Caulastrea furcata

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Caulastrea furcata Dana, 1846 es un escleractinio de morfología faceloide —pólipos en tubos independientes unidos por un tallo común— que en el aficionado se conoce como «coral trompeta» o «candy cane». Cada corallito es una trompeta alargada de sección poligonal a oval, de 15–30 mm de diámetro, que se eleva 4–8 cm sobre la base y se bifurca dicotómicamente (de ahí furcata, «ahorquillada»). La muralla es fina y porosa (septos de 2–3 ciclos con dentición irregular y un lóbulo paliforme característico), y la columela es trabecular y poco profunda. Con el pólipo expandido se aprecian tentáculos cortos, en una sola fila, de ápice translúcido y punta blanco-amarillenta, sobre un disco oral que contrasta con el tejido exoesqueletal: marrones, verdes, gris azulado, crema o mixtos, a menudo con patrón radial reticulado.

Su interés zoológico está en la combinación de rasgos: es un LPS con fotosimbiosis obligada pero con un repertorio trófico heterótrofo muy eficaz (captura de artemia, mysis y materia orgánica particulada a través de filamentos mesenteriales y descarga de cnidocitos), y posee una tolerancia ambiental que lo aleja de la mayoría de Faviiinae de arrecife somero. En acuariofilia es el «coral de entrada» al mundo LPS por tres motivos concretos: soporta densidades de nutrientes elevadas (nitrato 10–25 mg/L y fosfato 0,1–0,3 mg/L sin decoloración aparente), mantiene la calcificación con alcalinidad moderada (7–9 dKH) y su crecimiento por gemación extratentacular permite fragmentarlo con sierra de diamante sin necrosis del tejido puente. El punto crítico no es la luz ni la química, sino el flujo laminar excesivo y los cambios bruscos de salinidad, que provocan retracción persistente y reabsorción del cenénquima. Un ejemplar sano con 7–9 cm de expansión puede duplicar el número de corallitos en 10–14 meses si se mantiene estable.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

Dana describió la especie en 1846 a partir de material del archipiélago de las Fiyi, dentro de un género que él mismo erigió ese año. La historia taxonómica reciente es relevante porque explica por qué en la literatura antigua aparece como «Faviidae»: los análisis moleculares de Huang y colaboradores (2014) demostraron que Faviidae era polifilético y redistribuyeron sus géneros. Caulastrea quedó en Merulinidae, un clado robusto y bien soportado que agrupa formas con septos de inserción simple y ciclos de septos poco definidos.

La diferenciación práctica respecto a C. curvata se basa en la geometría del corallito: C. furcata presenta tubos netamente alargados, con sección transversal poligonal o incluso angular por compresión mutua, y diámetros de 15–30 mm; C. curvata los tiene más cortos, cilíndricos y pequeños (8–15 mm), con mayor tendencia a la fusión lateral. C. echinulata se distingue por septos exsertos y espinosos, con lóbulos paliformes marcados. Buena parte del material comercializado como «candy cane verde» corresponde en realidad a C. curvata o a morfotipos intermedios, y la identificación visual entre ellos es poco fiable sin esqueleto limpio: la clave taxonómica está en el patrón septal y en el diámetro del corallito, no en el color.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Su distribución abarca el Indo-Pacífico tropical: mar Rojo, África oriental, Madagascar, Seychelles, Maldivas, Indonesia, Filipinas, Papúa Nueva Guinea, Gran Barrera de Coral, archipiélagos de Ryukyu y Micronesia hasta Samoa. Es una especie francamente somera: se registra de 0 a 30 m, pero por encima c. del 80 % de las citas se sitúan entre 1 y 12 m, y en muchas localidades aparece en planicies arrecifales que quedan emergidas durante las mareas vivas extremas.

El hábitat típico no es el arrecife frontal batido, sino las lagunas protegidas y planicies internas con sedimentación fina: fondos de arena limosa, márgenes de praderas de Thalassia, bloques de coral muerto y escombros colonizados. Allí la irradiancia puede caer a 50–150 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR) por turbidez y profundidad, con corrientes de 5–15 cm/s y episodios de salinidad de 30–36 durante la estación de lluvias, así como oscilaciones térmicas de 22–31 °C. Esa ventana ambiental explica su robustez en cautividad y define el protocolo: luz baja o media-baja (80–150 PAR, aclimatando desde abajo), flujo suave e indirecto, y una salinidad estable en 34–35 (gravedad específica 1,025–1,026).

La asociación simbiótica con Symbiodinium del clado C le permite sostener la autotrofia en aguas pobres en luz, mientras que en zonas turbias y ricas en materia orgánica complementa con heterotrofia: en poblaciones naturales se han descrito contenidos estomacales con copépodos y detrito. En el arrecife ocupa además un nicho de colonización temprana frente a competidores de crecimiento rápido, y algunos morfotipos del Indo-Malayo viven semienterrados o libres sobre sedimento, sin fijación rígida al sustrato. En acuario conviene reproducir esa condición de baja energía: posición en la parte baja de la roca, sin contacto con la roca viva (para evitar quemaduras por competencia de Galaxea o Hydnophora), y alimentación opcional 1–2 veces por semana con mysis de 2–4 mm.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Caulastraea furcata (Dana, 1846) pertenece a la familia Merulinidae y debe su epíteto específico a su patrón de ramificación dicotómico: cada rama se divide en dos formando una «Y» inconfundible antes de que los cálices se separen. La colonia madura es un racimo compacto de 15-40 pólipos que recuerda a un candelabro, de ahí el nombre comercial de «candy cane coral» o «coral trompeta».

Pólipos. Cada cáriz mide 12-20 mm de diámetro y 20-40 mm de altura en la rama, con el tejido carnoso translúcido —marrón, verde oliva o gris— recorrido por bandas concéntricas claras que alternan con el disco oral, casi siempre verde metálico fluorescente. Los tentáculos son cortos (2-4 mm), cónicos y capitados, dispuestos en una sola fila sobre el borde del disco; no existen tentáculos largos y ondulantes tipo Euphyllia. De noche el pólipo se expande un 30-40 % y los tentáculos cubren el disco, lo que permite la captura de presas. Una particularidad diagnóstica es su capacidad de hinchar el tejido (estado vesicular) hasta sobrepasar el borde del coralito en agua rica en nutrientes disueltos; en acuario con nitrógeno bajo el pólipo se retrae y deja visible la pared septal, signo que no debe confundirse con pérdida de tejido.

Esqueleto. El coralito es flabelo-meandroide, con pared perforada (porosa) —carácter típico de Merulinidae— y septos distribuidos en 3-4 ciclos (24-36 septos) con dientes laterales finos y costas ornamentadas que se continúan entre cálices hermanos. El grosor de rama oscila entre 8 y 15 mm y la base de fijación es estrecha, lo que hace que las colonias grandes se tambaleen si no están pegadas en firme. El crecimiento se produce por fisión intracalicinal (un cáliz se divide en dos) y, de forma ocasional, por gemación extratentacular en la base de la rama.

Zooxantelas. Aloja simbiontes del clado C (Symbiodinium afines a C1/C3), con densidad menor que la de un escleractinio de aguas someras; esa menor carga simbiótica explica su tolerancia a luz moderada y su dependencia de la alimentación heterótrofa. La fluorescencia verde del disco procede de proteínas tipo GFP, que se intensifican bajo espectro azul (actínicos 420-470 nm) sin necesidad de PAR elevado.

Confusiones frecuentes. C. curvata presenta cálices más pequeños y curvados; C. tumida alcanza 25-35 mm por pólipo con cálices notablemente hinchados; C. echinulata muestra septos más exsertos. No es un Duncanopsammia axifuga (tentáculos largos y plumosos) ni un Blastomussa (cálices sésiles sin rama).

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Es una de las LPS con mayor ventana de tolerancia, lo que no significa indiferencia: su punto débil es la fluctuación brusca de alcalinidad y la luz intensa directa.

Luz. Colócala en la mitad inferior o en el sustrato; bajo LED, 40-60 % de intensidad en rampa o en zona de sombra parcial. Un ejemplar expuesto a PAR >250 durante más de dos semanas pierde la pigmentación verde del disco y muestra los septos a través del tejido retraído. El espectro azul es suficiente para mantener la fluorescencia; no requiere blancos intensos.

Flujo. Prefiere movimiento suave y alterno (bombas de oleaje con pulso lento). Una corriente laminar constante golpeando el pólipo despega el tejido del coralito por el borde y abre la puerta a infecciones bacterianas. A la vez, un flujo nulo acumula detritus entre cálices y provoca recesión en la base del racimo: el punto óptimo es aquel en que los tentáculos oscilan ligeramente sin que el moco se desprenda.

Estabilidad. Mantén KH y salinidad con dosificadores repuestos por agua de ósmosis; es más sensible a un descenso de KH de 2 dKH que a un nitrato de 20 ppm. Repón yodo solo si mides, y evita baños de agua grandes (>30 %) en colonias muy expandidas.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocación. Sitúala en el sustrato o en una roca plana de la zona baja, con la rama en vertical y el disco orientado hacia arriba o ligeramente inclinado. Deja 10-15 cm de margen libre alrededor: el pólipo se hincha y extiende tentáculos, pero su potencia nematocística es débil, por lo que no defiende territorio. Es una especie víctima en la guerra química del arrecife: mantenla separada de Galaxea, Euphyllia, Lobophyllia y Hydnophora, cuyos tentáculos de barrido la necrosan en una noche. Es compatible con zoántidos, Ricordea y otras LPS de bajo flujo. Pega siempre la base con cianoacrilato o epoxi: una colonia suelta rueda, se entierra y pierde tejido basal.

Crecimiento. Es de crecimiento lento incluso con alimentación: en condiciones óptimas produce 2-4 cálices nuevos al año por fisión intracalicinal, con una tasa de extensión radial de 3-8 mm/año. La colonia pasa de 3-4 pólipos a 20-30 en tres o cuatro años. La alimentación heterótrofa acelera la división de forma medible: ofrece 1-2 veces por semana mysis pequeños, artemia enriquecida o pellets de 1-2 mm directamente sobre cada disco, tras apagar bombas 10-15 minutos; un pólipo tarda 5-10 minutos en cerrarse sobre la presa. No necesita fitoplancton. Los fragmentos pequeños (<10 mm de tejido) crecen más despacio y son más propensos a la recesión.

Fragging. Es una de las LPS más sencillas de fragmentar por su esqueleto poroso y su alta tasa de cicatrización. Procedimiento: extrae la colonia, marca la línea de corte en el tallo de la rama —nunca sobre el disco— y corta con sierra de diamante o disco de dremel refrigerado, procurando que cada fragmento conserve al menos 1-2 mm de tejido sano por encima del corte y 3-4 pólipos para garantizar viabilidad. Deja secar el corte 30 segundos, aplica cianoacrilato en gel sobre la base esquelética (no sobre tejido) y fija el fragmento a un tapón de cerámica. Baño de yodo diluido (5-10 min) si hay exposición de tejido. Coloca los fragmentos en zona de flujo bajo y luz atenuada (PAR 50) durante 7-10 días; la cicatrización completa tarda 2-4 semanas y hasta entonces el corte permanece blanco. La supervivencia supera el 90 % con este protocolo; el fallo típico es cortar perpendicular al eje dejando el coralito abierto y sin protección de tejido, lo que desencadena recesión bacteriana («brown jelly»).

Señales de alarma. Tejido que se retrae dejando una línea blanca en la base, pólipos que no se expanden de noche o pérdida de la banda verde del disco indican KH inestable, flujo demasiado directo o depredación por Pyramidellidae y cangrejos ermitaños que roban la comida. Revisa la base del racimo: la recesión casi siempre empieza ahí.

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Caulastrea furcata es un LPS de agresividad baja. Sus nematocistos son débiles y sus tentáculos barredores, cuando los desarrolla, no superan 1-2 cm: compite mal por espacio y cede ante Galaxea (barredores de hasta 30 cm), Hydnophora (filamentos mesentéricos que necrosan un pólipo en 24-48 h), Euphyllia, Lobophyllia o Acanthastrea. El peligro real, sin embargo, es el crecimiento físico: Montiporaincrustante, Palythoa, Discosoma y Rhodactis la cubren y matan por sombreado en pocas semanas. Deja 10-15 cm de margen con cualquier coral que crezca rápido.

Peces

• Compatibles: la mayoría de peces reef-safe (Chromis, antias, Ctenochaetus, gobios, Ecsenius, Salarias). Los blénidos pastan algas sobre el esqueleto desnudo sin dañar tejido.
• Con reservas: los payasos (Amphiprion ocellaris, A. percula) pueden adoptarla como anémona sustituta y mantener los pólipos cerrados durante semanas, con atrofia progresiva. Es un problema frecuente en acuarios pequeños; separa la pareja del coral.
• Riesgo alto: Chaetodon coralívoros obligados (C. trifasciatus, C. ornatissimus, C. lunulatus) y oportunistas (C. auriga, C. semilarvatus) picotean los pólipos; Pomacanthus, Holacanthus y muchos Centropyge (entre el 30 % y el 70 % de los individuos, según especie) arrancan tejido; también balístidos, monacántidos como Oxymonacanthus longirostris, tetraodóntidos (Arothron, Canthigaster), escáridos y lábridos tipo Thalassoma, que además voltean la colonia.

Invertebrados

• Neutros: Lysmata amboinensis, L. debelius, Thor amboinensis; roban alimento pero no agreden. Linckia y Fromia son inofensivas.
• Molestos: ermitaños grandes (Dardanus, Calcinus) rompen las paredes de los cálices al transitarlos; Mithraculus sculptus y Lysmata wurdemanni pueden pellizcar tejido si hay déficit de alimento; los erizos Diadema erosionan el cenosarco a su paso.
• Depredadores: el gasterópodo Drupella cornus (1-2 cm, activo de noche) consume tejido y deja esqueleto blanco; Jenneria pustulata actúa igual. La estrella Protoreaster nodosus es coralívora. Retíralos manualmente.
• Peligro por contacto: anémonas móviles (Entacmaea, Heteractis) y corales blandos incrustantes provocan necrosis en 48-72 h si los tocan; Aiptasia y hidroides coloniales (Myrionema) irritan el borde de los pólipos.

No se ha descrito ningún nudibranquio depredador obligado de C. furcata, a diferencia de lo que ocurre con Euphyllia y Favorinus.

8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES

Blanqueamiento

Se dispara con shock lumínico (cambio de LED, paso de 150 a 300 µmol·m⁻²·s⁻¹ sin aclimatación), temperaturas sostenidas por encima de 29-30 °C, salinidad por debajo de 1.023 o alcalinidad <7 dKH. La especie es relativamente tolerante y recupera zooxantelas en 4-8 semanas si se mantiene a 50-80 µmol·m⁻²·s⁻¹ y se alimenta 2-3 veces por semana con mysis o pellets de 1-2 mm. Si el tejido blanco

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

Caulastrea furcata se reconoce por su esqueleto faceloide —cada pólipo en su propio coralito, unido por un tallo común que se bifurca— y por el dibujo alterno de bandas claras y oscuras sobre el disco oral: de ahí «bastón de caramelo». Un ejemplar sano muestra pólipos de 20-30 mm de diámetro expandidos, con el reborde del tejido cubriendo el borde del coralito. Si ves la línea del esqueleto desnuda, algo se ha desviado.

• Alimentación dirigida, no dependencia de la luz. La especie captura presas con agresividad al apagar las luces. Suministra 3-4 mysis (5-8 mm) por pólipo, 2-3 veces por semana, con pipeta y circulación en pausa 5 minutos. Un pólipo que tarda más de 30 segundos en cerrarse sobre la presa suele estar aclimatándose o acusar una alcalinidad inestable.
• Estabilidad de dKH antes que nivel absoluto. Tolera 7,5-10 dKH, pero no una variación superior a 0,5 dKH en 24 h: el tejido basal se retrae, deja esqueleto expuesto y abre la puerta a algas filamentosas y a la enfermedad del tejido marrón.
• Prohibido el flujo directo. Procede de lagunas someras y arrecifes planos con movimiento moderado. Una bomba que azota el pólipo lo obliga a cerrarse de forma crónica y el tejido se erosiona desde el borde inferior. Dirige la corriente a una roca o al cristal para generar flujo reflejado de 5-10 cm/s.
• Poca luz, sin castigo. 50-100 µmol/m²/s de PAR bastan; por encima de 200 se blanquea y pierde el contraste de bandas. Colocación ideal: tercio inferior, sobre sustrato, con el tallo semienterrado en arena gruesa para imitar el asentamiento natural.
• Distancia de seguridad y defensa. Desarrolla tentáculos barrenderos cortos (2-4 cm) que queman a zoántidos y a SPS vecinos; mantén 6-8 cm respecto a Acropora, Montipora y Euphyllia. A su vez es víctima de Lobophyllia y Galaxea.
• Fragmentación en el tallo. Corta con sierra de diamante 5-8 mm por debajo del coralito, con dos o tres pólipos por fragmento. Baño de yodo (10 ml/l, 10 min) y vuelta a la misma posición de luz y flujo. La gemación lateral produce 2-6 pólipos nuevos al año en condiciones óptimas.
• Patología: tejido marrón (ciliados). Ante una masa gelatinosa parda, aspira con manguera, corta 5 mm por debajo del tejido afectado y repite el baño de yodo. No manipules otro ejemplar con la misma herramienta sin desinfectar: la transmisión es real.
• Estrés y expulsión de pólipos. Un shock térmico (> 29 °C) o salino puede provocar polyp bailout: el pólipo abandona el esqueleto y flota. Recupéralo, fíjalo con cianoacrilato gel sobre un fragmento de roca y mantenlo en zona de bajo flujo.
• Compañeros a evitar. Cangrejos ermitaños y camarones limpiadores roban la comida de los pólipos; los ángeles enanos (Centropyge) picotean el tejido blando. Caracoles y ofiuros no suponen riesgo.
• Limpieza entre coralitos. El espacio interpolar acumula detritos; una jeringa con agua del acuario y un cepillo suave una vez al mes evitan que Valonia o Dictyota cubran el tallo.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

12. ✅ CONCLUSIÓN

Caulastrea furcata es un LPS excelente para iniciarse en la alimentación dirigida y en la fragmentación, pero no es «indestructible»: su punto débil es la inestabilidad química del agua, no la falta de luz. Un tanque con dKH oscilante, flujo directo sobre los pólipos o temperatura por encima de 28 °C en verano acabará mostrando recesión basal, algas entre coralitos y, en el peor caso, tejido marrón.

La rutina que funciona es sencilla y muy específica: 50-100 µmol/m²/s de PAR en el tercio inferior, flujo reflejado suave, 35 g/l de salinidad, dKH 8 ± 0,3, nitratos entre 5 y 15 mg/l y alimentación de mysis por pólipo dos o tres veces por semana. Con esos valores, la gemación lateral compensa cualquier pérdida y en dos o tres años tendrás una colonia densa y frags para compartir. Revisa el tejido —no solo el color— una vez por semana con lupa: es el mejor indicador temprano de que algo se está moviendo en la química del acuario.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Qué intensidad lumínica y qué régimen de corriente requiere Caulastrea furcata?

Es un LPS de arrecife protegido: en su hábitat vive en lagunas y laderas someras, en pendientes con irradiancia moderada. En acuario, el rango óptimo se sitúa entre 75 y 150 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR), con fotoperiodo de 10–12 h; por encima de 200 µmol·m⁻²·s⁻¹ aparece retracción diurna, palidecimiento del cenosarco y microbleaching en los pólipos más expuestos. Para la corriente, exige flujo indirecto de 5–15 cm·s⁻¹ que mueva suavemente los tentáculos expandidos: un chorro directo de bomba erosiona el tejido en la base de los coralitos y provoca recesión del cenosarco. Colócala en la mitad inferior del acuario o en zonas de sombra parcial de roca, nunca bajo la descarga directa de una bomba.

¿Cómo distingo Caulastrea furcata de C. curvata y C. echinulata?

La clave está en la arquitectura colonial y la morfología septal. C. furcata forma colonias fáceloides con coralitos de 8–15 mm de diámetro que se dividen por gemación extratentacular y se bifurcan en ramas («furcata» alude a esa horquilla), con 24–36 septos dispuestos en tres ciclos. C. curvata construye colonias meandroides en forma de cúpula, con coralitos grandes (hasta 20 mm), curvados y muy carnosos. C. echinulata muestra septos exsertos y puntiagudos que le dan un aspecto erizado característico. La mayor parte del comercio de «candy cane» o «trumpet» corresponde a C. furcata; desconfía de etiquetas genéricas si necesitas una identificación precisa.

¿Es necesario alimentarla? ¿Con qué y con qué frecuencia?

Cada coralito posee un único pólipo con una sola boca, lo que limita el tamaño de presa aprovechable: trozos de 3–5 mm son el máximo práctico. Ofrece mysis, krill troceado o pellets de 1–2 mm dos o tres veces por semana, con alimentación dirigida mediante pipeta o campana. La respuesta es medible: las colonias alimentadas regularmente producen 2–4 nuevos coralitos al año, frente a una o ninguna en ejemplares mantenidos solo con fotosíntesis. Alimenta 30 minutos después de apagar la iluminación, cuando los tentáculos están extendidos. Vigila a Lysmata, peces ángel y cangrejos: roban la comida del pólipo y pueden desgarrar el tejido. No sobrealimentes: los restos elevan el nitrato y el fosfato.

¿Qué parámetros de agua tolera y cuáles son críticos?

Temperatura 24–26 °C (máximo puntual 28 °C), salinidad 35 ppt, calcio 400–450 mg·L⁻¹, magnesio 1250–1350 mg·L⁻¹, kH 7–9 dKH, nitrato 5–15 mg·L⁻¹ y fosfato 0,03–0,10 mg·L⁻¹. El parámetro crítico no es el valor absoluto sino la estabilidad de la alcalinidad: descensos superiores a 0,5 dKH en 24 h provocan recesión del tejido basal, el fallo más frecuente en esta especie. Mantén el kH con dosificador o reactor y evita el uso continuado de carbón activo en exceso, que se asocia a pérdida de coloración. Tolera niveles de nutrientes moderados-altos, por lo que no requiere sistemas ultrapobres, que la debilitan.

¿Cómo se fragmenta correctamente y qué esperar de la propagación?

Su crecimiento fáceloide la convierte en una de las especies más sencillas de propagar: corta en la bifurcación con alicate de hueso o disco de diamante, dejando siempre 2–3 coralitos por fragmento para garantizar reservas energéticas. Desinfecta en solución de yodo (10–20 ml·L⁻¹ durante 5–10 min), fija con cianoacrilato en gel o epoxy y coloca los fragmentos en zona de luz y corriente bajas durante 2–3 semanas. La cicatrización del corte se completa en 2–4 semanas y la emisión de nuevos coralitos comienza a las 4–8 semanas. Evita cortar durante las dos semanas posteriores a un cambio de iluminación o a una subida de temperatura.

¿Por qué se retrae el tejido o aparecen masas pardas gelatinosas?

La recesión del cenosarco suele ser multifactorial: oscilaciones de kH, corriente directa, temperatura sostenida por encima de 28 °C, lesiones mecánicas al manipular la colonia o exceso de materia orgánica disuelta. Si aparece una masa parda gelatinosa que avanza de coralito en coralito, se trata de una infección por ciliados («brown jelly»): aspira el material con manguera, baña en yodo y elimina físicamente los coralitos afectados, ya que el avance es rápido (24–72 h). El «polyp bailout» —desprendimiento de pólipos completos— responde a choques osmóticos o térmicos agudos. En ambos casos, corrige primero el parámetro desencadenante antes de tratar.

📚 REFERENCIAS

• Dana, J.D. (1846). Zoophytes. United States Exploring Expedition during the Years 1838–1842, Vol. VII. Lea & Blanchard, Philadelphia.
• Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, Vol. 2. Australian Institute of Marine Science, Townsville.
• WoRMS Editorial Board (2024). Caulastrea furcata Dana, 1846. World Register of Marine Species. https://www.marinespecies.org/aphia.php?p=taxdetails&id=289569
• Borneman, E.H. (2001). Aquarium Corals: Selection, Husbandry and Natural History. TFH Publications, Neptune City.
• Sprung, J. & Delbeek, J.C. (1997). The Reef Aquarium, Vol. 2: Corals and Invertebrates. Ricordea Publishing, Coconut Grove.
• Calfo, A.R. & Fenner, R. (2001). Reef Invertebrates: An Essential Guide to Selection, Care and Compatibility. Reading Trees, Monroeville.

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