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Acanthastrea echinata

Acanthastrea echinata
Autor: Roberto Parra Jiménez 🎓 Biólogo Marino – Universidad de Hawaii (UH Mānoa)
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia

📋 ÍNDICE DEL ARTÍCULO

  • 1. 🌏 INTRODUCCIÓN
  • 2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
  • 3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
  • 4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
  • 5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
  • 6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
  • 7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
  • 8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES
  • 9. 🌍 CONSERVACIÓN Y SOSTENIBILIDAD
  • 10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
  • 11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
  • 12. ✅ CONCLUSIÓN

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Acanthastrea echinata (Dana, 1846) es un coral pétreo hermatípico de la familia Lobophylliidae, conocido en el comercio como «acan echinata» o «coral piña» por la textura erizada de sus septos. Sus colonias son incrustantes a masivas, hemisféricas en ejemplares grandes, y pueden alcanzar cerca de un metro de diámetro en el arrecife, aunque en acuario lo habitual es trabajar con fragmentos de 2-5 cm con cuatro a ocho cálices. Los coralitos son cerioides, contiguos y comparten paredes, con diámetros de 8-20 mm (frecuentemente 10-15 mm), y se distinguen por sus septos en tres órdenes armados con dientes gruesos, sobresalientes y de aspecto espinoso —de ahí el epíteto echinata—. La columnela es trabecular y poco profunda, y el tejido interpolar (cenosarco) es escaso pero visible en los márgenes de crecimiento.

La coloración es extremadamente variable y no diagnóstica: fondos marrones, grises, verdes, rojos, granates o púrpuras, con discos orales de tono contrastado (verde lima, naranja o crema) y a menudo con una fina línea de tejido de color diferente en el borde del cáliz. Esa variabilidad, unida a la confusión taxonómica histórica, hace que muchos ejemplares vendidos como Acanthastrea pertenezcan en realidad a Micromussa (M. lordhowensis, M. amakusensis): la diferencia práctica es que A. echinata presenta cálices mayores e irregulares, con dientes septales muy marcados, mientras que Micromussa muestra pólipos pequeños, uniformes y «en botón».

En acuariofilia es uno de los LPS más indulgentes: tolera valores de calcio entre 380 y 450 mg/L, alcalinidad de 7-9 dKH, nitratos de 5-20 mg/L y fosfatos de 0,03-0,15 mg/L sin signos de estrés, y soporta mejor que la media los desajustes puntuales de salinidad (34-35 g/L). Su punto débil no es la química del agua sino la competencia y la depredación: es un coral voraz, de respuesta nocturna muy rápida, que requiere alimento particulado para mantener el ritmo de crecimiento y la pigmentación.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

Descrita por James Dwight Dana en 1846 a partir de material de la expedición Wilkes, la especie fue situada originalmente en el género Astraea y transferida después a Acanthastrea Milne Edwards & Haime, 1848. La revisión filogenética de Scleractinia de Budd y colaboradores (2012), apoyada en datos moleculares posteriores (Arrigoni et al., 2014), desligó al género de Mussidae y lo incluyó en la familia Lobophylliidae, un clado de corales masivos con marcada capacidad de digestión extracelular.

Rango Taxón
Reino Animalia
Filo Cnidaria
Clase Anthozoa
Subclase Hexacorallia
Orden Scleractinia
Familia Lobophylliidae (antes Mussidae)
Género Acanthastrea Milne Edwards & Haime, 1848
Especie Acanthastrea echinata (Dana, 1846)
Autor y año Dana, 1846 (como Astraea echinata)
Localidad tipo Islas Fiyi, Pacífico central
Sinonimia frecuente Acanthastrea grandis, A. patula (aplicación variable según autores)
Especies del género ~10-12 aceptadas; A. echinata es la de mayor distribución
Simetría y esqueleto Hexarradial; septos en 3 órdenes, dientes espinosos, columnela trabecular

El género se caracteriza por coralitos cerioides con septos dentados y por la ausencia de la clara división entre coralitos que presentan otros lobofílidos. La pigmentación, la forma colonial y el tamaño del cáliz varían con la profundidad y la turbidez, lo que históricamente generó sinónimos hoy en revisión; la identificación fiable exige observar el esqueleto (número de septos, 24-36 en adultos, y su patrón de dentición), no el color.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Su área de distribución abarca todo el Indo-Pacífico tropical: desde el mar Rojo y la costa de África oriental (Kenia, Tanzania, Madagascar) hasta Samoa, Tonga y el archipiélago de Ryukyu al norte (aproximadamente 30° N) y la costa occidental australiana, el mar de Coral y la Gran Barrera al sur. Es una especie abundante pero rara vez dominante, con densidad típica de unos pocos individuos por cada 100 m² de sustrato adecuado.

Ocupa un rango batimétrico amplio, desde el nivel de las charcas de marea (0 m) hasta unos 30-40 m, con óptimo entre 2 y 15 m. Los hábitats donde resulta más predecible son las llanuras arrecifales someras y las lagunas protegidas con sedimentación fina, los cayos de escombros, las paredes verticales y extraplomos, y los sustratos de roca muerta o coral muerto colonizados por algas incrustantes. Tolera turbidez, altas concentraciones de nutrientes y oscilaciones térmicas de 24 a 30 °C, lo que explica su presencia en zonas portuarias y arrecifes degradados donde otros esclarectínios desaparecen. En esos ambientes se comporta como colonizador oportunista: crece por incrustación sobre superficie libre y luego engrosa en domo.

Su éxito competitivo se basa en la agresividad química y digestiva: al contacto con un competente, A. echinata everte filamentos mesentéricos ricos en enzimas proteolíticas que digieren el tejido ajeno en horas, y responde a la presencia de otros corales con expansión de tentáculos nocturnos. Es, por tanto, un vecino peligroso en el arrecife y en el acuario. Su actividad trófica es principalmente nocturna: los pólipos permanecen retraídos de día y extienden tentáculos cortos y gruesos al apagarse la luz, capturando plancton, copépodos y materia orgánica particulada; la fotosíntesis de sus zooxantelas (clado C, Symbiodinium sensu lato) cubre solo parte de su balance energético, por lo que la alimentación heterótrofa es determinante para su crecimiento y color.

Para replicar ese nicho en cautividad, colóquelo en la zona baja del acuario con iluminación de 50-100 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR), flujo indirecto y suave (5-10 cm/s, sin impacto laminar directo sobre el tejido), y con espacio libre de al menos 8-10 cm alrededor para evitar agresiones. Un parámetro estable vale más que uno «perfecto»: temperatura de 25-26 °C, salinidad de 35 g/L y alcalinidad de 7,5-8,5 dKH sostienen sin problemas a esta especie, una de las más adecuadas para iniciarse en los LPS masivos.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Acanthastrea echinata es la especie tipo del género y la única del complejo que conserva ese nombre tras las revisiones moleculares de Arrigoni y colaboradores (2016), que desplazaron a A. lordhowensis y A. bowerbanki a Micromussa y Homophyllia respectivamente. Esto importa en acuariofilia: la mayor parte de los «Acan» del comercio son Micromussa lordhowensis, con cálices de 6-12 mm y septos regulares, mientras que la verdadera echinata exhibe cálices claramente mayores y una dentición septal desproporcionada que le da el aspecto de una sierra tosca.

La colonia es cerioide —los corallites comparten paredes y adoptan contorno poligonal, normalmente pentagonal o hexagonal—, masiva a incrustante, y en ejemplares grandes puede volverse subhemisférica. El diámetro calicular oscila entre 8 y 20 mm, con casos de 25-30 mm en colonias de aguas turbias. El número de septos va de 12 a 24, repartidos en tres ciclos, y sus dientes son grandes, romos, irregulares y frecuentemente fusionados en crestas paliformes profundas; esta dentición es diagnóstica y persiste incluso en fragmentos pequeños. Las costas son gruesas, espinosas y quedan total o parcialmente cubiertas por coenosarcos, de modo que la superficie de la colonia aparece como un mosaico carnoso con valles esqueléticos apenas visibles. La columela es trabecular y poco profunda; el centro del cáliz está deprimido, lo que facilita la retención de presas.

Los pólipos presentan tentáculos cortos, cónicos y retráctiles, dispuestos en una o dos series, y un disco oral de 15-22 mm, a menudo con la boca ligeramente excéntrica. La coloración es muy variable y menos «diseñada» que en M. lordhowensis: dominan pardos rojizos, gris-verdosos y ocres, con el disco oral contrastado en verde, rojo o gris perla, y las puntas de los dientes septales casi siempre en blanco. El tejido es translúcido en zonas de expansión, lo que revela la trama esquelética subyacente.

Alberga zooxantelas de clados C (típicamente Symbiodinium generalistas tipo C1/C3), con densidad alta en el tejido, pero su dependencia de la fotosíntesis es menor que en otros Lobophylliidae. Es un heterótrofo voraz: captura mysis, krill y trozos de gamba de tamaño notable para su boca y digiere presas con filamentos mesentéricos que expulsa a través del celentero para atacar tejido competidor. No desarrolla tentáculos barredores tan largos como Euphyllia o Favia, pero su agresividad química y digestiva es elevada. El crecimiento radial del esqueleto es lento: la expansión se produce sobre todo por el avance del coenosarco, con acreción cálcica de pocos milímetros al mes.

Acanthastrea echinata
Acanthastrea echinata · Foto: (c) Ryan McMinds, some rights reserved (CC BY) (CC-BY)

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Procede de arrecifes someros a medias profundidades (0-40 m), frecuentemente en lagunas, fondos turbios y taludes protegidos del oleaje. Eso explica su tolerancia a nutrientes moderados y su mala respuesta a sistemas ultralimpios de tipo SPS. Los valores siguientes son el rango de trabajo estable; más importante que el valor absoluto es la constancia.

Parámetro Rango óptimo Observaciones específicas
Temperatura 24-26 °C Tolera 22-28 °C; por encima de 28 °C sostenidos se produce expulsión de zooxantelas y recesión del coenosarco.
Salinidad 35 g/L (1.025-1.026) Resiste 33-36 g/L; evitar oscilaciones por reposición de agua dulce.
pH 8,10-8,35 Descenso nocturno admisible hasta 7,95; valores inferiores a 7,8 frenan la calcificación.
KH (alcalinidad) 7,5-9,0 dKH Estable; por encima de 11 dKH aparecen quemaduras en el disco oral.
Calcio 410-450 mg/L Con caída por debajo de 380 mg/L el esqueleto pierde densidad en la base.
Magnesio 1.280-1.350 mg/L Necesario para mantener el KH sin precipitación de carbonato cálcico.
Nitratos (NO₃) 2-10 mg/L Admite hasta 20 mg/L; con NO₃ ≈ 0 el coral se aclara y deja de crecer.
Fosfatos (PO₄) 0,03-0,10 mg/L Por encima de 0,15 mg/L se instalan algas filamentosas sobre el esqueleto expuesto y el tejido se oscurece.
Iluminación 50-150 PAR (óptimo 75-120) Luz moderada; someterlo a 250-300 PAR produce blanqueo del disco y retracción permanente.
Flujo Moderado e indirecto (10-20× volumen/hora) Movimiento caótico que agite suavemente el tejido; nunca corriente laminar directa sobre el disco.

Con estas cifras, la iluminación es el parámetro donde más se falla: la especie se vende a menudo como «resistente a todo» y se coloca bajo LED de alta potencia, con el resultado de discos orales translúcidos y colonias que no expanden. Bajo luz fuerte responde cerrando pólipos durante horas y perdiendo el contraste del disco; bajo luz débil se mantiene abierta pero se vuelve uniformemente parda. El flujo debe ser suficiente para arrastrar el moco y los restos de comida sin deformar el pólipo: si el tejido se aplana o el disco se comprime lateralmente, la corriente es excesiva. Mantener el yodo y el estroncio en niveles de agua natural es suficiente; no requiere dosificación específica.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colócala sobre roca viva consolidada, no sobre sustrato suelto, para que el coenosarco pueda avanzar y fijarse. La base debe apoyar en superficie plana y estable, con el disco orientado hacia arriba o ligeramente inclinado; en posición vertical pierde capacidad de captura. Deja un margen libre de 10-15 cm respecto a otros LPS y de 20 cm respecto a SPS: los filamentos mesentéricos que expulsa al detectar contacto pueden digerir tejido de Favia, Caulastrea o incluso Montipora en una noche. Evita situarla en la trayectoria directa de bombas de movimiento, donde el moco y la comida se dispersan antes de que pueda capturarlos.

El crecimiento es lento y fundamentalmente lateral: en condiciones óptimas añade del orden de 1-4 nuevos corallites al año en una colonia de tamaño medio, con avance del coenosarco de 2-5 mm mensuales sobre la roca. La alimentación marca la diferencia: dos o tres tomas semanales de mysis, krill troceado, gamba cruda o pellets específicos de LPS, administradas al apagarse las luces y con los tentáculos extendidos, aceleran la gemación de forma evidente; sin alimentación, la colonia sobrevive y mantiene color, pero apenas crece.

Para fragmentar se necesita sierra de banda húmeda o Dremel con disco diamantado de 545; no sirve cortar con cúter ni fragmentar por torsión. El corte puede hacerse entre corallites, conservando el muro común, o atravesando un pólipo por su eje: ambas mitades regeneran el disco en 3-6 semanas, aunque los fragmentos de 3-6 corallites completos presentan mucha mayor supervivencia. Tras el corte, sumerge los fragmentos en disolución de yodo (10-25 mg/L durante 10-15 minutos) o en un baño coralino comercial, y aclara antes de devolverlos al acuario. Fija los trozos con cianoacrilato en gel o epoxi de arrecife sobre roca pequeña, dejando el corte hacia abajo si es posible.

Durante las primeras dos semanas mantén los fragmentos en zona de flujo suave-moderado y 75-100 PAR, sin alimentar hasta pasados 5-7 días, cuando los tentáculos vuelvan a extenderse. El riesgo principal es la infección por ciliados (la denominada «gelatina marrón»), que aparece en las superficies de corte expuestas con agua cargada de materia orgánica; un flujo adecuado y NO₃/PO₄ dentro del rango indicado lo minimizan. No manipules la colonia donante inmediatamente después del corte: deja que el coenosarco cierre el muro seccionado antes de moverla.

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Acanthastrea echinata es un LPS de pólipos carnosos y esqueleto masivo que puede desplegar tentáculos de barrido y filamentos digestivos, especialmente con iluminación apagada. En la práctica, mantén una separación mínima de 8-12 cm respecto a otros corales séiles y de 15 cm frente a SPS; una colonia bien alimentada puede inflarse y ampliar su radio de acción. No es un coral para nanos sin control de distancias: su agresividad química y física castiga a vecinos lentos como Favia, Favites o Lobophyllia.

Con peces, tolera bien especies reef-safe de nado tranquilo: Amphiprion ocellaris, Amphiprion percula, gobios (Gobiodon, Elacatinus), blénidos (Ecsenius), cirujanos del género Zebrasoma y lábridos pequeños como Halichoeres chrysus. Evita mordisqueadores confirmados: ángeles grandes (Pomacanthus), ángeles enanos (Centropyge), mariposas (Chaetodon), ballestas, monacántidos, Canthigaster y loros. Un solo mordisco puede abrir una lesión que derive en infección por “brown jelly”.

En invertebrados, son seguros Lysmata amboinensis, Lysmata debelius, cangrejos ermitaños Calcinus y Clibanarius, y caracoles Trochus, Cerithium y Nassarius; los ermitaños pueden robar alimento, así que dosifica la comida. Lysmata wurdemanni es variable: algunos individuos picotean tejido si están desnutridos. Prohíbe caracoles coralívoros (Drupella, Coralliophila), cangrejos oportunistas tipo “gorilla”, estrellas Acanthaster planci y erizos Echinometra que arañen la colonia. Las anémonas y otros cnidarios móviles deben quedar fuera del alcance de sus tentáculos.

8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES

El blanqueamiento en A. echinata suele comenzar por los bordes expuestos o por la cara superior: los pólipos pierden zooxantelas y muestran tonos pálidos antes de retraerse. Causas típicas: temperatura sostenida por encima de 29 °C, fluctuaciones diarias superiores a 2 °C, salinidad fuera de 34-35, iluminación directa intensa y cambios bruscos de alcalinidad. Mantén 24,5-26,5 °C, 34-35 de salinidad, 7-9 dKH, NO₃ entre 2 y 10 mg/L y PO₄ entre 0,03 y 0,1 mg/L; la estabilidad importa más que el valor puntual.

La RTN (necrosis rápida de tejido) se reconoce porque el tejido se desprende en jirones y deja esqueleto blanco en horas. Suele asociarse a lesiones previas, bacterias tipo Vibrio y parámetros inestables. Actúa rápido: aspira el tejido necrótico, corta una porción sana de al menos 1 cm por encima del borde afectado y desinfecta herramientas. El “brown jelly” produce un exudado marrón gelatinoso con olor fétido; retira la colonia a un recipiente de cuarentena, aspira el material y aplica un baño de yodo según fabricante, sin reutilizar el agua.

No hay un parásito específico documentado para Acanthastrea echinata; los problemas suelen ser infecciones oportunistas y epibiontes. Los platelmintos epibiontes (Waminoa, Convolutriloba) pueden cubrir la superficie y sombrear los pólipos: se combaten con baños de yodo y revisión semanal. Como plagas conviene vigilar Aiptasia, vermétidos, Bryopsis, cianobacterias y caracoles Drupella o Coralliophila. Una retracción de pólipos sin pérdida de color puede ser simple irritación por corriente fuerte, manipulación o peces; no la trates como enfermedad sin observar 24-48 horas.

9. 🌍 CONSERVACIÓN Y SOSTENIBILIDAD

Acanthastrea echinata está incluida en el Apéndice II de CITES como todos los escleractinios; su comercio internacional exige permisos de exportación e importación. La evaluación global de la UICN la sitúa como Preocupación Menor (LC) por su amplia distribución Indo-Pacífica, pero eso no implica que toda recolección sea sostenible: las colonias grandes y lentas de crecimiento son vulnerables a la extracción repetida y a la degradación del arrecife.

La acuacultura por fragmentación es viable y reduce la presión sobre poblaciones silvestres. Prefiere fragmentos cultivados, con esqueleto sano y tejido que cubra al menos el 70 % del corte; evita colonias con cortes recientes, bordes necróticos o pólipos excesivamente retraídos. La maricultura en viveros sumergidos, bien gestionada, permite obtener ejemplares con trazabilidad, pero no sustituye la protección del hábitat. Exige certificado CITES y documentación de origen; rechaza ejemplares sin trazabilidad o recolectados con métodos destructivos. No liberes fragmentos ni agua de acuario al medio natural: puede introducir patógenos y especies exóticas.

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

1. Respeta el radio de barrido. Acanthastrea echinata es uno de los LPS más agresivos del hobby: emite tentáculos barredores de 10-15 cm, a veces más, que actúan de noche y digieren tejido ajeno en horas. Deja 15 cm libres de Euphyllia, Micromussa, Favia y cualquier SPS; el Acanthastrea gana casi siempre el combate. Si necesitas densidad, colócalo en la zona inferior y rodeado de roca desnuda.

2. Identifícalo bien antes de comprarlo. Los corallites de A. echinata son cerioides (muros compartidos), de 8-15 mm, con septos exsertos y espinosos —de ahí echinata— muy distintos de los de Micromussa lordhowensis (ex Acanthastrea), más pequeños y de septos finos. Esa diferencia importa: el echinata tolera peor la luz intensa y pica mucho más fuerte.

3. Alimenta de noche, boca por boca. Espera 30-60 minutos tras el apagado, cuando los tentáculos están extendidos. Con jeringa y aireación suave, deposita mysis enriquecido o trozos de gamba de 3-5 mm sobre cada boca, 2-3 veces por semana. Retira con pera de goma lo que no capture en 20 minutos: la comida fermentando entre los septos espinosos es la causa número uno de infecciones bacterianas.

4. Estabilidad de KH por encima de la cifra. Con esqueleto denso y crecimiento lento en volumen, una oscilación superior a 0,7 dKH/día provoca recesión basal que rara vez se detiene sola. Mantén 7,5-9,0 dKH con dosificadora y test semanal, no con aditivos manuales.

5. Sifona los septos, no los cepilles. La geometría espinosa retiene sedimento y detritus y se convierte en refugio de cianobacterias. Usa una pera de goma a media altura, nunca un cepillo ni un chorro directo de bomba, que desgarra el tejido interpolar.

6. Reconoce el «brown jelly» a tiempo. Si aparece una masa gelatinosa parda y el tejido se desprende, aspira, haz baño de yodo (Lugol, 10-15 minutos) y corta 5 mm por delante del borde sano con cizalla de hueso. El tejido afectado no se recupera: el esqueje sano, sí.

7. Flujo indirecto y moderado. Apunta a 15-20 veces el volumen del acuario por hora en total, pero sin impacto directo sobre el disco oral. Un chorro frontal continuo inflama el tejido y provoca retracción crónica que se confunde con enfermedad.

8. Luz: 60-150 PAR, con aclimatación real. Bajo repisas o en la mitad inferior con LEDs a 300+ PAR en superficie. Aclimata con malla difusora al 50 % durante 3-4 semanas; el blanqueo por exceso de luz en esta especie es rápido y deja cicatrices visibles durante meses.

9. Controla los invertebrados de limpieza. Las Lysmata y los ermitaños grandes roban comida directamente del disco; los gusanos planos (convolutrílidos, Waminoa), vermétidos y anémonas bola compiten por espacio. Revisa la base de la colonia con lupa cada mes.

10. Esqueja con sierra, no con alicate. Corta perpendicular, atravesando 4-6 mm de esclerénquima, y deja 3-4 semanas de cicatrización en zona de flujo suave. No hagas baño de agua dulce ni expongas el corte al aire más de 30 segundos.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

Plan anual para un sistema estable a 25 °C y 35 g/L. Ajusta la frecuencia según carga de peces y consumo de carbonatos.

Estación Tareas principales Parámetros y observaciones
Primavera Revisión de esquejes y cicatrización; sifonado profundo de septos; ajuste de fotoperiodo a 10-11 h; inspección de gusanos planos. KH 7,5-8,5; NO₃ 5-10 mg/L; PO₄ 0,03-0,06 mg/L. Aprovecha para reaclimatar colonias movidas en invierno.
Verano Control térmico con ventilador o enfriador; reposición de evaporación con agua de ósmosis; alimentación reducida a 2 veces/semana por menor apetito. Techo 27 °C, nunca sostenido; salinidad 34-35 g/L. Vigila la deriva por evaporación: es la causa típica de recesión en agosto.
Otoño Esquejado y fragmentación de colonias con más de 20 pólipos; refuerzo de alimentación con mysis y calamar; revisión de tentáculos barredores. KH 8-9; Ca 420-450 mg/L; Mg 1280-1350 mg/L. Buen momento para recolocar con 15 cm de separación.
Invierno Estabilidad térmica con calentador y controlador redundante; mínimo movimiento de colonias; inspección mensual de la base y de la línea de recesión. 24-25,5 °C estables; NO₃ hasta 15 mg/L tolerado, con oscurecimiento de color. Evita cambios de agua superiores al 20 % semanal.

12. ✅ CONCLUSIÓN

Acanthastrea echinata no es un coral «fácil de segunda fila»: es un LPS robusto, tolerante a nutrientes medios y a temperaturas variables, pero exigente en dos puntos concretos —estabilidad de alcalinidad y alimentación dirigida sin restos—. Su tolerancia a rangos amplios explica por qué muchos acuaristas lo mantienen años con aspecto marrón y plano: sobrevive, pero solo despliega color y expansión real con Par 60-150, flujo indirecto y comida nocturna dos o tres veces por semana.

Su agresividad es su mayor ventaja y su mayor riesgo. Bien posicionado, actúa como pieza central que ningún otro coral molestará; mal colocado, arrasará colonias que llevaban meses creciendo. Reserva 15 cm de margen, fíjalo a roca (no a arena, que se acumula bajo el disco y provoca recesión) y contrólalo en la fase nocturna, cuando los barredores están activos.

Tres ideas para llevarte: primero, identifica la especie correctamente y no la trates como Micromussa; segundo, mantén el KH por debajo de 0,7 dKH de variación diaria y sifona los septos cada semana; tercero, ante cualquier banda de tejido necrótico, corta 5 mm por delante del borde sano el mismo día. Con eso, una colonia de cinco pólipos se convierte en una pieza de referencia en dos o tres años.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

1. ¿Cómo distingo Acanthastrea echinata de Micromussa lordhowensis y de Homophyllia bowerbanki?

A. echinata forma colonias masivas o incrustantes con coralitos cerioides de 10–25 mm de diámetro y septos en tres o cuatro ciclos cuyos dientes son grandes, irregulares y marcadamente exsertos: el esqueleto «muerde» el tejido y produce el aspecto erizado que le da el nombre. Las costas son anchas y granuladas. Micromussa lordhowensis (antes Acanthastrea lordhowensis) tiene coralitos de 5–12 mm, septos poco exsertos y patrones de color concéntricos muy saturados; Homophyllia bowerbanki presenta coralitos mayores (25–40 mm), monocentricos y con septos gruesos y apenas elevados. La cresta septal dentada y exserta de A. echinata es diagnóstica en el esqueleto seco.

2. ¿Qué parámetros exactos necesita?

Temperatura 24–26 °C (rango 23–27), salinidad 35 g/L (34–36), dKH 7,5–9,5 sin oscilaciones superiores a 0,5 unidades al día, calcio 420–450 mg/L, magnesio 1290–1350 mg/L, nitrato 2–10 mg/L y fosfato 0,03–0,10 mg/L. Tolera bien aguas con nutrientes, pero es muy sensible a la inestabilidad de la alcalinidad y a los cambios bruscos de salinidad; con dKH sostenido por encima de 11 o con repuntes de amonio (resinas nuevas, arenas removidas) se retrae y puede perder tejido en 48 horas.

3. ¿Cuánta luz y corriente?

Entre 100 y 200 µmol·m⁻²·s⁻¹ de PAR, con fotoperiodo de 8–10 horas. Soporta sombra parcial (50–80 µmol) en acuarios con nitrato superior a 5 mg/L, pero mantiene mejor el contraste del disco oral con luz moderada. La corriente debe ser indirecta, de 10–20 cm/s: suficiente para que los pólipos se expandan y para arrastrar detritos, pero sin impacto directo sobre el cenosarco, que provoca retracción crónica y favorece la necrosis por sedimento acumulado en los valles.

4. ¿Cómo y con qué se alimenta?

Es un capturador nocturno: extiende los tentáculos 20–40 minutos después del apagado. Aliméntala 2–3 veces por semana con mysis, trozos de gamba o calamar de 3–5 mm y pellets de 2 mm, uno por coralito, con pipeta o pinza. La respuesta de captura tarda 5–10 minutos; retira lo no consumido a los 30 minutos, porque la comida en descomposición sobre el disco oral es la primera causa de necrosis localizada. No requiere alimentación para sobrevivir (es zooxantelada, con simbiontes del clado C de Cladocopium), pero come con avidez y acelera claramente el recubrimiento del esqueleto.</

Roberto Parra Jiménez 🎓 Biólogo Marino – Universidad de Hawaii (UH Mānoa)
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia

© 2026 Roberto Parra Jiménez – Biólogo Marino (UH Mānoa). Todos los derechos reservados.

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