Micromussa lordhowensis

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Micromussa lordhowensis (Veron & Pichon, 1980, descrita como Acanthastrea lordhowensis y reasignada a Micromussa por Arrigoni y colaboradores en 2016) es un merulínido de colonia submassiva: parte de una base incrustante sobre roca y desarrolla cúpulas hemisféricas que rara vez superan los 20–25 cm; no ramifica en ningún caso.

• Corallites cerioides y monocéntricos, de contorno poligonal a circular, con diámetro adulto de 8–16 mm (lo habitual, 10–14 mm). Comparten muros septotecales: los flancos de pólipos contiguos están fusionados y las costae son confluyentes y de grosor similar, sin costae desiguales.
• Septos en tres ciclos (12–24 según el cáliz), con dentición gruesa y lóbulos paliformes muy marcados en el ciclo interno. La columela es trabecular y poco desarrollada, carácter que separa a la especie de los Acanthastrea sensu stricto, con columela más compacta y profunda.
• Pólipo carnoso y voluminoso: el tejido cubre por completo el esqueleto y, en expansión máxima, el disco oral alcanza 20–25 mm. Los tentáculos, en dos ciclos y de solo 3–6 mm, son retráctiles y permanecen plegados durante el fotoperiodo; se extienden de noche o ante estímulo alimentario. Practica digestión extracelular y proyecta filamentos mesentéricos para digerir tejido de colonias vecinas.
• Zooxantelas: simbiontes del género Cladocopium (antes Symbiodinium clado C), con densidad alta y aporte trófico relevante. La coloración —rojo, verde, naranja, morado y morfos «rainbow»— resulta de la combinación de clorofilas del simbionte con cromoproteínas fluorescentes del coral; un ejemplar pálido indica pérdida de simbiontes, no ausencia de pigmento.
• Esqueleto de aragonito denso, pesado para su volumen, con crecimiento exclusivamente lateral y sin ramas. Los pólipos conservan la capacidad de separarse del esqueleto (polyp bail-out) ante estrés térmico o químico, y de regenerar esqueleto nuevo a partir del tejido desprendido.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Iluminación. Es una especie de profundidad media: en la naturaleza ocupa caras inclinadas y zonas sombreadas del arrecife. Con LED, sitúala en el tercio inferior o en una repisa orientada lateralmente; con T5, en la mitad baja del tanque. Un ejemplar expuesto a PAR >200 µmol·m⁻²·s⁻¹ mantiene los pólipos semi-retraídos, muestra el esqueleto en los márgenes y aclara el tejido en 10–15 días, mientras que un exceso de sombra (PAR <40) lo vuelve marrón oscuro y frena el crecimiento. Aclimata cualquier cambio lumínico al 60 % durante dos semanas.

Flujo. Necesita movimiento que renueve el agua sobre el coenosarco sin golpear directamente los pólipos: un flujo turbulento de 5–15 cm/s, suficiente para que los tentáculos oscilen sin plegarse ni mantener restos en suspensión sobre el disco. El chorro laminar constante produce retracción crónica y recesión del tejido en el borde expuesto; el flujo insuficiente acumula detritus entre corallites y desencadena necrosis focal.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

<p

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Micromussa lordhowensis es un LPS carnoso cuya agresividad ofensiva supera lo que sugiere su aspecto. Al detectar tejido ajeno, extruye filamentos mesentéricos cargados de enzimas digestivas a través del estomodeo y de la ectodermis, y digiere al vecino en 12-48 h, dejando una franja blanquecina de esqueleto desnudo. La excepción es la intraespecífica: fragmentos de distinto morfo, al contacto, se fusionan o cohabitan sin necrosis, lo que permite construir placas mixtas siempre que se partan de fragmentos pequeños y se dejen crecer juntos. Distancias mínimas recomendadas: 8-10 cm respecto a Trachyphyllia, Lobophyllia, Favia y Favites; 20-25 cm de Galaxea, Euphyllia (tentáculos barredores de hasta 15 cm), Catalaphyllia y Physogyra. Frente a SPS la agresión es letal en 24 h.

• Peces seguros: Amphiprion, Chromis, Pseudanthias, Gramma loreto, gobios del género Cryptocentrus, blénidos (Salarias, Ecsenius), Zebrasoma flavescens. Los cirujanos no dañan el tejido, aunque al pastorear pueden aplastar pólipos jóvenes de 10-15 mm.
• Peces de riesgo real: ángeles enanos (Centropyge loricula, C. eibli, C. bispinosus) y ángeles mayores (Pomacanthus imperator juvenil, P. semicirculatus) picotean el manto carnoso; mariposas (Chaetodon lunula, C. collare, C. semilarvatus); ballestas (Balistoides, Rhinecanthus); globos (Arothron, Diodon, Canthigaster); lábridos del género Thalassoma, que voltean la colonia buscando invertebrados; y loros (Scarus, Chlorurus), incompatibles por dentición trituradora.
• Invertebrados seguros: Lysmata amboinensis, L. debelius, ofiuros, Strombus, Cerithium, pepinos de mar y estrellas Fromia / Linckia.
• Invertebrados problemáticos: Lysmata wurdemanni (camarón pimiento) esquilma pólipos si está poco alimentado; Mithraculus sculptus y ermitaños de talla grande (Dardanus, Calcinus) fracturan el esqueleto al desplazarse; Diadema y Echinometra abrasionan el tejido al raspar la roca; caracoles Coralliophila y Drupella consumen directamente el cenosarco; Protoreaster linckii es depredador de pólipos.

8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMÚNES

Blanqueamiento. En esta especie se manifiesta como pérdida de color centrífuga del disco, con el manto aún expandido. Causas típicas: temperatura sostenida por encima de 27-28 °C (su óptimo subtropical es 24-26 °C), salto brusco de PAR al cambiar a LED de alta intensidad (más de 250-300 µmol·m⁻²·s⁻¹ sin aclimatación de 4-6 semanas), o caída de salinidad por reposición mal calibrada. La recuperación exige 4-8 semanas con alimentación dirigida a base de mysis y trozos de gamba de 5-8 mm dos o tres veces por semana.

RTN y necrosis de base. El tejido se desprende del esqueleto en sábanas en 24-48 h, casi siempre tras una lesión de fragmentación, una subida de KH superior a 1 dKH/día o un pico térmico. Es un proceso bacteriano oportunista (Vibrio, Arcobacter). Protocolo: fragmentar 1 cm por delante del frente necrótico, descartar el fragmento afectado, baño de yodo (Lugol al 5 % a 5 ml/L, 5-8 min) y aumentar el flujo hasta 20-25 renovaciones/hora.

Enfermedad del gel marrón (BJD). Masas gelatinosas pardas de olor pútrido sobre el pólipo, producidas por ciliados (Philaster guamensis, Porpostoma notatum), casi siempre secundarias a una herida. Se aspira el gel con sifón, se aísla la colonia y se aplica el mismo baño de yodo; los pólipos vecinos se separan con corte de disco.

STN y recesión crónica. Retracción lenta del cenosarco desde la base a lo largo de semanas: revisar Mg (1300-1350 ppm), KH (7,5-9 dKH, estable ±0,3), yodo y potasio, y descartar competencia por sombra con algas filamentosas.

Parásitos y plagas. Copépodos harpacticoides y planarias coralívoras que se refugian entre pólipos, caracoles Coralliophila en la cara inferior de la colonia (revisar tras cada compra), Aiptasia y vermétidos que irritan con sus redes de moco, Valonia y cianobacterias que sofocan el borde de crecimiento. Cuarentena de 3-4 semanas con observación diurna y nocturna, y baño

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

1. Aclimatación lumínica: el error más caro con esta especie. Micromussa lordhowensis —descrita originalmente como Acanthastrea lordhowensis y reubicada en Micromussa en 2016— proviene de arrecifes australianos (Lord Howe, Gran Barrera) con luz moderada y agua a menudo turbia. En acuario rinde de forma óptima entre 75 y 150 PAR; por encima de 180-200 PAR sin adaptación, los morfos «rainbow» y rojos viran a marrón o blanquean en la zona central del pólipo. Colócala en la mitad inferior del tanque o en sombra parcial de roca viva y sube 10-15 % la intensidad cada dos semanas, nunca de golpe.

2. Aprovecha su respuesta nocturna para alimentar. Los pólipos (5-8 mm de diámetro, con varias bocas por colonia) extienden los tentáculos entre 1 y 2 horas después del apagado. Con un cono de alimentación o jeringa dirigida, administra 1-2 mysis descongelados y enjuagados por pólipo, 2-3 veces por semana, más una ración semanal de pellets de 1 mm. La alimentación sostenida acelera la gemación y mantiene la saturación de color; el exceso, en cambio, eleva NO₃ y PO₄ y favorece algas en el esqueleto expuesto.

3. Estabilidad de la alcalinidad por encima de la cifra exacta. Es más sensible a las oscilaciones de KH que otros LPS: tolera 7,5-8,5 dKH, pero no variaciones superiores a 0,3 dKH al día. Un desajuste brusco provoca retracción del tejido y recesión en el borde del esqueleto. Mantén también salinidad constante a 35 g/L (1,025) y evita cambios de agua superiores al 15 % sin igualar temperatura y densidad.

4. Flujo medio y alterno, jamás directo. Un chorro continuo sobre la colonia la mantiene semicerrada, impide la extensión de los tentáculos y erosiona el tejido del margen. Busca movimiento suave y ondulante del tejido carnoso, con corrientes alternas de 10-15 veces el volumen del tanque por hora en el conjunto del sistema, no necesariamente sobre el coral.

5. Espaciado por tentáculos barrenderos y crecimiento incrustante. Aunque es más pacífica que Acanthastrea echinata, desarrolla tentáculos barrenderos nocturnos y avanza sobre la roca. Deja 8-10 cm de margen respecto a Euphyllia, Galaxea, Favia o colonias de zoántidos. Fíjala con epoxy o cianoacrilato a roca firme; nunca la dejes sobre la arena, donde la irritación por sedimento provoca recesión basal.

6. Fragmenta con margen de seguridad. Para fragmentar, corta con sierra de banda atravesando tejido y esqueleto, dejando al menos dos bocas por fragmento. Baño de yodo diluido (según fabricante) durante 5-8 minutos y vuelta a flujo moderado. Las heridas abiertas son la puerta de entrada de infecciones bacterianas tipo «brown jelly»: si aparece una masa marrón gelatinosa, aspira con manguera, aísla el fragmento y repite baño de yodo; no esperes 24 horas.

7. Selecciona el fragmento con criterio. Compra colonias de 3-5 pólipos con esqueleto íntegro, sin líneas de recesión ni algas incrustadas en la base, y con todas las bocas cerradas de forma compacta. Un fragmento de un solo pólipo tarda meses en estabilizarse y es más propenso a infecciones. Su crecimiento por gemación es de 1-3 pólipos al mes en condiciones óptimas; los morfos «rainbow» y amarillos crecen más despacio.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

12. ✅ CONCLUSIÓN

Micromussa lordhowensis es un LPS de dificultad media-baja dentro de los corales pétreos, pero exige tres cosas concretas: luz moderada bien aclimatada, alcalinidad estable y alimentación dirigida aprovechando su actividad nocturna. Con 75-150 PAR, 7,5-8,5 dKH, 35 g/L de salinidad, 24-26 °C y una o dos tomas semanales de mysis, una colonia de 4-5 pólipos puede duplicar su número en seis o nueve meses. El fallo típico no es la calidad del agua, sino el exceso de luz sin adaptación y el flujo directo sobre el tejido. Respeta el espaciado, fragmenta con corte limpio y baño de yodo, y revisa el esqueleto basal cada semana: es la mejor forma de detectar a tiempo la recesión o una infección. Bien mantenida, es una de las especies con mejor relación entre color, resistencia y facilidad de propagación en acuario de arrecife.

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

Micromussa lordhowensis tolera nutrientes moderadamente altos (NO₃ 10-20 mg/L, PO₄ 0,05-0,10 mg/L) mucho mejor que un sistema ULNS: en agua empobrecida adelgaza el tejido y pierde la capacidad de inflar los pólipos. El punto crítico no es el valor absoluto de KH sino su estabilidad; oscilaciones superiores a 0,7 dKH en 24 h provocan retracción y, en 48-72 h, necrosis marginal con exposición de septos, cuadro que se confunde a menudo con infección bacteriana. Mantén 7,8-8,5 dKH, Ca 420-440 mg/L y Mg 1320-1380 mg/L, pero verifica el magnesio por ICP: por debajo de 1250 mg/L se desacopla la relación Ca/KH y aparece desprendimiento de tejido en la base del corallite sin que los test de Ca y KH detecten anomalía alguna. Salinidad a 35 g/L y temperatura de 25-26 °C son poco negociables; por encima de 27,5 °C el pólipo se contrae de forma persistente y la calcificación se detiene varios días. Corrige el KH con bicarbonato diluido en peristáltica, nunca en dosis puntuales.

Dentro de Lobophylliidae, M. lordhowensis es un competidor agresivo pero de alcance corto: extruye filamentos mesentéricos digestivos de 4-5 cm que digieren tejido de Acropora, Montipora y otros LPS vecinos en pocas horas, aunque solo ante contacto directo sostenido. La defensa química es menos visible y igual de relevante: libera mucus con aleloquímicos que inhiben la extensión de pólipos en corales situados 10-15 cm aguas abajo. Respeta separaciones de 15 cm frente a SPS y de 20 cm frente a Galaxea, Euphyllia o Lobophyllia, que lo superan en alcance. El carbón activado a 0,5-1 g/L, renovado cada 3-4 semanas, reduce la acumulación de aleloquímicos, sobre todo si dosificas carbono (vodka, vinagre, biopellets): esa práctica altera la comunidad bacteriana de su mucus y se asocia a brotes de banda marrón. No lo sitúes en la trayectoria de descarga de Sinularia o Sarcophyton; sus diterpenos penetran el mucus y causan retracción crónica sin necrosis aparente.

Procede de arrecifes de Lord Howe entre 10 y 25 m de profundidad, de modo que su ventana útil es de 50-150 PAR con dominancia de azul (440-470 nm). Los cambios de iluminación deben hacerse en escalones del 10-15 % semanal: subidas superiores al 25 % blanquean el disco oral en 5-10 días, con pérdida de proteínas fluorescentes rojas que tarda 3-4 meses en recuperarse desde la base. Los morfos de coloración intensa (rojo, arcoíris) necesitan más azul que los marrones para mantener pigmentación, pero toleran peor el exceso de UV. En flujo exige corriente aleatoria y moderada (15-20 renovaciones/hora del sistema, con dos fuentes desfasadas): el laminar directo erosiona el margen del pólipo en 2-3 semanas, mientras que el estancamiento sedimenta entre corallites y favorece cianobacterias filamentosas. Busca corriente intermitente que ondule el tejido sin plegarlo. Evita recolocarlo con frecuencia: cada reubicación implica reaclimatación lumínica de 3-4 semanas y suele costar expansión temporal.

Los cuadros poco frecuentes en M. lordhowensis casi siempre tienen firma ambiental. El polyp bailout —desprendimiento de pólipos completos del esqueleto— aparece tras picos de KH superiores a 12 dKH o fracturas traumáticas; los pólipos expulsados sobreviven semanas y pueden reasentarse si los fijas con malla en zona de flujo suave y sombra. Las perforaciones de esponjas del género Cliona o de sipuncúlidos se detectan por orificios pequeños con mucus persistente en el corallite: extrae el coral, raspa el orificio y séllalo con epoxi de dos componentes fuera del agua. La hiperplasia difusa del tejido se asocia a DOC elevado y flujo bajo, y se resuelve con carbón activado, cambio de agua del 30 % y más corriente, no con antibióticos. Cuidado con los baños de yodo: dosis superiores a 40 mg/L durante 10 minutos provocan desprendimiento de tejido en esta especie, más sensible que otros Lobophylliidae. Ante una retracción súbita, revisa primero la temperatura nocturna y el magnesio antes de asumir patología infecciosa.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Cómo identifico Micromussa lordhowensis y no otra micromussa?

Micromussa lordhowensis (sinónimo: Acanthastrea lordhowensis) es un LPS con coralitos monocentricos, carnosos y relativamente grandes, habitualmente de 8–15 mm de diámetro, con septos dentados y costas bien marcadas. Los pólipos muestran un disco carnoso, boca central amplia y colores muy variables (rojo, verde, naranja, morado, con bandas o motas). No debe confundirse con Micromussa amakusensis, de coralitos menores (aproximadamente 2–6 mm), ni con Acanthastrea echinata, que presenta septos más exertos y dientes agudos. La taxonomía actual la sitúa en la familia Lobophylliidae.

¿Qué iluminación y movimiento de agua requiere?

Iluminación moderada: 100–200 µmol·m⁻²·s⁻¹ de PAR, con fotoperiodo de 8–10 horas. Los ejemplares procedentes de sistemas con luz muy alta deben aclimatarse desde 70–80 µmol·m⁻²·s⁻¹ durante 2–3 semanas. El flujo debe ser indirecto y alternante, del orden de 10–15 cm/s, sin chorros laminares directos sobre el tejido. Un movimiento insuficiente favorece acumulación de detritus y necrosis; excesivo, retracción crónica y pérdida de expansión.

¿Qué parámetros químicos debo mantener?

Temperatura 24–26 °C; salinidad 34–35 ppt; alcalinidad 7,5–9,0 dKH; calcio 400–450 mg/L; magnesio 1250–1350 mg/L; nitrato 2–10 mg/L y fosfato 0,03–0,08 mg/L. Es más sensible a oscilaciones de alcalinidad que a valores absolutos concretos: evite cambios superiores a 1 dKH/día. Mantenga también yodo detectable (0,03–0,06 mg/L) si se hacen cambios de agua regulares; no es imprescindible suplementarlo a ciegas.

¿Cómo alimento y con qué frecuencia?

Aunque es zooxantelado, captura presas de forma activa, sobre todo tras apagar luces, cuando extiende tentáculos. Ofrezca mysis, krill picado, artemia enriquecida o pellets de 1–2 mm, una ración por boca/pólipo, 2–3 veces por semana. No alimente en exceso: los restos no capturados elevan nitrato y fosfato y pueden provocar proliferación de algas o flatworms. En ejemplares recién importados, empiece con una toma semanal hasta comprobar la respuesta.

¿Es agresivo y dónde lo coloco?

Puede desarrollar tentáculos barrenderos y filamentos mesentéricos, por lo que debe separarse 10–15 cm de otros LPS y SPS, especialmente de Euphyllia, Favia y Acropora. Colóquelo en la parte baja o media del acuario, sobre roca estable o una base cerámica, nunca sobre sustrato blando profundo. Evite sombras profundas y corrientes directas. Deje espacio de crecimiento: es una especie de hábito incrustante y expande tejido sobre la roca adyacente.

¿Cómo lo fragmento y qué patologías vigilo?

Use sierra de diamante o Dremel con hoja fina, cortando bloques de 3–5 pólipos con tejido sano y sin exponerlos al aire más de lo necesario. Enjuague con agua del acuario, aplique un baño de yodo (10–20 ppm durante 5–10 minutos) y fije con cianoacrilato gel o epoxy. La cicatrización tarda 2–4 semanas; mantenga flujo suave y no alimente hasta que los tentáculos se expandan. Vigile “brown jelly” (ciliados oportunistas), necrosis por estrés, flatworms y caracoles depredadores; retire cualquier colonia con tejido necrótico para evitar contagios.

📚 REFERENCIAS

• Huang, D., Arrigoni, R., Benzoni, F., Fukami