Blastomussa wellsi

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Blastomussa wellsi es un escleractinio colonial zooxantelado de morfología subplocoide a faceloide: sus coralitos, de 8–14 mm de diámetro, aparecen unidos en la base por un cenosarco carnoso y translúcido que se extiende sobre el esqueleto y le confiere ese aspecto de «pólipos flotando sobre una membrana» que lo hace inconfundible. Cada pólipo muestra una docena o más de septos gruesos, con dientes prominentes y lóbulos paliformes muy marcados, que dibujan el patrón radial en «rueda de carro» visible incluso con los pólipos retraídos. Las colonias en acuario rara vez superan los 15–20 cm, aunque en el arrecife se han registrado ejemplares de más de 30 cm de extensión.

La coloración es extremadamente variable y no depende del morfoesqueleto: van desde el rojo vino y el burdeos hasta el verde menta, turquesa, violeta o naranja, frecuentemente con el disco oral en tono contrastante (verde fluorescente sobre tejido rojo, por ejemplo). Esa variabilidad cromática, junto con su tolerance a condiciones de iluminación pobres, lo ha convertido en uno de los LPS más demandados del comercio, donde circula bajo nombres como «Blasto wellsi», «pineapple coral» o «meat coral».

El error de identificación más habitual es confundirlo con Blastomussa merleti, especie de pólipos mucho menores (3–6 mm), coralitos más exertos, ramificación más laxa y menor desarrollo del cenosarco. B. wellsi presenta pólipos grandes, muy carnosos y una capacidad de expansión diurna superior: en condiciones estables mantiene los tentáculos parcialmente extendidos durante el fotoperiodo, algo que B. merleti rara vez hace.

En acuariofilia es un coral reconocido por su robustez: tolera niveles de nutrientes moderados (nitrato 5–20 mg/L, fosfato 0,03–0,10 mg/L) y perdona errores de parámetros que otros LPS no soportan. Su crecimiento es lento pero constante, con tasas de 1–2 pólipos nuevos al mes por colonia en condiciones óptimas mediante gemación intracalicular e intercalar; en cambio, es sensible a la luz intensa, que provoca retracción persistente, decoloración y finalmente bleaching del tejido expuesto.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

La asignación familiar de Blastomussa es un caso abierto. Tradicionalmente se incluyó en Mussidae por la dentición septal masiva y los lóbulos paliformes, pero los análisis moleculares de la última década han desmontado la monofilia de esa familia y han dejado al género en incertae sedis dentro de Scleractinia, a la espera de una revisión estable. En la práctica acuarística esto no cambia nada: sus requerimientos son los de un LPS carnívoro de baja luz, no los de un múscido típico de arrecife somero.

Morfológicamente el género se define por coralitos subplocoides a facelelos con septos dispuestos en tres o cuatro ciclos, bordes septales con dientes agudos y laciniosos, y ausencia de columela papilar bien desarrollada. B. wellsi se distingue de B. loyae por la mayor talla y carnosidad de sus pólipos y por el menor número de coralitos por unidad de superficie; en la práctica, la identificación se confirma por la combinación de pólipos ≥8 mm, cenosarco extenso y septos muy dentados.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Su distribución abarca el Indo-Pacífico central y occidental: mar Rojo, Indonesia, Papúa Nueva Guinea, islas Salomón, Filipinas, Gran Barrera de Coral y Fiyi. No es un coral de arrecife frontal batido ni de cresta expuesta. Aparece de forma característica entre 5 y 30 m de profundidad, en hábitats crípticos y relativamente sombreados: paredes verticales, techos y paredes internas de cuevas, repisas bajo cornisas de Acropora o Porites, grietas entre corales masivos, y fondos lagunares con sedimentación fina y turbidez recurrente.

Su nicho es el de un colonizador de sustrato muerto en zonas de baja irradiancia: se fija sobre esqueleto de coral muerto, roca calcárea y cascotes estables, y rara vez compite directamente por espacio con corales de crecimiento rápido en zonas iluminadas. La cobertura de B. wellsi en esos microhábitats suele ser pequeña y fragmentada, con colonias aisladas y a menudo parcialmente cubiertas por sedimento.

Estos datos explican su manejo en acuario. En términos de iluminación, el rango óptimo está en PAR 50–150 µmol·m⁻²·s⁻¹ (7–10 h de fotoperiodo); por encima de 250 µmol·m⁻²·s⁻¹ los pólipos se retraen y las áreas expuestas blanquean. El flujo debe ser suave e indirecto (5–10 cm/s de velocidad media, sin chorro directo): el cenosarco es delgado y se desgarra con corrientes fuertes, y la acumulación de detritus entre pólipos favorece infecciones bacterianas. Su tolerancia a la turbidez y a nutrientes elevados es alta, lo que lo hace idóneo para sistemas con nitrato 10–20 mg/L, aunque con valores sostenidos de fosfato por encima de 0,15 mg/L el crecimiento se frena.

La heterotrofia es relevante en este hábitat de luz escasa: en el arrecife captura presas planctónicas y materia orgánica en suspensión con los tentáculos nocturnos. En cautividad, alimentarlo dos veces por semana con mysis, copépodos o pellets de 1–2 mm de diámetro acelera la gemación y mantiene el color en colonias sometidas a baja iluminación; sin alimentación sobrevive, pero con crecimiento casi nulo. Temperatura 24–27 °C, salinidad 35 g/L, dureza de carbonatos 7,5–9 dKH y estabilidad de parámetros son más determinantes que cualquier valor aislado.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Blastomussa wellsi es un LPS colonial de pólipos carnosos y notablemente grandes. Cada pólipo mide habitualmente entre 20 y 40 mm de diámetro, con disco oral amplio y tentáculos cortos, redondeados y poco exsertos durante el día; la expansión máxima se observa con iluminación baja, tras la alimentación o durante la noche. La coloración típica combina un disco oral verde o amarillo eléctrico con tejido rojo vino, granate, rosa o púrpura; existen morfos azules, bicolores y con centros atigrados. Ese verde intenso se debe a proteínas fluorescentes del propio coral y a la densidad de zooxantelas, no solo a la intensidad lumínica.

El esqueleto es aragonítico, submasivo y de perfil bajo. Los corallites son subplocoides, con septos dentados y centros poco profundos; los pólipos emergen de un coenosarco común y no forman ramas fáceloides separadas como B. merleti. Esta arquitectura produce colonias compactas, encrustantes o domadas, que ganan superficie lateralmente antes que en altura. El tejido carnoso cubre y desborda el esqueleto, por lo que las heridas por manipulación son frecuentes si se agarra la colonia por los pólipos.

Alberga zooxantelas de la familia Symbiodiniaceae y mantiene fotosíntesis activa, pero no debe tratarse como un coral exclusivamente autótrofo: captura plancton, especialmente nauplios, mysis pequeños y copépodos. No desarrolla tentáculos barredores largos; su agresividad es baja-moderada, aunque al inflarse puede ocupar espacio y competir por luz y flujo con corales vecinos. La combinación de pólipos grandes, coenosarco continuo y esqueleto subplocoide es diagnóstica frente a otros LPS de aspecto similar.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Blastomussa wellsi tolera bien aguas maduras, pero responde mal a oscilaciones bruscas de alcalinidad y salinidad. Los valores deben mantenerse estables más que perseguir cifras extremas.

La iluminación excesiva es uno de los errores más frecuentes: bajo LED potentes, colocar la colonia en zona sombreada o en el tercio inferior. Un PAR de 50–100 µmol·m⁻²·s⁻¹ suele ser suficiente para mantener color y crecimiento; por encima de 200 µmol·m⁻²·s⁻¹ aparece retracción, blanqueamiento parcial o pérdida del verde fluorescente. El flujo debe mover suavemente los pólipos sin plegares el tejido; corrientes laminar y alterna son mejores que bombas apuntando directamente.

Con nitratos de 2–10 mg/L y fosfatos de 0,03–0,10 mg/L se mantiene bien, pero la relación N:P debe ser estable. El KH es crítico: B. wellsi muestra retracción con caídas rápidas a 6 dKH o subidas a 12 dKH. Mantener calcio y magnesio en rango evita que el esqueleto subplocoide se vuelva quebradizo. No requiere niveles altos de yodo ni aminoácidos si la alimentación es regular.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocar la colonia en el tercio inferior del acuario, sobre roca estable, en zonas laterales o bajo salientes que filtren la luz. Evitar la exposición directa a bombas y la arena suelta con flujo fuerte; si se sitúa en el sustrato, hacerlo sobre una base cerámica o roca plana para que el coenosarco no quede enterrado. Dejar 10–15 cm de separación de corales con tentáculos barredores largos y de especies de crecimiento rápido; su agresividad es limitada y puede ser desplazada por Euphyllia, Galaxea o zoantidos expansivos.

El crecimiento es lento: expansión lateral del coenosarco y división de pólipos, con incrementos típicos de 1–3 cm anuales en condiciones estables. Colonias de 10–15 pólipos pueden tardar años en duplicar diámetro. La forma submasiva hace que la base se engrose poco; la ganancia de tejido se produce sobre todo en los bordes. La alimentación 1–2 veces por semana con plancton de 0,5–2 mm acelera la división, pero no sustituye la estabilidad de parámetros.

Para fragmentar, usar sierra de diamante o alicates de hueso, nunca arrancar pólipos del esqueleto. Cortar Fragmentos de 2–4 pólipos con al menos 1 cm de esqueleto sano y coenosarco intacto; los fragmentos de un solo pólipo tienen menor tasa de supervivencia. Realizar el corte fuera del acuario, irrigar con agua del sistema y aplicar baño de yodo según producto. Fijar con cianoacrilato gel o epoxy sobre roca pequeña, sin cubrir tejido vivo. Mantener los fragmentos en cuarentena 2–3 semanas con luz de 50–100 µmol·m⁻²·s⁻¹, flujo suave e indirecto, y alimentar a los 3–4 días si no hay infección. Evitar fragmentar colonias recién importadas: esperar 4–6 semanas de adaptación y observación de expansión estable.

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Agresividad. Blastomussa wellsi no desarrolla tentáculos barrenderos largos —a diferencia de Euphyllia, Galaxea o Hydnophora—, pero sí extruye filamentos mesentéricos y digiere externamente el tejido de cualquier coral que toque sus pólipos. El daño es localizado y reversible para el vecino, pero la colonia pierde el combate en conflictos prolongados: su tasa de crecimiento (2-5 coralitos nuevos al año) la hace perdedora frente a cualquier incrustante rápido. Deja 8-12 cm de separación con otros LPS y 15 cm con Hydnophora, Galaxea y Euphyllia (barrenderos de hasta 15-20 cm). Sus enemigos reales en acuario son Zoanthus, Palythoa, Briareum, Pachyclavularia, Montipora incrustante y Porites, que la tapizan en semanas. También cede

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

Blastomussa wellsi se vende a menudo como «LPS fácil» y esa etiqueta es engañosa: es tolerante con la luz, pero extremadamente poco tolerante con la inestabilidad química y con el manejo brusco. Estos son los puntos que marcan la diferencia entre una colonia que se mantiene durante años y otra que se pierde en seis semanas.

• Confirma la especie antes de colocarla. Muchos ejemplares importados como B. wellsi son Blastomussa vivida (descrita por Benzoni y colaboradores en 2014) o directamente B. merleti. Si los pólipos miden menos de 1 cm y el esqueleto forma ramas tubulares largas, es merleti y necesita menos luz aún (PAR 30-60). B. wellsi tiene pólipos de 2-3 cm, disco carnoso y esqueleto submasivo, con los séptales visibles entre pólipos.
• Luz: PAR 50-120 µmol/m²/s. Colócala en la base de la roca, bajo repisa o en zona de sombra parcial. Con PAR superior a 200 el disco oral se vuelve translúcido en 7-10 días y los pólipos quedan semiabiertos de día, con el centro retraído: es bleacheo, no «falta de adaptación».
• Flujo indirecto y oscilante. Nunca apuntes una bomba directamente a la colonia. El tejido se adelgaza sobre las crestas séptales y se desgarra con corrientes laminares de más de 15 cm/s; usa movimiento alterno tipo gyre suave y observa que los pólipos se mezan sin plegarse.
• Alimentación nocturna obligatoria. Los tentáculos se extienden entre 30 y 60 minutos después del apagado. Ofrece un mysis de 3-5 mm por pólipo, 2-3 veces por semana, con pipeta y sin exceso: el alimento no capturado eleva el fosfato y dispara infecciones. Un pólipo que captura cierra sobre la presa en menos de 60 segundos; si no lo hace, la colonia está estresada.
• Alcalinidad estable por encima de todo. Mantén 7,8-8,4 dKH con oscilación máxima de 0,3 dKH/día. Esta especie tolera nitratos altos pero recesiona desde la base con cambios bruscos de KH: es el fallo más frecuente en acuarios con dosificación manual.
• No la sometas a ULNS. Nitrato 5-15 mg/L y fosfato 0,05-0,10 mg/L le van bien. En sistemas con NO₃ indetectable el tejido se retrae, aparecen áreas blanquecinas en la periferia del pólipo y el crecimiento se detiene por completo.
• Protocolo anti «brown jelly». Ante una película blanquecina o marrón con tejido que se disuelve, no soples con la pera: extenderás los ciliados a toda la colonia. Sifona, corta el pólipo afectado con cortapernos dejando margen de esqueleto sano, y haz baño de yodo (10-15 gotas de Lugol por litro, 10-12 minutos). Aísla la pieza en cuarentena 2 semanas.
• Distancia de seguridad de 10-15 cm respecto a Euphyllia, Galaxea, Hydnophora y Montipora. B. wellsi es un competidor pésimo y pierde tanto por tentáculos barredores como por digestión por contacto.
• Fragmentación: corta con sierra de disco húmeda atravesando esqueleto, deja un mínimo de 4 pólipos por fragmento y 5 mm de margen. La cicatrización tarda 3-6 semanas a PAR 80; pégalo con cianoacrilato en gel sobre tapón cerámico y no lo alimentes hasta que los tentáculos vuelvan a extenderse.
• Manipulación: los séptales cortan como cuchillas y el tejido se desprende con facilidad. Usa guantes y nunca la saques del agua más de 20 segundos. Salinidad estable a 35 g/L (1.025-1.026) y temperatura de 24-26 °C.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

La especie responde sobre todo a la estabilidad, pero la evaporación estacional, la temperatura de la sala y la carga orgánica del sistema sí cambian a lo largo del año. Ajusta así el mantenimiento.

12. ✅ CONCLUSIÓN

Blastomussa wellsi es un coral de arrecife profundo y aguas turbias, y todo su mantenimiento gira alrededor de reproducir esas condiciones: luz baja, corriente suave e indirecta, nutrientes disponibles y química muy estable. Su crecimiento es lento —del orden de 1-2 cm de diámetro al año en condiciones óptimas—, así que la colonia que compras es prácticamente la que vas a tener durante mucho tiempo; conviene elegir un ejemplar con tejido íntegro, pólipos bien definidos y color uniforme, y descartar cualquiera con bordes blanquecinos o séptales expuestos.

Los tres errores que explican la mayoría de los fracasos son concretos: colocarla bajo iluminación alta de SPS, someterla a oscilaciones de alcalinidad superiores a 0,5 dKH/día y no alimentarla porque «hace fotosíntesis». Con alimentación nocturna regular, PAR en torno a 80-100, dKH estable en 8 y nitratos entre 5 y 15 mg/L, la especie se muestra carnosa, expandida durante el día y con capacidad de regenerar tejido tras un daño mecánico.

Como proyecto a medio plazo, es una pieza excelente para zonas bajas y sombreadas del acuario, donde otros LPS no prosperan, y para mantener diversidad en sistemas con nutrientes moderados. Exige menos luz que Caulastrea o Lobophyllia, pero bastante más atención a la química y a la alimentación que un blando; trátala como un LPS de dificultad media y no como un coral «para empezar».

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

Blastomussa wellsi calcifica poco —corallitas de 10-20 mm con crecimiento de 2-4 mm anuales— pero su tejido es extraordinariamente sensible a la oscilación, no al valor absoluto. Con KH 7,5-8,5 dKH y Ca 410-440 ppm el margen es amplio; sin embargo, un salto de 1,5 dKH en 24 h provoca retracción y exposición de septos en la periferia de la colonia en 48-72 h. Mantén Mg en 1300-1350 ppm para evitar precipitación localizada en la base, que se traduce en necrosis ascendente. Respecto a nutrientes, el coral rinde mejor con NO₃ 5-15 ppm y PO₄ 0,05-0,10 mg/L; en sistemas con NO₃ <2 ppm el disco oral palidece y la expansión policipal se reduce a la mitad. Salinidad 35 g/L con variación máxima de 0,5 unidades: los fallos de reposición de agua dulce son la causa silenciosa de recesión más frecuente en esta especie. No vincules el ajuste a un único parámetro; el tejido responde a la relación KH/Ca establecida y a la estabilidad de la salinidad.

Es un competidor débil y pasivo: carece de tentáculos barredores largos y pierde cualquier contacto directo. Los tentáculos de Euphyllia y Galaxea (10-15 cm de alcance) y los filamentos mesentéricos de Hydnophora digieren su tejido en menos de una noche, así que mantén 20 cm de separación efectiva contando el crecimiento de la colonia vecina. La vía química es más insidiosa: terpenos de Sinularia, Sarcophyton y Lobophytum, y las exudaciones de Briareum, inducen retracción persistente y menor expansión policipal cuando B. wellsi está aguas abajo. Discosoma y Rhodactis lo sobrecrecen por competencia de espacio y luz, no por química. Medidas concretas: carbón activado 100-200 g por 500 L renovado cada 3-4 semanas, cambios de agua del 10-15 % semanal y separación física de la pluma hidráulica de los blandos. Vigila también la alelopatía inversa: colonias densas de Zoanthus liberan palitoxina que, en volúmenes pequeños, se asocia a pérdida de color en esta especie.

El rango operativo real es 50-150 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR), con picos de 200 tolerables solo si son breves y la colonia está aclimatada; por encima de 250 aparece fotosaturación, el disco oral se blanquea antes que el coenosarco y los pólipos quedan semicerrados durante todo el fotoperiodo. La aclimatación debe ser de 4-6 semanas con incrementos del 15 % semanal. La señal de exceso de luz es inequívoca: pólipos inflados en zonas de sombra y contraídos a mediodía. En flujo, busca 5-10 cm/s de corriente aleatoria y alterna; el flujo laminar directo erosiona el tejido del borde de ataque en 2-3 semanas y deja el esqueleto expuesto. Paradójicamente, por debajo de 3 cm/s el detritus se acumula entre corallitas y aparecen bolsas de necrosis anaerobia en la base. La prueba práctica: si el moco y los sedimentos no se desprenden solos, el flujo es insuficiente; si el tejido se pliega y queda retraído más de una hora, es excesivo.

Problemas poco frecuentes pero documentables: vermétidos que proyectan redes de moco sobre la colonia y causan retra

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Cómo distingo Blastomussa wellsi de B. merletii en la tienda?

El carácter diagnóstico es el tamaño del pólipo: en B. wellsi mide 10–14 mm expandido y la colonia crece como una lámina incrustante de coralitos tubulares muy próximos sobre un cenosarco delgado; B. merletii apenas alcanza 6–9 mm y forma colonias fasciculadas, con pólipos más separados y visibles entre sí. El disco oral de B. wellsi suele ser rojo vino o púrpura con centro verde fluorescente y tentáculos translúcidos de 3–5 mm; B. merletii es más apagado y de tentáculos poco aparentes. Con el pólipo retraído, B. wellsi muestra dientes septales gruesos y fusionados en dosciclos marcados. Además, la procedencia ayuda: Indonesia, Filipinas y Gran Barrera de Coral implican B. wellsi; B. merletii es más frecuente en el Índico y el Mar Rojo.

¿Qué parámetros exactos necesita?

Temperatura 24–26 °C (pico tolerado 27 °C y nunca sostenido), salinidad 34–35 g/L (1.025–1.026), pH 8,1–8,4, alcalinidad 7,5–8,5 dKH con oscilación diaria inferior a 0,5 dKH, calcio 420–440 mg/L y magnesio 1300–1350 mg/L. Nitrato 5–10 mg/L y fosfato 0,03–0,08 mg/L: es un coral que tolera agua «sucia» mejor que un sistema ULNS, donde se adelgaza el tejido. Es especialmente sensible a subidas de alcalinidad por encima de 10 dKH y a cambios de salinidad por reposición de agua dulce mal dosificada; mantén la densidad estable y evita el uso de resinas de intercambio iónico sin control.

¿Iluminación y corriente?

Rango óptimo de 30–80 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR), con máximo puntual de 100; por encima de 150 se produce retracción persistente y blanqueo del centro del pólipo. Espectro con pico azul en 450 nm y proporción moderada de blanco. Ubícalo en el tercio inferior, bajo salientes o en zonas de sombra parcial, nunca en la cima de la roca. Corriente indirecta y moderada, del orden de 5–10 cm/s: un chorro directo de bomba desgarra el tejido y desprende pólipos completos. Su lámina incrustante compite mal contra algas filamentosas y zoantídeos, así que reserva una superficie libre de competencia.

¿Es fotosintético o hay que alimentarlo?

Es zooxantelado, pero la contribución autótrofa es limitada y su tasa de captura heterótrofa es alta. Aliméntalo 2–3 veces por semana con mysis de 4–6 mm, krill troceado o pellets de 1–2 mm; la respuesta tentacular es más fuerte 30–60 minutos después del apagado. Cada pólipo digiere en 20–40 minutos y regurgita cualquier presa mayor que su boca, por lo que el tamaño importa más que la cantidad. En sistemas con nitrato por debajo de 2 mg/L, pasa a alimentación diaria. Un ejemplar bien alimentado expande los pólipos hasta un 40 % más y mantiene el color del disco oral.

¿Cómo lo fragmento sin perder la colonia?

Corta con sierra de banda o Dremel con disco de diamante a través del cenosarco, no entre pólipos. Cada fragmento debe llevar al menos 3 pólipos completos y 1 cm de tejido sano alrededor del corte. Mantén el coral fuera del agua menos de 60 segundos y realiza un baño de yodo comercial a 3 ml/L durante 5–8 minutos. La cicatrización tarda 2–4 semanas y la expansión laminar es lenta: 2–5 mm al mes en condiciones óptimas. No manipules la colonia donante hasta que cierre el corte, y evita fragmentar ejemplares recién importados.

¿Qué patologías y plagas lo afectan?

El problema más frecuente es la «gelatina parda» (infección por ciliados), que avanza en 24–48 horas desde un pólipo dañado: aspira el tejido necrótico, baña en yodo y aísla la colonia. El estrés térmico o por corriente provoca bailout: los pólipos se desprenden vivos y pueden fijarse de nuevo sobre sustrato. Vigila planarias del género Waminoa sobre el disco oral y pequeños gasterópodos ectoparásitos en la base de los coralitos. Como todo Scleractinia, está incluida en el Apéndice II de CITES.

📚 REFERENCIAS

• Borneman, E.H. (2001). Aquarium Corals: Selection, Husbandry, and Natural History. TFH Publications, Neptune City, NJ.
• Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, Vol. 2. Australian Institute of Marine Science, Townsville.
• Budd, A.F., Fukami, H., Smith, N.D. & Knowlton, N. (2012). Taxonomic classification of the reef coral family Mussidae (Cnidaria: Anthozoa: Scleractinia). Zoological

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