Alveopora spongiosa

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Alveopora spongiosa es un escleractinio colonial de pólipos pequeños —pese a su encuadre comercial como «LPS»— cuyos cálices miden apenas 1,5-2,5 mm de diámetro, entre los más reducidos del género. La colonia es masiva, hemisférica o lobulada, de superficie irregular y a menudo nodular, con un diámetro habitual de 15-40 cm y ocasionalmente cercano a 1 m en hábitats protegidos. La coloración va del beige y el marrón grisáceo al verde oliva apagado, con las puntas de los tentáculos pálidas o blanquecinas; con los pólipos retraídos el esqueleto aparece blanco-crema y acribillado de poros.

Su carácter diagnóstico es interno: los 12 septos se reducen a espinas trabeculares unidas por una red porosa, de modo que el coralito carece de pared compacta y el coenosteum resulta fenestrado, ligero y esponjoso —de ahí el epíteto spongiosa—. Un fragmento de esta especie pesa notablemente menos que un Porites de volumen equivalente. La otra clave es el pólipo: Alveopora presenta 12 tentáculos, frente a los 24 de Goniopora, género con el que se confunde sistemáticamente en el comercio. Los pólipos se expanden frecuentemente durante el día, lo que convierte a esta especie en un coral de exhibición diurna.

En acuariofilia marina ocupa un nicho intermedio: es más indulgente que Goniopora en cuanto a nutrientes disueltos y no exige los valores ultrabajos de PO₄ de un SPS estricto, pero sigue siendo sensible a lo que mata a la mayoría de los «flowerpot»: oscilaciones de alcalinidad, daño mecánico en el tejido y estrés prolongado. Bajo condiciones adversas puede desencadenar polyp bailout, la liberación de pólipos vivos que abandonan el esqueleto; es un signo de alarma, no una estrategia de propagación aprovechable en cautividad. Su esqueleto poroso también la hace vulnerable a la bioerosión por esponjas y algas perforantes y a la invasión de la matriz por cianobacterias si el flujo es insuficiente.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

La historia taxonómica del género es instructiva. Dana describió la especie en 1846 dentro de los esquemas porítidos de la época, y durante más de un siglo Alveopora permaneció en Poritidae por convergencia morfológica: ambos géneros comparten coralitos diminutos con 12 septos y un esqueleto perforado. La diferencia es microestructural, no macroscópica: en Porites los septos son láminas fusionadas a una columela estiliforme sobre trabéculas sólidas, mientras que en Alveopora las 12 espinas septales quedan libres y conectadas por una red trabecular abierta. La revisión de Veron y Pichon (1982) y, sobre todo, la filogenia molecular de Fukami y colaboradores desplazaron el género a Acroporidae, criterio que sigue WoRMS; algunos trabajos genómicos recientes vuelven a discutir su segregación a nivel de familia, de modo que la adscripción a Acroporidae debe citarse como la vigente, no como definitiva.

Dentro del género, A. spongiosa se separa de A. viridis y A. daedalea por la colonia masiva (no ramificada ni digitada) y por el coenosteum especialmente poroso y de trama gruesa; el coralito carece de pared definida y los septos son espinas cortas y romas. Veron advirtió que las especies indopacíficas de Alveopora se intergradúan morfológicamente y que el complejo requiere revisión molecular: es probable que bajo el nombre A. spongiosa se agrupen varias entidades crípticas, lo que explica la variabilidad de tolerancias descrita por distintos acuaristas. Todo Scleractinia está incluido en el Apéndice II de CITES, por lo que su comercio exige permisos de exportación.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Especie ampliamente distribuida en el Indo-Pacífico: citada desde el mar Rojo y el África oriental hasta la Polinesia Francesa, con núcleos de abundancia en Indonesia, Filipinas, Papúa Nueva Guinea, la Gran Barrera de Coral y el archipiélago de Ryukyu. Ocupa un rango batimétrico de 0 a unos 20 m, con máxima frecuencia entre 3 y 15 m. No es un coral de cresta arrecifal batida: prefiere lagunas, llanuras arrecifales protegidas, reversos de arrecife y taludes resguardados del oleaje, donde el hidrodinamismo es moderado y la iluminación de media a baja.

Su hábitat más característico son los arrecifes turbios y de influencia siliciclástica, próximos a

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Colonia. Alveopora spongiosa (Dana, 1846) forma colonias submásivas de contorno lobulado e irregular: una costra gruesa de la que emergen lóbulos cortos, romos y aplanados que se fusionan entre sí, dejando senos y canales someros en la superficie. En el arrecife se desarrolla sobre sustrato consolidado de lagunas y planicies arrecifales turbias, y en acuario mantiene ese hábito compacto: una pieza de 8-15 cm de diámetro suele tener solo 5-8 cm de altura, con la superficie densamente tapizada de coralitos. No forma ramas finas ni columnas, lo que la diferencia de otras especies del género de morfología más digitiforme.

Esqueleto. El coralum es el más ligero y frágil de los LPS de mantenimiento habitual: un esqueleto trabecular de baja densidad (aspecto de piedra pómez, de ahí el epíteto spongiosa) que se rompe con la presión del pulgar. Los coralitos miden 2-3 mm de diámetro y tienen las paredes fenestradas: el coenosteo que los separa está constituido por trabéculas reticulares con poros que atraviesan la pared, de modo que los cálices contiguos quedan conectados por el tejido. Los septos están reducidos a una corona de 12 espinas delgadas y discontinuas, en dos ciclos, sin lóbulos paliformes ni columela prominente; por eso el cáliz vacío parece «hueco» y poroso al microscopio. Esta arquitectura abierta explica dos cosas: la ligereza de la pieza y la facilidad con que el tejido se desgarra al manipularla.

Pólipos. Expandidos miden 6-12 mm de diámetro y presentan exactamente 12 tentáculos, carácter diagnóstico frente a Goniopora, que tiene 24. Los tentáculos son largos, cilíndricos, muy flexibles y de extremo redondeado, dispuestos en un solo verticilo alrededor de un disco oral cónico y algo elevado; en ejemplares sanos el conjunto recuerda a un pequeño anemón de tentáculos digitiformes. La expansión es diurna y nocturna, con máxima apertura en las horas centrales de fotoperiodo, algo poco común entre los LPS y que los hace muy demandados. El color va del marrón rosado al verdoso, con los ápices tentaculares pálidos o blancos y el disco oral frecuentemente contrastado en verde o azul; la fluorescencia verde bajo actinicos es intensa.

Zooxantelas y nutrición. Alberga densidades altas de Symbiodinium del clado C, y la fracción autótrofa cubre la mayor parte de su presupuesto energético. No obstante, la porosidad del coenosteo y su origen en aguas turbias apuntan a una heterotrofia relevante: captura partículas finas (0,2-1 mm: rotíferos, huevos de ostra, nauplios) mediante redes de mucus, y aprovecha materia orgánica disuelta. En la práctica esto significa que el coral tolera niveles de nitrato y fosfato moderadamente altos mejor que otros LPS, pero se deteriora en sistemas ultralimpios (NO₃ <1 mg/L) mantenidos con luz intensa. Conviene conocer el llamado "síndrome de Alveopora": recesión basal lenta y progresiva durante meses sin patógeno identificable, más frecuente en importaciones silvestres recién aclimatadas que en clones de acuario.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocación. La posición óptima es el tercio inferior del acuario, sobre arena o roca baja y en zona de sombra parcial respecto a la iluminación central. Requiere una zona de flujo alterno pero no directo: cerca de una bomba de movimiento que gire, nunca en el chorro. Es un coral débilmente agresivo —sus tentáculos extienden filamentos cortos que irritan poco— pero sobre todo es víctima: no debe tocar Galaxea, Euphyllia, Lobophyllia ni Zoanthus, que lo necrosan por contacto o competencia química. Tampoco conviene situarlo en roca viva porosa con Actinodiscus, que lo invade y lo desplaza en pocos meses. Para fijarlo, secar solo la base esquelética y usar cianoacrilato en gel (la masilla epoxi en contacto con tejido provoca necrosis local); si el fragmento es pesado, sostenerlo con una goma elástica a una piedra plana durante 10-14 días. Reservar además una zona de baja corriente para la aclimatación de piezas nuevas.

Crecimiento. Es de los LPS más rápidos cuando encuentra su nicho: 0,5-1,5 cm lineales de extensión al mes y engrosamiento simultáneo de la masa, de modo que una pieza de 6 cm puede duplicar su diámetro en 10-14 meses. El crecimiento se produce por adición de coralitos en los márgenes del lóbulo y por coalescencia de lóbulos; la densidad del esqueleto hace que la biomasa crezca menos de lo que sugiere el volumen. La tasa se correlaciona directamente con la alimentación

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Alveopora spongiosa carece de tentáculos barredores verdaderos como los de Galaxea o Euphyllia, y sus cnidocitos están entre los más débiles de los LPS: un pólipo extendido —2 a 3 cm por encima del esqueleto poroso— rara vez necrosa a un vecino sano, pero lo irrita de forma continua y provoca retroceso de tejido en la línea de contacto. Mantén 8–10 cm de separación con Montipora, Seriatopora y otros SPS de crecimiento rápido. En sentido inverso es víctima fácil: Hydnophora, Galaxea, Catalaphyllia y Physogyra la matan en 24–48 h si sus tentáculos la alcanzan. Los tejidos blandos (Sarcophyton, Sinularia, Lobophytum) liberan terpenos que inhiben la expansión de sus pólipos; con Xenia, Briareum y Zoanthus el problema es mecánico, la sobrecrecen. Carbón activado en continuo y 5–10 % de cambio semanal son imprescindibles en cubas mixtas.

Peces de alto riesgo: cualquier Chaetodontidae (Chaetodon lunula, C. collare, C. semilarvatus) picotea sus pólipos carnosos; los Pomacanthidae, incluso los enanos (Centropyge loricula, C. bispinosa, C. flavissima), desarrollan la conducta con el tiempo y no con el tamaño; Monacanthidae (Pervagor melanocephalus, Cantherhines), Balistidae (Rhinecanthus), Tetraodontidae (Canthigaster) y Scaridae destruyen la colonia en días. El picoteo es acumulativo: una colonia con pólipos retraídos solo en una zona es el primer síntoma.

Compañeros seguros: Amphiprion ocellaris, Cirrhilabrus, Paracheilinus, Pseudanthias, Chromis, Nemateleotris, Gramma loreto, Ecsenius y Salarias la ignoran. Ctenochaetus strigosus y Zebrasoma flavescens son herbívoros y respetan el tejido, aunque un ejemplar adulto en 200 L puede rozarla al pastar.

Invertebrados: seguros Lysmata amboinensis, L. debelius, Alpheus, Trochus, Turbo, Cerithium, Nassarius, Linckia laevigata y pepinos de mar. Riesgo real: Rhynchocinetes durbanensis y Stenopus hispidus pican pólipos; cangrejos Percnon gibbesi y ermitaños grandes (Clibanarius, Calcinus) erosionan la base al trepar; Diadema setosum raspa el esqueleto y Protoreaster nodosus es coralívoro obligado. Nunca la coloques en el radio de acción de una anémona huésped móvil (Stichodactyla, Entacmaea): la quemadura de nematocistos es irreversible.

8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES

Blanqueamiento: por encima de 28,5 °C sostenidos, o con PAR superior a 300 µmol·m⁻²·s⁻¹ sin aclimatación, pierde sus simbiontes (

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

Identifícala antes de comprarla. Alveopora spongiosa (Dana, 1846) tiene coralitos de 3-5 mm con septos fenestrados —una red de trabéculas perforadas, no láminas macizas— y pólipos con exactamente 12 tentáculos. Si cuentas 24, es una Goniopora y el protocolo cambia por completo. Su esqueleto es extraordinariamente poroso y ligero: pesa mucho menos de lo que sugiere su volumen, y eso condiciona tanto el manejo como el pegado. La forma típica es ramificada-columnar, con ramas gruesas que se fusionan en la base formando una masa esponjosa. Dentro del género es de las más tolerantes, pero sigue en la franja intermedio-avanzada: no es un coral para un acuario de tres meses.

El cierre de pólipos no es muerte. Tras el transporte puede permanecer completamente retraída entre 5 y 10 días, con el tejido brillante y contracturado. No la cambies de sitio cada dos días ni la «rescates» moviéndola: cada manipulación reinicia el reloj. Déjala en una zona de flujo suave e indirecto, con luz atenuada, y alimenta por la noche, cuando expande de forma natural. Si a los 12 días sigue cerrada y aparecen zonas blanquecinas con hilos mucosos, sospecha infección bacteriana, no falta de luz.

Iluminación: menos de lo que crees. Fotoadáptala a 80-150 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR) durante las primeras cuatro semanas, con fotoperiodo de 9-10 h, y sube después hasta 150-200 sin superar las 11 h. Espectro con picos en 420-470 nm; las lámparas de 6.500-10.000 K muy intensas la blanquean en días. La señal de exceso es inequívoca: los pólipos se alargan, pierden color y aparece tejido translúcido en las puntas de las ramas. La señal de defecto es la opuesta: pólipos cortos, base pálida y crecimiento nulo.

Flujo alternante y nunca laminar. Busca movimiento oscilante de los tentáculos sin que se doblen, con renovación total del acuario de 15-25 veces el volumen por hora repartida entre dos bombas en ciclos contrarios. Una corriente directa sobre la colonia provoca retracción permanente y recesión del tejido basal en dos o tres semanas; es el error más frecuente con esta especie.

La alimentación es el factor limitante real. Sus zooxantelas no cubren el gasto energético, y la mayoría de los colapsos a los 4-8 meses son hambruna crónica, no enfermedad. Necesita partículas de 40-500 µm, priorizando el rango 100-300:

• Rotífero (Brachionus) y copépodos congelados o vivos, 100-300 µm.
• Nauplios de Artemia instar I de menos de 24 h (400-500 µm, ideal para ramas grandes).
• Huevos de ostra o alimentos secos micronizados (40-80 µm) en suspensión.
• Fitoplancton (Nannochloropsis, Tetraselmis) 2-3 veces por semana, útil sobre todo en acuarios con nutrientes bajos.

Dosifica con pipeta o jeringa a 5-10 cm de la colonia, con la circulación parada 10 minutos, 3-4 veces por semana y preferentemente al apagar luces. Confirma que come: los pólipos capturan la partícula y se cierran parcialmente sobre ella en 20-60 segundos. Complementa con aminoácidos libres 1-2 veces por semana, sin exceder la dosis del fabricante.

Química: el KH manda. Es más sensible a la oscilación que al valor absoluto. Mantén 7,5-8,5 dKH con variación inferior a 0,3 dKH al día; un salto de 1 dKH provoca recesión en horas. Ca 420-450 mg/L, Mg 1.300-1.350 mg/L, salinidad 35 g/L, temperatura 24-26 °C estable. No la mantengas en sistemas ultraoligotróficos: con NO₃ por debajo de 1 mg/L y PO₄ indetectable, el coral se consume. Apunta a NO₃ 5-15 mg/L y PO₄ 0,03-0,10 mg/L. No dosifiques yodo a ciegas: en exceso es tóxico para el tejido fino de este género.

Manejo y patología. Evita baños de yodo y «dips» agresivos: el tejido es muy delicado y el estrés añadido agrava cualquier problema. Para pegar, usa cianocrilato en gel sobre esqueleto muerto —nunca sobre tejido vivo— o epoxi en la base; seca ligeramente la zona de contacto, porque el esqueleto poroso absorbe el adhesivo. Ante la «jelly» marrón, aspira la zona, corta con sierra de banda dejando ≥5 mm de tejido sano de margen y descarta la rama si avanza más de 1 cm al día. Si la colonia expulsa pólipos (bailout), no los tires: en zona de bajo flujo sobre gravilla pueden regenerar esqueleto. Fragmente solo ramas de 3 cm o más, con 20-30 pólipos, y deja 2-3 semanas de cicatrización.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

12. ✅ CONCLUSIÓN

Alveopora spongiosa no falla por un parámetro espectacular, sino por la acumulación de tres errores silenciosos: flujo directo sobre la colonia, alimentación insuficiente y oscilaciones de alcalinidad. Si controlas esos tres frentes y mantienes NO₃ en 5-15 mg/L, es un coral estable, de crecimiento lento pero constante, que recompensa con una expansión de pólipos diurna poco habitual en el género. Compra siempre una colonia con tejido íntegro, sin zonas blancas ni bordes retraídos, aclimátala por goteo 45-60 minutos y déjala 24 horas a oscuras. Cuenta los tentáculos al recibirla: doce confirman que tienes la

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

Alveopora spongiosa tolera mejor que Goniopora stokesi las aguas con nutrientes, pero su esqueleto poroso —septos perforados y coenosarc escaso— la hace muy sensible a la oscilación de la alcalinidad, más que a su valor absoluto. Fija el objetivo en dKH 7,5–8,5 (nunca por encima de 9,5), Ca 420–440 mg/L, Mg 1280–1350 mg/L y salinidad 35 g/L a 25,5–26 °C; con NO₃ entre 5 y 15 mg/L y PO₄ 0,05–0,12 mg/L mantiene la expansión de los pólipos (12 tentáculos, diagnóstico frente a los 24 de Goniopora) y evita la recesión del tejido en los ápices septales, primer signo de KH inestable. Más que perseguir cifras, importa la deriva: ±0,3 dKH al día y ±0,5 °C. Aclimata cualquier ejemplar nuevo 60–90 minutos por goteo y mantén el mismo régimen de dosificación tras el traslado; un cambio de sal de marca con distinta proporción iónica puede desencadenar necrosis en 72 h. Con estas condiciones, su crecimiento coralino, lento (2–4 mm/mes en ramas), es estable.

En competencia química, Alveopora spongiosa es receptora, no emisora: carece de tentáculos barredores desarrollados y su única defensa es la retracción rápida del pólipo y la producción de mucus. Cualquier Sinularia, Sarcophyton, Lobophytum o Briareum libera terpenos y diterpenos que en 500 L a concentración submicrogramolar bastan para mantener los pólipos semicerrados durante días y abrir la puerta a infecciones bacterianas. La distancia mínima eficaz es 20 cm a sotavento del flujo; si detectas retracción matinal persistente con nutrientes bajos, el carbono activado (200–300 g/500 L, renovado cada 3–4 semanas) y el ozono a ORP 300–350 mV son la corrección más rápida. Al revés, ella no gana terreno: contra Euphyllia, Hydnophora o Galaxea pierde siempre por contacto directo, con necrosis lineal que avanza 1–2 mm/día desde la zona de roce. Separa esqueletos 12–15 cm y no confíes en la retracción como señal de compatibilidad: la lesión química aparece una o dos semanas después del contacto visual.

Procede de lagunas y arrecifes someros con sedimento en suspensión; su ventana útil está en PAR 80–150 µmol/m²/s (fotoperiodo de 10–12 h) y rara vez responde bien por encima de 250, donde la fotoinhibición se traduce en pólipos cortos y palidez del coenosarc. Los cambios de luz deben escalonarse: sube un 10 % semanal durante 3–4 semanas, nunca un 30 % de golpe; su simbionte (un Cladocopium poco flexible) tarda en reajustar la densidad de pigmentos y la aclimatación brusca provoca blanqueamiento en la periferia de la colonia. El flujo ideal es aleatorio y moderado, 10–15 cm/s de velocidad media, con corrientes intermitentes que retiren mucus y detrito depositado entre pólipos: la sedimentación crónica sobre el disco oral es la causa silenciosa de recesión basal en esta especie. Evita chorros laminares directos de 20 cm/s o más, que impiden la apertura, y coloca la colonia en zona de renovación sin impacto frontal, siempre sobre roca, nunca enterrada en arena.

Los fallos poco frecuentes pero característicos de Alveopora spongiosa son tres. Primero, la liberación de plánulas y el bailout de pólipos: ante estrés térmico o químico los pólipos se desprenden vivos y se reasientan en la roca; no es reproducible a voluntad, pero indica que la colonia lleva días al límite. Segundo, la infección por ciliados y la «gelatina marrón» que aparece 24–48 h después de rozar el esqueleto al fragmentar o trasladar; el corte con cortapernos, menos de 30 s fuera del agua y un baño de yodo a 12,5 mg/L durante 10 minutos reducen el riesgo, y ante el primer signo gelatinoso hay que aspirar y volver a bañar, no esperar. Tercero, la bioerosión: su esqueleto poroso es colonizado por esponjas perforantes (Cliona) y algas endolíticas que vacían la base sin signos externos hasta que la colonia colapsa. Revisa la base con lupa cada 3 meses y descarta ejemplares con poros negros o polvo fino en la roca bajo la colonia.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Cómo distingo Alveopora spongiosa de una Goniopora?

Alveopora spongiosa tiene 12 tentáculos por pólipo; Goniopora presenta 24. En el esqueleto, los septos de Alveopora son espinas porosas y ligeras, con aspecto esponjoso, mientras que en Goniopora son más sólidos y numerosos. A. spongiosa forma colonias ramosas a submásivas, con coralitos pequeños —del orden de 2–3 mm— y pólipos que se abren durante el día. La identificación definitiva exige observar el coralito retraído y la estructura septal, no solo el color. Aunque se comercia como LPS, taxonómicamente se sitúa en Poritidae.

¿Qué parámetros exactos necesita?

Temperatura 24–26 °C, salinidad 35 g/L (densidad 1.025–1.026), pH 8,1–8,4, alcalinidad 7–9 dKH, calcio 420–450 ppm y magnesio 1280–1350 ppm. Nitrato 2–10 ppm y fosfato 0,03–0,08 ppm favorecen su mantenimiento; los valores indetectables prolongados no son aconsejables. Es más sensible a la oscilación de alcalinidad que a un valor concreto: no superar 1 dKH de cambio diario ni 1,5 dKH en 24 h. Mantener magnesio por encima de 1250 ppm para evitar recesión basal.

¿Qué iluminación y corriente soporta?

Iluminación moderada: 100–150 PAR, con máximo de 200 PAR solo tras aclimatación gradual de 4–6 semanas. Fotoperiodo de 8–10 h. Prefiere flujo aleatorio e indirecto de 10–15 cm/s; un chorro laminar directo desgarra el tejido y retrae los pólipos. Colocarla en zona media o media-baja, con espacio de 8–10 cm frente a otros corales para evitar competencia por sombreado y contacto. En tanques con LED, empezar al 40–50 % y subir semanalmente.

¿Cómo y con qué se alimenta?

Es zooxantelado, pero captura microplancton. Ofrecer rotíferos (50–200 µm), nauplios recién eclosionados de Artemia, copépodos y plancton congelado finamente picado 2–3 veces por semana, preferentemente con luces apagadas y pólipos abiertos. No alimentar con trozos grandes ni con fitoplancton grueso. La alimentación no sustituye parámetros estables. Si aparecen algas en la base o el agua se enturbia, reducir cantidad y mejorar filtración; el exceso de alimento eleva fosfato y favorece recesión.

¿Por qué pierde tejido o se retrae?

La recesión rápida suele asociarse a cambios bruscos de alcalinidad, magnesio inferior a 1200 ppm, infección bacteriana, picaduras de vecinos o sedimentación sobre la base. La “gelatina marrón” exige aspirar el tejido afectado, aislar el fragmento y aplicar baño de yodo según dosis de etiqueta durante 10–15 min. No usar baño de agua dulce. Revisar también estroncio y yodo solo si hay medición fiable; añadir indiscriminadamente puede empeorar. La retracción diurna aislada puede ser normal si los pólipos se expanden por la noche.

¿Cómo se fragmenta y aclimata?

Cortar ramas terminales de 2–4 cm con sierra de diamante o alicate limpio, evitando dañar el coralito madre. Montar sobre base cerámica con resina o pegamento para coral, aplicar baño de yodo y mantener en cuarentena con flujo moderado y 80–100 PAR. La cicatrización tarda 2–4 semanas; no manipular hasta que el tejido cubra el corte. Aclimatar gota a gota 45–60 min y ajustar temperatura y salinidad antes de introducir. Evitar fragmentar colonias recién importadas o con recesión activa.

📚 REFERENCIAS

• Dana, J.D. (184

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