Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia
📋 ÍNDICE DEL ARTÍCULO
- 1. 🌏 INTRODUCCIÓN
- 2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
- 3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
- 4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
- 5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
- 6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
- 7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
- 8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES
- 9. 🌍 CONSERVACIÓN Y SOSTENIBILIDAD
- 10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
- 11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
- 12. ✅ CONCLUSIÓN
1. 🌏 INTRODUCCIÓN
Acanthastrea echinata (Dana, 1846) es un coral pétreo hermatípico de la familia Lobophylliidae, conocido en el comercio como «acan echinata» o «coral piña» por la textura erizada de sus septos. Sus colonias son incrustantes a masivas, hemisféricas en ejemplares grandes, y pueden alcanzar cerca de un metro de diámetro en el arrecife, aunque en acuario lo habitual es trabajar con fragmentos de 2-5 cm con cuatro a ocho cálices. Los coralitos son cerioides, contiguos y comparten paredes, con diámetros de 8-20 mm (frecuentemente 10-15 mm), y se distinguen por sus septos en tres órdenes armados con dientes gruesos, sobresalientes y de aspecto espinoso —de ahí el epíteto echinata—. La columnela es trabecular y poco profunda, y el tejido interpolar (cenosarco) es escaso pero visible en los márgenes de crecimiento.
La coloración es extremadamente variable y no diagnóstica: fondos marrones, grises, verdes, rojos, granates o púrpuras, con discos orales de tono contrastado (verde lima, naranja o crema) y a menudo con una fina línea de tejido de color diferente en el borde del cáliz. Esa variabilidad, unida a la confusión taxonómica histórica, hace que muchos ejemplares vendidos como Acanthastrea pertenezcan en realidad a Micromussa (M. lordhowensis, M. amakusensis): la diferencia práctica es que A. echinata presenta cálices mayores e irregulares, con dientes septales muy marcados, mientras que Micromussa muestra pólipos pequeños, uniformes y «en botón».
En acuariofilia es uno de los LPS más indulgentes: tolera valores de calcio entre 380 y 450 mg/L, alcalinidad de 7-9 dKH, nitratos de 5-20 mg/L y fosfatos de 0,03-0,15 mg/L sin signos de estrés, y soporta mejor que la media los desajustes puntuales de salinidad (34-35 g/L). Su punto débil no es la química del agua sino la competencia y la depredación: es un coral voraz, de respuesta nocturna muy rápida, que requiere alimento particulado para mantener el ritmo de crecimiento y la pigmentación.
2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
Descrita por James Dwight Dana en 1846 a partir de material de la expedición Wilkes, la especie fue situada originalmente en el género Astraea y transferida después a Acanthastrea Milne Edwards & Haime, 1848. La revisión filogenética de Scleractinia de Budd y colaboradores (2012), apoyada en datos moleculares posteriores (Arrigoni et al., 2014), desligó al género de Mussidae y lo incluyó en la familia Lobophylliidae, un clado de corales masivos con marcada capacidad de digestión extracelular.
| Rango | Taxón |
|---|---|
| Reino | Animalia |
| Filo | Cnidaria |
| Clase | Anthozoa |
| Subclase | Hexacorallia |
| Orden | Scleractinia |
| Familia | Lobophylliidae (antes Mussidae) |
| Género | Acanthastrea Milne Edwards & Haime, 1848 |
| Especie | Acanthastrea echinata (Dana, 1846) |
| Autor y año | Dana, 1846 (como Astraea echinata) |
| Localidad tipo | Islas Fiyi, Pacífico central |
| Sinonimia frecuente | Acanthastrea grandis, A. patula (aplicación variable según autores) |
| Especies del género | ~10-12 aceptadas; A. echinata es la de mayor distribución |
| Simetría y esqueleto | Hexarradial; septos en 3 órdenes, dientes espinosos, columnela trabecular |
El género se caracteriza por coralitos cerioides con septos dentados y por la ausencia de la clara división entre coralitos que presentan otros lobofílidos. La pigmentación, la forma colonial y el tamaño del cáliz varían con la profundidad y la turbidez, lo que históricamente generó sinónimos hoy en revisión; la identificación fiable exige observar el esqueleto (número de septos, 24-36 en adultos, y su patrón de dentición), no el color.
3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
Su área de distribución abarca todo el Indo-Pacífico tropical: desde el mar Rojo y la costa de África oriental (Kenia, Tanzania, Madagascar) hasta Samoa, Tonga y el archipiélago de Ryukyu al norte (aproximadamente 30° N) y la costa occidental australiana, el mar de Coral y la Gran Barrera al sur. Es una especie abundante pero rara vez dominante, con densidad típica de unos pocos individuos por cada 100 m² de sustrato adecuado.
Ocupa un rango batimétrico amplio, desde el nivel de las charcas de marea (0 m) hasta unos 30-40 m, con óptimo entre 2 y 15 m. Los hábitats donde resulta más predecible son las llanuras arrecifales someras y las lagunas protegidas con sedimentación fina, los cayos de escombros, las paredes verticales y extraplomos, y los sustratos de roca muerta o coral muerto colonizados por algas incrustantes. Tolera turbidez, altas concentraciones de nutrientes y oscilaciones térmicas de 24 a 30 °C, lo que explica su presencia en zonas portuarias y arrecifes degradados donde otros esclarectínios desaparecen. En esos ambientes se comporta como colonizador oportunista: crece por incrustación sobre superficie libre y luego engrosa en domo.
Su éxito competitivo se basa en la agresividad química y digestiva: al contacto con un competente, A. echinata everte filamentos mesentéricos ricos en enzimas proteolíticas que digieren el tejido ajeno en horas, y responde a la presencia de otros corales con expansión de tentáculos nocturnos. Es, por tanto, un vecino peligroso en el arrecife y en el acuario. Su actividad trófica es principalmente nocturna: los pólipos permanecen retraídos de día y extienden tentáculos cortos y gruesos al apagarse la luz, capturando plancton, copépodos y materia orgánica particulada; la fotosíntesis de sus zooxantelas (clado C, Symbiodinium sensu lato) cubre solo parte de su balance energético, por lo que la alimentación heterótrofa es determinante para su crecimiento y color.
Para replicar ese nicho en cautividad, colóquelo en la zona baja del acuario con iluminación de 50-100 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR), flujo indirecto y suave (5-10 cm/s, sin impacto laminar directo sobre el tejido), y con espacio libre de al menos 8-10 cm alrededor para evitar agresiones. Un parámetro estable vale más que uno «perfecto»: temperatura de 25-26 °C, salinidad de 35 g/L y alcalinidad de 7,5-8,5 dKH sostienen sin problemas a esta especie, una de las más adecuadas para iniciarse en los LPS masivos.
4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
Acanthastrea echinata es la especie tipo del género y la única del complejo que conserva ese nombre tras las revisiones moleculares de Arrigoni y colaboradores (2016), que desplazaron a A. lordhowensis y A. bowerbanki a Micromussa y Homophyllia respectivamente. Esto importa en acuariofilia: la mayor parte de los «Acan» del comercio son Micromussa lordhowensis, con cálices de 6-12 mm y septos regulares, mientras que la verdadera echinata exhibe cálices claramente mayores y una dentición septal desproporcionada que le da el aspecto de una sierra tosca.
La colonia es cerioide —los corallites comparten paredes y adoptan contorno poligonal, normalmente pentagonal o hexagonal—, masiva a incrustante, y en ejemplares grandes puede volverse subhemisférica. El diámetro calicular oscila entre 8 y 20 mm, con casos de 25-30 mm en colonias de aguas turbias. El número de septos va de 12 a 24, repartidos en tres ciclos, y sus dientes son grandes, romos, irregulares y frecuentemente fusionados en crestas paliformes profundas; esta dentición es diagnóstica y persiste incluso en fragmentos pequeños. Las costas son gruesas, espinosas y quedan total o parcialmente cubiertas por coenosarcos, de modo que la superficie de la colonia aparece como un mosaico carnoso con valles esqueléticos apenas visibles. La columela es trabecular y poco profunda; el centro del cáliz está deprimido, lo que facilita la retención de presas.
Los pólipos presentan tentáculos cortos, cónicos y retráctiles, dispuestos en una o dos series, y un disco oral de 15-22 mm, a menudo con la boca ligeramente excéntrica. La coloración es muy variable y menos «diseñada» que en M. lordhowensis: dominan pardos rojizos, gris-verdosos y ocres, con el disco oral contrastado en verde, rojo o gris perla, y las puntas de los dientes septales casi siempre en blanco. El tejido es translúcido en zonas de expansión, lo que revela la trama esquelética subyacente.
Alberga zooxantelas de clados C (típicamente Symbiodinium generalistas tipo C1/C3), con densidad alta en el tejido, pero su dependencia de la fotosíntesis es menor que en otros Lobophylliidae. Es un heterótrofo voraz: captura mysis, krill y trozos de gamba de tamaño notable para su boca y digiere presas con filamentos mesentéricos que expulsa a través del celentero para atacar tejido competidor. No desarrolla tentáculos barredores tan largos como Euphyllia o Favia, pero su agresividad química y digestiva es elevada. El crecimiento radial del esqueleto es lento: la expansión se produce sobre todo por el avance del coenosarco, con acreción cálcica de pocos milímetros al mes.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
Procede de arrecifes someros a medias profundidades (0-40 m), frecuentemente en lagunas, fondos turbios y taludes protegidos del oleaje. Eso explica su tolerancia a nutrientes moderados y su mala respuesta a sistemas ultralimpios de tipo SPS. Los valores siguientes son el rango de trabajo estable; más importante que el valor absoluto es la constancia.
| Parámetro | Rango óptimo | Observaciones específicas |
|---|---|---|
| Temperatura | 24-26 °C | Tolera 22-28 °C; por encima de 28 °C sostenidos se produce expulsión de zooxantelas y recesión del coenosarco. |
| Salinidad | 35 g/L (1.025-1.026) | Resiste 33-36 g/L; evitar oscilaciones por reposición de agua dulce. |
| pH | 8,10-8,35 | Descenso nocturno admisible hasta 7,95; valores inferiores a 7,8 frenan la calcificación. |
| KH (alcalinidad) | 7,5-9,0 dKH | Estable; por encima de 11 dKH aparecen quemaduras en el disco oral. |
| Calcio | 410-450 mg/L | Con caída por debajo de 380 mg/L el esqueleto pierde densidad en la base. |
| Magnesio | 1.280-1.350 mg/L | Necesario para mantener el KH sin precipitación de carbonato cálcico. |
| Nitratos (NO₃) | 2-10 mg/L | Admite hasta 20 mg/L; con NO₃ ≈ 0 el coral se aclara y deja de crecer. |
| Fosfatos (PO₄) | 0,03-0,10 mg/L | Por encima de 0,15 mg/L se instalan algas filamentosas sobre el esqueleto expuesto y el tejido se oscurece. |
| Iluminación | 50-150 PAR (óptimo 75-120) | Luz moderada; someterlo a 250-300 PAR produce blanqueo del disco y retracción permanente. |
| Flujo | Moderado e indirecto (10-20× volumen/hora) | Movimiento caótico que agite suavemente el tejido; nunca corriente laminar directa sobre el disco. |
Con estas cifras, la iluminación es el parámetro donde más se falla: la especie se vende a menudo como «resistente a todo» y se coloca bajo LED de alta potencia, con el resultado de discos orales translúcidos y colonias que no expanden. Bajo luz fuerte responde cerrando pólipos durante horas y perdiendo el contraste del disco; bajo luz débil se mantiene abierta pero se vuelve uniformemente parda. El flujo debe ser suficiente para arrastrar el moco y los restos de comida sin deformar el pólipo: si el tejido se aplana o el disco se comprime lateralmente, la corriente es excesiva. Mantener el yodo y el estroncio en niveles de agua natural es suficiente; no requiere dosificación específica.
6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
Colócala sobre roca viva consolidada, no sobre sustrato suelto, para que el coenosarco pueda avanzar y fijarse. La base debe apoyar en superficie plana y estable, con el disco orientado hacia arriba o ligeramente inclinado; en posición vertical pierde capacidad de captura. Deja un margen libre de 10-15 cm respecto a otros LPS y de 20 cm respecto a SPS: los filamentos mesentéricos que expulsa al detectar contacto pueden digerir tejido de Favia, Caulastrea o incluso Montipora en una noche. Evita situarla en la trayectoria directa de bombas de movimiento, donde el moco y la comida se dispersan antes de que pueda capturarlos.
El crecimiento es lento y fundamentalmente lateral: en condiciones óptimas añade del orden de 1-4 nuevos corallites al año en una colonia de tamaño medio, con avance del coenosarco de 2-5 mm mensuales sobre la roca. La alimentación marca la diferencia: dos o tres tomas semanales de mysis, krill troceado, gamba cruda o pellets específicos de LPS, administradas al apagarse las luces y con los tentáculos extendidos, aceleran la gemación de forma evidente; sin alimentación, la colonia sobrevive y mantiene color, pero apenas crece.
Para fragmentar se necesita sierra de banda húmeda o Dremel con disco diamantado de 545; no sirve cortar con cúter ni fragmentar por torsión. El corte puede hacerse entre corallites, conservando el muro común, o atravesando un pólipo por su eje: ambas mitades regeneran el disco en 3-6 semanas, aunque los fragmentos de 3-6 corallites completos presentan mucha mayor supervivencia. Tras el corte, sumerge los fragmentos en disolución de yodo (10-25 mg/L durante 10-15 minutos) o en un baño coralino comercial, y aclara antes de devolverlos al acuario. Fija los trozos con cianoacrilato en gel o epoxi de arrecife sobre roca pequeña, dejando el corte hacia abajo si es posible.
Durante las primeras dos semanas mantén los fragmentos en zona de flujo suave-moderado y 75-100 PAR, sin alimentar hasta pasados 5-7 días, cuando los tentáculos vuelvan a extenderse. El riesgo principal es la infección por ciliados (la denominada «gelatina marrón»), que aparece en las superficies de corte expuestas con agua cargada de materia orgánica; un flujo adecuado y NO₃/PO₄ dentro del rango indicado lo minimizan. No manipules la colonia donante inmediatamente después del corte: deja que el coenosarco cierre el muro seccionado antes de moverla.
7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
Acanthastrea echinata es un LPS de pólipos carnosos y esqueleto masivo que puede desplegar tentáculos de barrido y filamentos digestivos, especialmente con iluminación apagada. En la práctica, mantén una separación mínima de 8-12 cm respecto a otros corales séiles y de 15 cm frente a SPS; una colonia bien alimentada puede inflarse y ampliar su radio de acción. No es un coral para nanos sin control de distancias: su agresividad química y física castiga a vecinos lentos como Favia, Favites o Lobophyllia.
Con peces, tolera bien especies reef-safe de nado tranquilo: Amphiprion ocellaris, Amphiprion percula, gobios (Gobiodon, Elacatinus), blénidos (Ecsenius), cirujanos del género Zebrasoma y lábridos pequeños como Halichoeres chrysus. Evita mordisqueadores confirmados: ángeles grandes (Pomacanthus), ángeles enanos (Centropyge), mariposas (Chaetodon), ballestas, monacántidos, Canthigaster y loros. Un solo mordisco puede abrir una lesión que derive en infección por “brown jelly”.
En invertebrados, son seguros Lysmata amboinensis, Lysmata debelius, cangrejos ermitaños Calcinus y Clibanarius, y caracoles Trochus, Cerithium y Nassarius; los ermitaños pueden robar alimento, así que dosifica la comida. Lysmata wurdemanni es variable: algunos individuos picotean tejido si están desnutridos. Prohíbe caracoles coralívoros (Drupella, Coralliophila), cangrejos oportunistas tipo “gorilla”, estrellas Acanthaster planci y erizos Echinometra que arañen la colonia. Las anémonas y otros cnidarios móviles deben quedar fuera del alcance de sus tentáculos.
8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES
El blanqueamiento en A. echinata suele comenzar por los bordes expuestos o por la cara superior: los pólipos pierden zooxantelas y muestran tonos pálidos antes de retraerse. Causas típicas: temperatura sostenida por encima de 29 °C, fluctuaciones diarias superiores a 2 °C, salinidad fuera de 34-35, iluminación directa intensa y cambios bruscos de alcalinidad. Mantén 24,5-26,5 °C, 34-35 de salinidad, 7-9 dKH, NO₃ entre 2 y 10 mg/L y PO₄ entre 0,03 y 0,1 mg/L; la estabilidad importa más que el valor puntual.
La RTN (necrosis rápida de tejido) se reconoce porque el tejido se desprende en jirones y deja esqueleto blanco en horas. Suele asociarse a lesiones previas, bacterias tipo Vibrio y parámetros inestables. Actúa rápido: aspira el tejido necrótico, corta una porción sana de al menos 1 cm por encima del borde afectado y desinfecta herramientas. El “brown jelly” produce un exudado marrón gelatinoso con olor fétido; retira la colonia a un recipiente de cuarentena, aspira el material y aplica un baño de yodo según fabricante, sin reutilizar el agua.
No hay un parásito específico documentado para Acanthastrea echinata; los problemas suelen ser infecciones oportunistas y epibiontes. Los platelmintos epibiontes (Waminoa, Convolutriloba) pueden cubrir la superficie y sombrear los pólipos: se combaten con baños de yodo y revisión semanal. Como plagas conviene vigilar Aiptasia, vermétidos, Bryopsis, cianobacterias y caracoles Drupella o Coralliophila. Una retracción de pólipos sin pérdida de color puede ser simple irritación por corriente fuerte, manipulación o peces; no la trates como enfermedad sin observar 24-48 horas.
9. 🌍 CONSERVACIÓN Y SOSTENIBILIDAD
Acanthastrea echinata está incluida en el Apéndice II de CITES como todos los escleractinios; su comercio internacional exige permisos de exportación e importación. La evaluación global de la UICN la sitúa como Preocupación Menor (LC) por su amplia distribución Indo-Pacífica, pero eso no implica que toda recolección sea sostenible: las colonias grandes y lentas de crecimiento son vulnerables a la extracción repetida y a la degradación del arrecife.
La acuacultura por fragmentación es viable y reduce la presión sobre poblaciones silvestres. Prefiere fragmentos cultivados, con esqueleto sano y tejido que cubra al menos el 70 % del corte; evita colonias con cortes recientes, bordes necróticos o pólipos excesivamente retraídos. La maricultura en viveros sumergidos, bien gestionada, permite obtener ejemplares con trazabilidad, pero no sustituye la protección del hábitat. Exige certificado CITES y documentación de origen; rechaza ejemplares sin trazabilidad o recolectados con métodos destructivos. No liberes fragmentos ni agua de acuario al medio natural: puede introducir patógenos y especies exóticas.
10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
1. Respeta el radio de barrido. Acanthastrea echinata es uno de los LPS más agresivos del hobby: emite tentáculos barredores de 10-15 cm, a veces más, que actúan de noche y digieren tejido ajeno en horas. Deja 15 cm libres de Euphyllia, Micromussa, Favia y cualquier SPS; el Acanthastrea gana casi siempre el combate. Si necesitas densidad, colócalo en la zona inferior y rodeado de roca desnuda.
2. Identifícalo bien antes de comprarlo. Los corallites de A. echinata son cerioides (muros compartidos), de 8-15 mm, con septos exsertos y espinosos —de ahí echinata— muy distintos de los de Micromussa lordhowensis (ex Acanthastrea), más pequeños y de septos finos. Esa diferencia importa: el echinata tolera peor la luz intensa y pica mucho más fuerte.
3. Alimenta de noche, boca por boca. Espera 30-60 minutos tras el apagado, cuando los tentáculos están extendidos. Con jeringa y aireación suave, deposita mysis enriquecido o trozos de gamba de 3-5 mm sobre cada boca, 2-3 veces por semana. Retira con pera de goma lo que no capture en 20 minutos: la comida fermentando entre los septos espinosos es la causa número uno de infecciones bacterianas.
4. Estabilidad de KH por encima de la cifra. Con esqueleto denso y crecimiento lento en volumen, una oscilación superior a 0,7 dKH/día provoca recesión basal que rara vez se detiene sola. Mantén 7,5-9,0 dKH con dosificadora y test semanal, no con aditivos manuales.
5. Sifona los septos, no los cepilles. La geometría espinosa retiene sedimento y detritus y se convierte en refugio de cianobacterias. Usa una pera de goma a media altura, nunca un cepillo ni un chorro directo de bomba, que desgarra el tejido interpolar.
6. Reconoce el «brown jelly» a tiempo. Si aparece una masa gelatinosa parda y el tejido se desprende, aspira, haz baño de yodo (Lugol, 10-15 minutos) y corta 5 mm por delante del borde sano con cizalla de hueso. El tejido afectado no se recupera: el esqueje sano, sí.
7. Flujo indirecto y moderado. Apunta a 15-20 veces el volumen del acuario por hora en total, pero sin impacto directo sobre el disco oral. Un chorro frontal continuo inflama el tejido y provoca retracción crónica que se confunde con enfermedad.
8. Luz: 60-150 PAR, con aclimatación real. Bajo repisas o en la mitad inferior con LEDs a 300+ PAR en superficie. Aclimata con malla difusora al 50 % durante 3-4 semanas; el blanqueo por exceso de luz en esta especie es rápido y deja cicatrices visibles durante meses.
9. Controla los invertebrados de limpieza. Las Lysmata y los ermitaños grandes roban comida directamente del disco; los gusanos planos (convolutrílidos, Waminoa), vermétidos y anémonas bola compiten por espacio. Revisa la base de la colonia con lupa cada mes.
10. Esqueja con sierra, no con alicate. Corta perpendicular, atravesando 4-6 mm de esclerénquima, y deja 3-4 semanas de cicatrización en zona de flujo suave. No hagas baño de agua dulce ni expongas el corte al aire más de 30 segundos.
11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
Plan anual para un sistema estable a 25 °C y 35 g/L. Ajusta la frecuencia según carga de peces y consumo de carbonatos.
| Estación | Tareas principales | Parámetros y observaciones |
|---|---|---|
| Primavera | Revisión de esquejes y cicatrización; sifonado profundo de septos; ajuste de fotoperiodo a 10-11 h; inspección de gusanos planos. | KH 7,5-8,5; NO₃ 5-10 mg/L; PO₄ 0,03-0,06 mg/L. Aprovecha para reaclimatar colonias movidas en invierno. |
| Verano | Control térmico con ventilador o enfriador; reposición de evaporación con agua de ósmosis; alimentación reducida a 2 veces/semana por menor apetito. | Techo 27 °C, nunca sostenido; salinidad 34-35 g/L. Vigila la deriva por evaporación: es la causa típica de recesión en agosto. |
| Otoño | Esquejado y fragmentación de colonias con más de 20 pólipos; refuerzo de alimentación con mysis y calamar; revisión de tentáculos barredores. | KH 8-9; Ca 420-450 mg/L; Mg 1280-1350 mg/L. Buen momento para recolocar con 15 cm de separación. |
| Invierno | Estabilidad térmica con calentador y controlador redundante; mínimo movimiento de colonias; inspección mensual de la base y de la línea de recesión. | 24-25,5 °C estables; NO₃ hasta 15 mg/L tolerado, con oscurecimiento de color. Evita cambios de agua superiores al 20 % semanal. |
12. ✅ CONCLUSIÓN
Acanthastrea echinata no es un coral «fácil de segunda fila»: es un LPS robusto, tolerante a nutrientes medios y a temperaturas variables, pero exigente en dos puntos concretos —estabilidad de alcalinidad y alimentación dirigida sin restos—. Su tolerancia a rangos amplios explica por qué muchos acuaristas lo mantienen años con aspecto marrón y plano: sobrevive, pero solo despliega color y expansión real con Par 60-150, flujo indirecto y comida nocturna dos o tres veces por semana.
Su agresividad es su mayor ventaja y su mayor riesgo. Bien posicionado, actúa como pieza central que ningún otro coral molestará; mal colocado, arrasará colonias que llevaban meses creciendo. Reserva 15 cm de margen, fíjalo a roca (no a arena, que se acumula bajo el disco y provoca recesión) y contrólalo en la fase nocturna, cuando los barredores están activos.
Tres ideas para llevarte: primero, identifica la especie correctamente y no la trates como Micromussa; segundo, mantén el KH por debajo de 0,7 dKH de variación diaria y sifona los septos cada semana; tercero, ante cualquier banda de tejido necrótico, corta 5 mm por delante del borde sano el mismo día. Con eso, una colonia de cinco pólipos se convierte en una pieza de referencia en dos o tres años.
❓ PREGUNTAS FRECUENTES
1. ¿Cómo distingo Acanthastrea echinata de Micromussa lordhowensis y de Homophyllia bowerbanki?
A. echinata forma colonias masivas o incrustantes con coralitos cerioides de 10–25 mm de diámetro y septos en tres o cuatro ciclos cuyos dientes son grandes, irregulares y marcadamente exsertos: el esqueleto «muerde» el tejido y produce el aspecto erizado que le da el nombre. Las costas son anchas y granuladas. Micromussa lordhowensis (antes Acanthastrea lordhowensis) tiene coralitos de 5–12 mm, septos poco exsertos y patrones de color concéntricos muy saturados; Homophyllia bowerbanki presenta coralitos mayores (25–40 mm), monocentricos y con septos gruesos y apenas elevados. La cresta septal dentada y exserta de A. echinata es diagnóstica en el esqueleto seco.
2. ¿Qué parámetros exactos necesita?
Temperatura 24–26 °C (rango 23–27), salinidad 35 g/L (34–36), dKH 7,5–9,5 sin oscilaciones superiores a 0,5 unidades al día, calcio 420–450 mg/L, magnesio 1290–1350 mg/L, nitrato 2–10 mg/L y fosfato 0,03–0,10 mg/L. Tolera bien aguas con nutrientes, pero es muy sensible a la inestabilidad de la alcalinidad y a los cambios bruscos de salinidad; con dKH sostenido por encima de 11 o con repuntes de amonio (resinas nuevas, arenas removidas) se retrae y puede perder tejido en 48 horas.
3. ¿Cuánta luz y corriente?
Entre 100 y 200 µmol·m⁻²·s⁻¹ de PAR, con fotoperiodo de 8–10 horas. Soporta sombra parcial (50–80 µmol) en acuarios con nitrato superior a 5 mg/L, pero mantiene mejor el contraste del disco oral con luz moderada. La corriente debe ser indirecta, de 10–20 cm/s: suficiente para que los pólipos se expandan y para arrastrar detritos, pero sin impacto directo sobre el cenosarco, que provoca retracción crónica y favorece la necrosis por sedimento acumulado en los valles.
4. ¿Cómo y con qué se alimenta?
Es un capturador nocturno: extiende los tentáculos 20–40 minutos después del apagado. Aliméntala 2–3 veces por semana con mysis, trozos de gamba o calamar de 3–5 mm y pellets de 2 mm, uno por coralito, con pipeta o pinza. La respuesta de captura tarda 5–10 minutos; retira lo no consumido a los 30 minutos, porque la comida en descomposición sobre el disco oral es la primera causa de necrosis localizada. No requiere alimentación para sobrevivir (es zooxantelada, con simbiontes del clado C de Cladocopium), pero come con avidez y acelera claramente el recubrimiento del esqueleto.</
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