran Barrera). Requiere PAR de 150–350 µmol/m²/s con espectro completo y predominio de azules; por debajo de 100 µmol/m²/s se alarga y palidece. La corriente debe ser alterna o de oleaje, con 10–20 veces el volumen del tanque por hora y picos intermitentes: el flujo laminar constante acumula detritus bajo la membrana basal y favorece su despegue. Colócala en la mitad superior del acuario, nunca en una esquina de baja renovación.

4. ¿Por qué se produce el «colapso» súbito de la colonia?

El llamado meltdown de los xénidos consiste en la desintegración de la colonia en 24–72 h, con pólipos que se desprenden y necrosis del cenénquima. No tiene un patógeno único identificado; los desencadenantes documentados en acuario son caída brusca de nutrientes, oscilación de salinidad > 2 ppt, pH < 7,9, contaminación por metales o cloro, y proliferación bacteriana tras sobrealimentación. Actúa rápido: sifona los restos, renueva 20–30 % del agua, coloca carbón activado y traslada fragmentos sanos a otro sistema, ya que la descomposición libera compuestos que aceleran el proceso en la misma cuba.

5. ¿Es invasiva y alelopática?

Sí, en ambos sentidos. Crece por extensión de la membrana basal a 1–3 mm/día y puede cubrir roca viva y sofocar a corales pequeños. Produce diterpenos tipo xenicano que inhiben la fotosíntesis y el asentamiento de escleractinios (efecto demostrado en alcionarios blandos frente a corales pétreos), por lo que no debe tocar ramas de SPS. Aíslala en una «isla» de roca separada del sustrato principal y mantén carbón activado renovado a razón de 100–200 g por 100 L al mes. Para podarla, corta con tijera el excedente de membrana y retira los restos con sifón.

6. ¿Cómo se reproduce y se propaga en cautividad?

La reproducción asexual es doble: fisión longitudinal del pólipo y gemación sobre la membrana, lo que produce una expansión centrífuga del tapiz. En la naturaleza, los xénidos incluyen especies gonocóricas con incubación de plánulas que se asientan en horas o días, lo que explica su aparición espontánea en acuarios cerrados. La fragmentación manual es trivial: corta un trozo de membrana con 10–20 pólipos, fíjalo a roca rugosa con malla de gasa o una gota de cianoacrilato en el borde, y manténlo con corriente suave. La adhesión estable se produce en 5–10 días a 25 °C; no la muevas durante ese periodo.

📚 REFERENCIAS

• Lamarck, J. B. P. A. de (1816). Histoire naturelle des animaux sans vertèbres, vol. 2. París: Verdière. (Descripción

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