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Caulastrea curvata

Caulastrea curvata
Autor: Roberto Parra Jiménez 🎓 Biólogo Marino – Universidad de Hawaii (UH Mānoa)
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia

📋 ÍNDICE DEL ARTÍCULO

  • 1. 🌏 INTRODUCCIÓN
  • 2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
  • 3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
  • 4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
  • 5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
  • 6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
  • 7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
  • 10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
  • 11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
  • 12. ✅ CONCLUSIÓN

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Caulastraea curvata es un coral pétreo de esqueleto faceloide que en el comercio se vende casi siempre bajo la etiqueta genérica de «candy cane», mezclado e incluso confundido con C. furcata. La diferencia es diagnóstica y conviene saberla antes de comprar: en C. curvata cada cálices mide solo 6-11 mm de diámetro oral (frente a 12-20 mm en C. furcata), la sección del coralito es marcadamente ovalada y el tubo calicinal se curva y adelgaza en la base, de donde viene el epíteto curvata. Los septos son más exertos, finos y numerosos (24-36 en tres ciclos, con dentículos laterales agudos), y la colonia resulta más compacta, arracimada e irregular, con yemas extratentaculares que surgen del costado del pólipo madre a pocos milímetros del disco oral.

La coloración es más sobria que en su pariente: marrón, beige o gris-verdoso con el disco oral pálido (crema, verde claro o blanco sucio) y tentáculos translúcidos; los morfos «candy cane» de bandas verdes y marrones nítidas corresponden casi siempre a otras especies del género. Esa sobriedad cromática no debe llevar a descartarla: es un coral de comportamiento trófico excelente, con respuesta de captura inmediata y una de las tasas de gemación más altas entre los LPS de mantenimiento sencillo (1-3 pólipos nuevos al mes con alimentación semanal en un sistema estable).

Su éxito en acuario se explica por la arquitectura faceloide: cada pólipo tiene su propio esqueleto y su propia conexión tisular laxa, de modo que la colonia tolera ser colocada sobre sustrato irregular, fragmentada con sierra de diamante sin grandes riesgos de necrosis y recolocada sin necesidad de una base plana y estable. Tolera además luz baja (50-150 µmol·m⁻²·s⁻¹ de PAR) y niveles de nutrientes moderados-altos (NO₃ 5-15 mg/L, PO₄ 0,05-0,12 mg/L) sin perder color, lo que la convierte en una pieza útil en acuarios de transición y en sistemas con peces que ensucian el agua.

Las advertencias concretas: los espacios intercalicinales actúan como trampa de sedimento, y la acumulación persistente de detritus entre coralitos provoca recesión tisular localizada; y por la noche extiende tentáculos barredores de 3-6 cm que dañan tejido de Acropora, Montipora o zoantídeos situados a esa distancia.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

La especie fue descrita por Wijsman-Best en 1972 a partir de material indonésico, dentro de la entonces familia Faviidae. Los análisis filogenéticos moleculares de Budd y colaboradores (2012) desmontaron Faviidae y reubicaron el género en Merulinidae, donde permanece. Detalle nomenclatural relevante: la grafía válida del género es Caulastraea (Dana, 1846); «Caulastrea», omnipresente en el comercio y en la literatura de acuariofilia, es una variante ortográfica no aceptada por el ICZN pero de uso universal.

Nivel taxonómico Clasificación
Reino Animalia
Filo Cnidaria
Clase Anthozoa
Subclase Hexacorallia
Orden Scleractinia
Familia Merulinidae (antes Faviidae)
Género Caulastraea Dana, 1846
Especie Caulastraea curvata Wijsman-Best, 1972
Sinónimo comercial «Caulastrea candy cane» (uso ambiguo, compartido con C. furcata)
Forma colonial Faceloide (dendroide), yemas extratentaculares
Cálices 6-11 mm de diámetro, ovalados, tubo curvo
Septos 24-36 en 3 ciclos, exertos, dentículos agudos
Esqueleto Aragonito, costas granulosas, columela trabecular poco desarrollada
Simbiontes Zooxantelas (Symbiodiniaceae), herencia materna

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Distribución Indo-Pacífica central: Indonesia (Célebes, Molucas, Bali, Raja Ampat), Filipinas, Papúa Nueva Guinea, islas Salomón y Gran Barrera de Coral, con registros menos densos en el Indo-Pacífico occidental. No es un coral de arrecife frontal batido: aparece en fondos protegidos, típicamente en lagunas someras, llanuras arrecifales internas y zonas de back-reef con influencia terrígena, desde la superficie hasta unos 20 m, con máxima abundancia entre 2 y 8 m.

El microhábitat es muy característico: colonias fijadas a cascote y coral muerto, con frecuencia en superficies laterales, bajo cornisas o entre ramas de Porites y Seriatopora muertos, en sustratos limosos o arenosos. Tolera turbidez y sedimentación moderada, condiciones en las que otras especies de LPS se retraen de forma crónica; esa tolerancia explica su rusticidad en cautividad y también su sensibilidad al «exceso de limpieza»: en sistemas con ULNS (NO₃ < 1 mg/L) y skimming agresivo, la colonia palidece y pierde tejido intercalicinal.

Parámetros del hábitat natural que conviene replicar: temperatura 26-29 °C (en acuario, 24-27 °C es más seguro y estable), salinidad 34-35, alcalinidad 7-9 dKH, Ca 420-440 mg/L, Mg 1300-1350 mg/L, PAR in situ estimado en 50-200 µmol·m⁻²·s⁻¹ según profundidad y turbidez, y velocidad de corriente inferior a 10 cm/s, con movimiento oscilante más que laminar. En el arrecife ocupa nichos de baja irradiancia y compite por espacio sobre todo con algas filamentosas y zoantídeos, no con corales ramificados de crecimiento rápido: de ahí que en el acuario rinda mejor en la mitad inferior de la roca, sobre la arena o en repisas sombreadas, nunca bajo una lámpara de 300 µmol·m⁻²·s⁻¹ mantenida de forma constante.

Al ser una especie de aguas someras y ricas en plancton, su biología trófica está orientada a la captura activa: los pólipos abren tentáculos al atardecer y responden a estímulos químicos en segundos. En la práctica, una alimentación semanal con mysis, krill troceado o pellet blando de 1-2 mm por pólipo duplica la tasa de gemación respecto a colonias no alimentadas y compensa la baja producción autótrofa de los sistemas con iluminación moderada.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Caulastrea curvata (Dana, 1846) es la especie flabelo-meandroide del género: la colonia arranca de un coralito único y crece por división intratentacular del disco oral, de forma que los coralitos hijos comparten pared y quedan alineados en series meandroidas sobre una lámina aplanada. Ese patrón la separa de Caulastrea furcata, de coralitos cilíndricos y phaceloides unidos por estolones delgados: en C. curvata el coralito mide 8–14 mm en su eje mayor, la pared septal tiene 2–4 mm de grosor y apenas se eleva 5–10 mm sobre la placa basal, por lo que la colonia gana superficie horizontal y no altura. El esqueleto es de aragonito poroso y relativamente ligero, con septos en dos o tres ciclos: los de primer orden alcanzan la columela trabecular y muestran 8–12 dientes finos por septo, mientras las costas prolongan esas crestas sobre la pared externa y confieren a la colonia el estriado radial que la hace inconfundible incluso con los pólipos retraídos.

El pólipo es carnoso y translúcido, con disco oral de color crema, verde pálido o gris azulado y paredes en tonos marrón, verde oliva o gris. Los tentáculos son cortos —3–5 mm—, cónicos, en un solo ciclo de 30–45 unidades y sin esférulas terminales apreciables, lo que explica que la especie no capture presas grandes ni desarrolle tentáculos barredores largos. En los coralitos alargados el disco presenta varias bocas en hilera; cada boca funcional mantiene su propio aparato digestivo y puede alimentarse de forma independiente, un dato relevante porque al fragmentar hay que garantizar al menos una boca completa por pieza. La expansión máxima se produce al apagar las luces y tras la detección química de alimento en el agua: los tentáculos se adhieren con fuerza a mysis y a pellets de LPS de 1–2 mm, y el pólipo retrae la presa en 60–120 segundos.

Las zooxantelas, del grupo Cladocopium (clado C), se alojan de forma densa en el tejido del disco y de la pared, y aportan una fracción importante del carbono, pero la especie es un capturador activo de zooplancton y responde mal a regímenes exclusivamente fotosintéticos: colonias mantenidas sin alimentación directa durante meses adelgazan el tejido hasta dejar visible la línea septal. La coloración depende más de la densidad de simbiontes y del nivel de nitrógeno disponible que de la luz, de modo que un ejemplar pálido en un sistema con NO₃ indetectable suele recuperar el verde al subir nutrientes, no al subir intensidad lumínica.

Caulastrea curvata
Caulastrea curvata · Foto: (c) Debra Baker, some rights reserved (CC BY) (CC-BY)

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Es un LPS robusto frente a oscilaciones térmicas y de salinidad, pero muy sensible a la inestabilidad del carbonato cálcico: al depositar esqueleto de forma marginal y continua, cualquier fluctuación de KH se traduce en bandas de detención del crecimiento visibles en la pared del coralito.

Parámetro Rango objetivo Observaciones para C. curvata
Temperatura 24–27 °C Tolera 23–28 °C; por encima de 29 °C se dispara la pérdida de simbiontes y la recesión del tejido basal.
Salinidad 34–35 psu (1.025–1.026) Mantener constante; la evaporación sin reposición afecta más a esta especie que a otros LPS.
pH 8,1–8,4 Evitar descensos por debajo de 7,9 en sistemas con reactor de calcio mal ajustado.
KH (alcalinidad) 7,5–9 dKH (2,7–3,2 meq/L) Máximo 0,5 dKH de variación diaria; es el parámetro crítico para el depósito septal.
Calcio 400–450 mg/L Por debajo de 380 mg/L el crecimiento marginal se detiene de forma visible.
Magnesio 1250–1350 mg/L Necesario para mantener la relación iónica Ca/KH; no bajarlo de 1200 mg/L.
Nitratos (NO₃) 2–10 mg/L Los sistemas ultra-bajos provocan palidez y recesión; por encima de 20 mg/L se cubren las costas de algas.
Fosfatos (PO₄) 0,03–0,10 mg/L Por encima de 0,2 mg/L aparecen dinoflagelados y necrosis en los valles meandroidos.
Luz 75–150 PAR Baja-media; aclimatar 3–4 semanas si procede de >200 PAR. El exceso produce retracción diurna permanente.
Flujo Bajo-medio, indirecto (5–10 cm/s) Aleatorio y nunca laminar directo; el chorro directo lacera el tejido contra los dientes septales.

El punto de fallo habitual no es la intensidad lumínica sino la combinación de KH inestable y flujo insuficiente: en los canales entre bocas se acumula detrito que no se puede retirar con jeringa, y esa materia orgánica retenida es el origen de las necrosis marrones de la pared. Con 10–15 recambios volumétricos por hora, difusores de ranura y corriente indirecta, los valles se mantienen limpios sin dañar el pólipo. La alimentación semanal con mysis o pellets de 1–2 mm, dos veces por semana y por boca, mantiene el crecimiento marginal activo en sistemas con NO₃ en el rango bajo de la tabla.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

La colonia es plana y pesada, y necesita una superficie rígida y horizontal: la cama de arena solo es aceptable si el flujo no arrastra sedimento sobre el disco, porque el enterramiento parcial de los valles provoca necrosis en pocos días. Se fija con cianoacrilato en gel sobre roca plana, placa de cerámica o un fragmento de esqueleto muerto; la masilla epóxica es útil para nivelar pero debe aplicarse por debajo del tejido, nunca en contacto con él. Distancia mínima de 5–8 cm respecto a Euphyllia, Galaxea y Favia: los tentáculos de C. curvata son cortos, pero el coral pierde cualquier combate y su tejido flabelado queda necrosado en la zona de contacto. Evitar también la sombra de roca viva alta, que en esta especie produce colonias de crecimiento asimétrico con la placa basal desnuda en la zona oscura.

El crecimiento es marginal y lento: 1–3 mm por mes en el borde de la placa, con aparición de nuevas bocas cada 4–8 semanas en condiciones óptimas. Un fragmento de tres coralitos tarda entre 12 y 18 meses en formar una placa de 6–8 cm. La especie no ramifica, de modo que el aumento de tamaño se traduce en una lámina frágil en los bordes, que se quiebra con el manejo.

Para fragmentar, usar sierra de disco diamantado con refrigeración o cortapernos de hueso, nunca tijeras ni alicates de corte: el esqueleto poroso se astilla y el tejido carnoso se desgarra. El corte debe ir entre bocas, siguiendo el valle septal, dejando 2–3 mm de esqueleto alrededor del tejido y al menos una boca completa y un trozo de pared por pieza; cortar transversalmente un disco oral es la primera causa de infección post-fragmentación. Inmediatamente después, baño de yodo (Lugol a 10 ml/L durante 8–10 minutos) y cuarentena de 5–7 días en zona de luz baja y flujo suave, sin alimentar hasta que el tejido se adhiera al nuevo soporte. La cicatrización completa lleva 2–3 semanas; el fragmento se pega a la roca cuando el borde de tejido ya ha avanzado sobre el corte, no antes. Manipular siempre con guantes y por el esqueleto: la presión de los dedos sobre la placa basal desprende el cenénquima con facilidad.

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Caulastrea curvata (Wijsman-Best, 1972; familia Merulinidae, antes Faviidae) es un LPS de defensa nematocística débil: no emite tentáculos barredores largos, solo filamentos marginales de 1-5 cm que aparecen 1-3 horas después del apagado. Su defensa real es la retracción rápida del pólipo y un esqueleto de coralitos troncocónicos y estrechos en la base. Debe planificarse, por tanto, como coral receptor y no como agresor.

Distancias mínimas. Deje 8-10 cm frente a Galaxea, Euphyllia, Lobophyllia, Hydnophora, Acanthastrea y Catalaphyllia; 5 cm frente a Favia y Favites. Con corales blandos (Sarcophyton, Sinularia, Briareum) el problema es alelopático: los terpenos disueltos frenan la expansión del pólipo y provocan recesión basal. Con carbón activo (100-150 g/500 L, cambiado cada 3-4 semanas) el efecto se reduce, pero no desaparece.

Peces de riesgo alto. Los caetodóntidos coralívoros obligados (Chaetodon lunula, C. collare, C. trifasciatus, C. ornatissimus) devoran el tejido en 48-72 horas. En escarídeos y balístidos (Arothron, Diodon) el daño es mecánico: trituran el coralito. Oxymonacanthus longirostris y Paraluteres prionurus picotean los pólipos de forma sostenida. Entre los ángeles, Pomacanthus imperator y varios Centropyge (C. eibli, C. bispinosa, C. flavissima) suelen ignorarlo en acuarios con carga alta de algas, pero un ejemplar recién aclimatado ataca precisamente los pólipos carnosos de Caulastrea.

Peces compatibles. Gobios, blénidos (Salarias, Ecsenius), pseudocromos, Gramma, antias, cirujanos, Amphiprion (puede rozar la colonia si la elige como sustituto de anémona, sin daño permanente), lábridos pequeños y caballitos de mar en sistemas de flujo suave. Evite Thalassoma y Coris grandes: vuelcan las colonias al buscar invertebrados.

Invertebrados problemáticos. Rhynchocinetes durbanensis consume tejido de LPS de forma directa. Los caracoles coralívoros Coralliophila y Drupella se sitúan sobre la colonia de noche y dejan surcos de esqueleto desnudo: retírelos con pinzas. Hermodice carunculata y otros

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

Empieza por confirmar la especie. La ficha corresponde a Caulastraea curvata (Wijsman-Best, 1976), citada habitualmente en el comercio como Caulastrea curvata. Sus coralitos son faceloides, tubulares, de 8–14 mm de diámetro, con septos en tres órdenes y dientes septales gruesos; a diferencia de C. furcata, los coralitos se curvan y se fusionan lateralmente formando series en herradura, y la ramificación es menos limpia, con paredes que se engrosan con la edad. Esta anatomía tiene una consecuencia práctica inmediata: el esqueleto es macizo y las zonas de fusión son las más frágiles. Al fragmentar, corta con tenazas de hueso 5 mm por debajo del tejido vivo y nunca por la línea de fusión entre coralitos, donde el cenosarco es más fino y la infección bacteriana posterior es más probable.

Luz: el error más frecuente. En acuario rinde mejor entre 50 y 150 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR), con fotoperiodo de 8–10 horas y espectro de 12.000–14.000 K. Por encima de 200–250 µmol·m⁻²·s⁻¹ el disco oral se aclara y las bandas verde‑teal o crema se difuminan en 2–3 semanas; no es una coloración reversible rápida, y la colonia tarda meses en recuperar el patrón. Si sospechas exceso de luz, mueve la pieza a la semisombra de una roca durante dos semanas antes de decidir la ubicación definitiva.

Flujo: el equilibrio que casi nadie acierta. Necesita 10–15 volúmenes/hora, indirecto y alterno. El chorro laminar directo erosiona el cenosarco que une los coralitos —aparecen surcos blanquecinos entre pólipos—, pero un flujo insuficiente acumula detritos en las concavidades de las series curvadas, y esos acúmulos generan bolsas de tejido necrótico que avanzan hacia la base. Con una pipeta de 10 ml, sopla suavemente sobre la colonia dos veces por semana; verás salir sedimento que de otro modo se queda ahí durante meses.

Alimentación dirigida, no opcional. Los tentáculos se despliegan entre 30 y 60 minutos después de apagar la iluminación. Ofrece mysis o krill de 3–5 mm, una o dos piezas por coralito, tres veces por semana, con bombas detenidas 15 minutos. La respuesta en crecimiento es notable: colonias alimentadas duplican su número de coralitos en 6–9 meses frente a 12–15 sin alimentación dirigida. Los Centropyge, los camarones limpiadores y las Lysmata roban la comida del pólipo; usa una campana de plástico cortada o alimenta con la colonia ya retraída y la pipeta pegada al disco oral.

  • KH, la causa número uno de recesión basal: mantén 7,5–8,5 dKH con oscilaciones inferiores a 0,3 dKH/día. Un descenso de 1,5 dKH en 24 horas provoca retracción del cenosarco en 48–72 horas.
  • Ca 420–450 ppm, Mg 1300–1350 ppm, NO₃ 2–10 ppm, PO₄ 0,03–0,10 ppm. Con NO₃ por debajo de 1 ppm la colonia palidece aunque esté bien iluminada.
  • Distancia de seguridad: 12 cm. Emite tentáculos barredores nocturnos de 10–15 cm que dañan Acropora, Blastomussa y colonias de Zoanthus situadas a menos de ese radio.
  • Necrosis marrón: ante una placa marrón gelatinosa que avanza un coralito por día, extrae la colonia, baño de yodo (5–10 min, dosis del fabricante) y elimina el tejido afectado con aire comprimido y bisturí, cortando 3 mm en esqueleto sano.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

Los meses indicados corresponden al hemisferio norte; en el sur, desplaza seis meses. La lógica estacional no es la del arrecife natural, sino la de la estabilidad del sistema cerrado: temperatura, evaporación y disponibilidad de alimento congelado.

Estación Parámetros y equipo Alimentación Mantenimiento y observaciones
Invierno
(dic–feb)
Calefactor con termostato redundante; verificar 24–26 °C. Comprobar Mg (consumo lento pero constante) cada 15 días. Salinidad 35 g/L, dens. 1,025–1,026. 3 tomas semanales de mysis; aprovechar para subir a 4 si la colonia muestra tentáculos vigorosos. Menor evaporación: revisa que el relleno de ósmosis no sature y diluya la salinidad. Mes óptimo para fragmentar tras 6 semanas de estabilidad de KH.
Primavera
(mar–may)
Medir KH a diario durante dos semanas; ajustar dosificación de balling. Revisar bombas de movimiento y limpiarlas de biofilm. 3 tomas semanales. Alternar mysis con pellets LPS de 2 mm para aportar lípidos. Ventana principal de crecimiento: documenta con foto frontal para medir el avance del cenosarco entre coralitos. Soplado con pipeta 2×/semana.
Verano
(jun–ago)
Crítico: ningún pico por encima de 28 °C. Ventilador o enfriador; subida de temperatura + alcalinidad alta es la combinación que más colonias de C. curvata mata en 72 h. Reducir a 2 tomas semanales si la temperatura es inestable; el pólipo digiere peor y la comida no consumida contamina. Evaporación alta: vigilar salinidad cada 48 h. No fragmentar. Revisar que la colonia no caiga sobre arena (los coralitos curvados se entierran y necrosan por la base).
Otoño
(sep–nov)
Recuperar rutina de KH y Ca; revisar Mg. Limpieza de skimmer y cambio de carbón activo si lo usas. Volver a 3 tomas semanales; es la época de mayor respuesta de tentáculos por noche. Segunda ventana de fragmentación. Inspección de la base: cualquier zona blanquecina sin pólipos debe soplarse y, si avanza, tratarse con baño de yodo.

12. ✅ CONCLUSIÓN

Caulastraea curvata es un LPS de dificultad baja‑media que falla casi siempre por dos motivos muy concretos y muy evitables: inestabilidad del KH y acumulación de detritos en la concavidad de sus coralitos curvados. No es un coral de parámetros extremos ni de iluminación intensa; es un coral de constancia. Con 50–150 µmol·m⁻²·s⁻¹, un flujo indirecto de 10–15 vol/h, KH anclado en 7,5–8,5 dKH y tres tomas semanales de mysis, una colonia de seis pólipos puede superar los veinte en un año y medio, manteniendo el patrón verde‑teal o crema que la hace reconocible.

Respeta los 12 cm de distancia frente a corales de pólipo pequeño, fíjala al sustrato con epoxi —nunca la dejes suelta sobre arena— y aprovecha las ventanas de primavera y otoño para fragmentar. Si detectas recesión basal, revisa primero la alcalinidad de las últimas 72 horas antes de tocar iluminación o flujo: en nueve de cada diez casos el problema estaba ahí, no en la luz. Un ejemplar estable y bien alimentado es, además, uno de los LPS más agradecidos para un acuario de arrecife mixto de nivel avanzado.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Cómo distingo Caulastraea curvata de C. furcata y C. echinulata?

C. curvata presenta cálices redondeados de 8–12 mm de diámetro, con paredes (theca) poco exertas y no acampanadas; los coralitos quedan en contacto directo formando colonias compactas, con septos en tres ciclos y los de los dos primeros subiguales. C. furcata muestra coralitos netamente troncocónicos, de 12–20 mm, con paredes flabeladas y costas pronunciadas, y una colonia más laxa y ramificada. C. echinulata se reconoce por sus septos exertos y espinosos, que dan al cáliz un aspecto erizado. En el comercio, curvata suele llegar como «candy cane de pólipo carnoso»: el tejido cubre más esqueleto y el disco oral muestra centros pálidos o amarillentos frente al verde, marrón o azulado de las paredes.

¿Qué parámetros químicos exactos requiere?

Temperatura 24–26 °C (tolera puntas de 22–28 °C), salinidad 35 ‰ (1.025–1.026), alcalinidad 7–9 dKH con oscilación máxima de 0,3 dKH/día, calcio 420–450 mg/L, magnesio 1300–1350 mg/L y potasio 380–420 mg/L. Nitrato 2–10 mg/L y fosfato 0,03–0,08 mg/L. Es especialmente sensible al descenso de potasio (pérdida de pigmentación verde) y a los saltos de alcalinidad superiores a 1 dKH, que provocan recesión del tejido en la base del coralito, signo que precede a infecciones bacterianas. Mantén también yodo detectable de forma discreta (0,03–0,06 mg/L) si haces skimming intenso.

¿Qué iluminación y corriente necesita?

PAR de 50–150 µmol/m²/s; aclimata desde 50 durante tres semanas. Por encima de 200 µmol/m²/s el disco oral se contrae y aparecen zonas blanqueadas en el ápice del coralito; por debajo de 30 µmol/m²/s la colonia se vuelve marrón y pierde el crecimiento. Corriente indirecta y turbulenta de 5–10 cm/s, suficiente para mover el tejido sin plegarlo. Evita el flujo laminar directo (erosión del cenosarco) y el lecho de arena: la sedimentación entre coralitos es la primera causa de necrosis focal en esta especie, propia de lagunas y arrecifes interiores con agua cargada de partículas.

¿Cómo y con qué la alimento?

Es heterótrofa facultativa con zooxantelas de los géneros Cladocopium y Durusdinium. Extiende tentáculos 30–60 minutos después del apagado o al detectar materia orgánica. Ofrece presas de 1–5 mm: mysis, krill troceado, camarón, calamar y pellets de 1–2 mm; una o dos piezas por pólipo, dos a tres veces por semana. La alimentación por presa incrementa la tasa de gemación, pero el exceso provoca regurgitación y eleva el fosfato. No es un coral de captura pasiva: cada tentáculo debe contactar la presa para que se produzca la respuesta de captura y el transporte al estomodeo.

¿Es agresiva con otros corales?

Sí. Emite tentáculos barredores de 5–10 cm que se despliegan entre una y dos horas tras el apagado, y también filamentos mesentéricos sobre el esqueleto vecino. Deja 10–15 cm de separación respecto a otros LPS y no la coloques a sotavento de Euphyllia o Lobophyllia, que la superan en alcance. Su crecimiento es por gemación extratentacular desde la pared del coralito: en condiciones óptimas añade un pólipo cada 1–3 meses, de modo que el espaciado debe calcularse a un año vista, no a la talla de compra.

¿Cómo se fragmenta y qué riesgos implica?

Corta con cizalla de esqueleto o sierra de disco en la unión entre coralitos, dejando al menos un coralito completo por fragmento; el esqueleto es blando para ser un pétreo y se astilla con facilidad. Desinfecta con baño de yodo (12–15 mg/L, 10 minutos) y deja curar dos a tres semanas con corriente moderada. Es uno de los LPS más propensos a la «gelatina parda» (infección por ciliados) tras un corte: retira el tejido necrótico con pipeta y aísla el fragmento. Revisa también la presencia de platelmintos y de incrustaciones de briozoos en la base.

📚 REFERENCIAS

  • WoRMS Editorial Board. Caulastraea curvata (Dana, 1846). World Register of Marine Species. https://www.marinespecies.org
  • Dana, J.D. (1846). Zoophytes. United States Exploring Expedition during the Years 1838–1842, vol. 7. Lea and Blanchard, Filadelfia.
  • Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, vol. 2. Australian Institute of Marine Science, Townsville.
  • Huang, D., Benzoni, F., Fukami, H., Knowlton, N., Smith, N.D. & Budd, A.F. (2014). Taxonomic classification of the reef coral families Merulinidae, Montastraeidae and Diploastraeidae (Cnidaria: Anthozoa: Scleractinia). Zoological Journal of the Linnean Society, 171: 277–355.
  • Houlbrèque, F. & Ferrier-Pagès, C. (2009). Heterotrophy in tropical scleractinian corals. Biological Reviews, 84: 1–17.
  • Borneman, E.H. (2001). Aquarium Corals: Selection, Husbandry and Natural History. T.F.H. Publications, Neptune City.
Roberto Parra Jiménez 🎓 Biólogo Marino – Universidad de Hawaii (UH Mānoa)
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia

© 2026 Roberto Parra Jiménez – Biólogo Marino (UH Mānoa). Todos los derechos reservados.

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