Tubastraea coccinea

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Tubastraea coccinea (Lesson, 1829), conocida en acuariofilia como «coral sol» o «coral copa naranja» (orange cup coral), es el LPS azooxantelado más difundido en el hobby y, paradójicamente, uno de los más malinterpretados. Su rasgo definitorio no es estético sino fisiológico: carece por completo de zooxantelas (no presenta simbiontes dinoflagelados en sus tejidos), por lo que su balance energético depende íntegramente de la captura heterótrofa de plancton y materia orgánica particulada. Esto invierte la lógica habitual del arrecife de acuario: la luz le es indiferente —incluso la irradiancia alta resulta contraproducente por favorecer algas sobre su esqueleto y competir por espacio— y el aporte alimenticio por pólipo pasa a ser el factor crítico. Bajo iluminación de 0–50 µmol·m⁻²·s⁻¹ (zonas sombreadas, cuevas, bajo repisas) y con alimentación dirigida 2–3 veces por semana, la especie prospera; con luz de arrecife y sin alimentación, se contrae durante semanas, reabsorbe tejido y muere en 2–4 meses sin haber mostrado signos previos evidentes.

Morfológicamente es un coral colonial de esqueleto poroso con coralitos tubulares de 8–12 mm de diámetro, no ramificado, que se une mediante un coenosarco basal extendido. Los pólipos, de tonalidad naranja, rojo-anaranjado o amarillo-anaranjado con el disco oral más claro, presentan típicamente 12 tentáculos cónicos en dos ciclos y alcanzan 25–35 mm de expansión. Su comportamiento es marcadamente nocturno: en el arrecife extiende los tentáculos al apagarse la luz para capturar zooplancton; en cautividad puede condicionarse a la expansión diurna mediante alimentación a hora fija durante 3–6 semanas, técnica habitual para facilitar la nutrición en acuarios con fotoperiodo invertido.

Su enorme tolerancia a condiciones subóptimas —temperaturas de 16 a 30 °C, salinidades de 30 a 37, turbidez elevada y contaminación orgánica— explica que sea una de las especies invasoras más agresivas del medio marino: introducida en el Atlántico, ha colonizado el Caribe, el Golfo de México, Brasil y África occidental, sobrecreciendo corales nativos y sustratos artificiales. Esa misma robustez es la que el acuarista aprovecha: es un coral prácticamente indestructible si se alimenta. No debe confundirse su dureza con facilidad: la dificultad real es logística (disponibilidad de alimento, carga de nutrientes y mantenimiento de la rutina de alimentación por pólipo), no fisiológica. Parámetros de referencia en cautividad: densidad 1.024–1.026 (34–35 ppt), temperatura 23–26 °C, Ca 400–450 mg/L, KH 7,5–9 dKH, Mg 1280–1350 mg/L, NO₃ 2–10 mg/L y PO₄ 0,02–0,1 mg/L. Un acuario de Tubastraea exige skimmer sobredimensionado y exportación eficaz: la alimentación intensiva que necesita el coral es la misma que dispara nutrientes inorgánicos.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

La familia Dendrophylliidae se distingue dentro de Scleractinia por un esqueleto de trabéculas porosas y septos perforados, rasgo visible en los coralitos secos de T. coccinea como una red esponjosa en lugar de láminas sólidas. El género agrupa especies coloniales ahermatípicas —no constructoras de arrecife— con reproducción por gemación extracalicular desde el coenosarco basal, lo que produce colonias incrustantes que se expanden lateralmente y acumulan capas sucesivas de coralitos.

Es imprescindible separarla de congéneres con las que se comercializa bajo la misma etiqueta: Tubastraea micranthus es arborescente, con ramas erectas de hasta 30–40 cm, y requiere flujo más fuerte para evitar acumulación de detritus en las bifurcaciones; Tubastraea tagusensis y T. faulkneri, descritas o reconocidas como linajes crípticos (la primera como especie introducida en Brasil), se diferencian por morfometría de coralitos y análisis molecular, no por color. En acuario, cualquier «coral sol» de coralitos tubulares agrupados sin ramificación es con altísima probabilidad T. coccinea.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Especie de distribución nativa indo-pacífica: desde el mar Rojo y África oriental hasta Indonesia, Filipinas, Japón subtropical, Hawái y la Polinesia Francesa, con registros en el Pacífico oriental. Su presencia atlántica es fruto de introducción antrópica —probablemente por agua de lastre y bioincrustación en cascos—, con las primeras citas en el Caribe a mediados del siglo XX (Curazao, años cuarenta) y en Brasil desde los años ochenta (Río de Janeiro, Ilha Grande, Búzios), donde hoy forma poblaciones densas sobre sustrato rocoso natural y artificial.

En el arrecife ocupa un nicho críptico y sombreado: caras verticales de paredones, techos de cuevas, bajo repisas y cornisas, grietas, bases de colonias masivas muertas, raíces de manglar sumergidas, pilotes de puertos, cascos de pecios y estructuras metálicas. Su rango batimétrico es amplio (superficie a más de 100 m), pero las densidades máximas se dan entre 0 y 20 m, siempre en microhábitats con baja irradiancia y renovación de agua moderada a alta que transporta zooplancton. Tolera turbidez, sedimentación y contaminación orgánica portuaria, lo que explica su éxito en ambientes degradados donde los hermatípicos retroceden.

Esta distribución condiciona el montaje en acuario: la colonia debe situarse en una zona de sombra (bajo un saliente rocoso, en un lateral con iluminación indirecta) con un flujo medio, indirecto y alterno —evitar chorro laminar directo sobre los pólipos, que impide la expansión, y evitar zonas de calma absoluta donde se acumula detritus entre coralitos—. La orientación ideal reproduce una pared vertical con corriente horizontal: así el alimento suspendido impacta en los tentáculos sin depositarse en el coenosarco. Su capacidad de sobrecrecer sustrato y su potente cnidoma obligan a dejar 5–8 cm de margen respecto a otros corales, especialmente zoantídeos y LPS de tejido blando. En el arrecife, la especie es un competidor de primer orden en fase de expansión; en el acuario, esa misma agresividad exige confinarla a una isla rocosa o a una zona de sombra acotada, donde su crecimiento incrustante puede controlarse fragmentando los bordes del coenosarco.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Tubastraea coccinea (Lesson, 1829), familia Dendrophylliidae, presenta un corallum faceloide: cada pólipo secreta un tubo independiente que nace de una base común incrustante (coenosteum). Los cálices miden 8-14 mm de diámetro y los tubos alcanzan 2-5 cm de longitud en colonias maduras; la epitheca muestra costillas granulosas finas y un borde calicular apenas elevado. Los septos se ordenan en tres ciclos completos y un cuarto incompleto (24-32 septos), delgados y próximos entre sí, con columela esponjosa y sin pali, carácter propio de la familia. El esqueleto de aragonito es ligero y poroso: al no sostener fotosimbiontes, la colonia no engrosa paredes y las láminas basales se fracturan con facilidad, lo que condiciona tanto el montaje como la manipulación.

El pólipo expandido es el rasgo diagnóstico en acuario: disco oral de 12-20 mm, translúcido, naranja a salmón, con la boca central rodeada de tonos amarillo-verdoso, y 24-36 tentáculos cónicos dispuestos en dos ciclos, anaranjados con ápices blancos o hialinos muy contrastados. Existen morfos amarillos y bicolores. Los tentáculos se extienden hasta 2-3 cm, casi el triple del diámetro calicular, y se retraen con rapidez ante sombra o corriente brusca. Frente a T. micranthus, T. coccinea tiene cálices mayores, colonias más irregulares, discos con centro amarillento y ápices tentaculares pálidos; T. micranthus es más compacta, de naranja uniforme y tubos más pequeños y apiñados.

Es un coral azooxantelado: carece por completo de Symbiodinium, de modo que no obtiene photosintatos y depende de la captura de presas (copépodos, mysis, krill, trozos de gamba) y, de forma complementaria aunque insuficiente, de la absorción de aminoácidos disueltos y bacterioplancton. Su actividad es crepuscular y nocturna, con quimiorrecepción muy rápida: los pólipos se abren en 1-5 minutos ante un homogenizado de alimento. La reproducción sexual es gonocórica con fase larvaria planctónica; en el acuario la expansión real de la colonia es asexual, por gemación extratentacular desde el coenosteum y la base de los tubos.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

La dificultad de esta especie no es el agua, sino el equilibrio entre alimentación intensiva y exportación de nutrientes. No busques un sistema de nutrientes ultrabajos: sin alimento disuelto ni partículas, la colonia se consume. Mantén parámetros estables y un sistema de exportación sobredimensionado (skimmer grande, refugio, resinas o carbono dosing) para compensar la carga orgánica.

Luz. No necesita luz en absoluto y la tolera solo si es indirecta. Colócala bajo repisas, en paredes verticales orientadas al interior de la roca o en la zona baja del acuario. Con PAR superior a 100 sostenido, los pólipos permanecen cerrados durante el fotoperiodo y la epitheca se cubre de algas y cianobacterias que acaban asfixiando los tejidos basales. Un fotoperiodo normal de 8-10 h no la daña si la posición es sombreada.

Flujo. Busca movimiento alterno que transporte alimento hasta los tentáculos sin impedir su expansión. Un chorro laminar constante sobre los cálices los mantiene semicerrados y reduce la captura. Lo ideal es una bomba pequeña con oscilación o el retorno dirigido a la pared de la roca. Con alimentación nocturna, programa una pausa de 10-15 minutos sin bombas para concentrar el alimento.

Alimentación. Es el parámetro no escrito de esta ficha: mínimo 3-4 veces por semana, con cada pólipo alimentado individualmente. Mysis o krill descongelado y enjuagado, trozos de 3-5 mm; tamaño mayor al diámetro de la boca se rechaza. Para colonias de más de 40 pólipos, la campana de alimentación y la jeringa con papilla fina ahorran tiempo. Ajusta NO₃ y PO₄ al alza dentro de la tabla antes que reducir las tomas.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocación. Fija la colonia sobre roca viva o muerta en zona de sombra permanente: entrada de cueva, techo de visera, pared vertical bajo un saliente o pared lateral del acuario. Evita la arena como sustrato definitivo —entierra la base y favorece acumulación de detrito— y evita la roca superior iluminada. Deja 5-10 cm de separación respecto a otros corales: sus nematocistos son potentes y pueden dañar

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Tubastraea coccinea no despliega filamentos barredores tipo Galaxea ni Euphyllia, pero es un coral marcadamente agresivo por dos vías: nematocistos muy densos en tentáculos de 2-3 cm que extiende en segundos y una respuesta alimentaria explosiva. En acuario comunitario, su principal conflicto no es el espacio sino la competencia por comida.

Peces

• Compatibilidad general: segura con la práctica totalidad de peces de arrecife. Al ser azooxantelado se instala en zonas sombreadas (voladizos, paredes verticales, bajo roca viva), por lo que no compite por nichos iluminados.
• Depredadores potenciales: Chaetodon spp. (incluidos C. auriga, C. collare y C. lunula), Pomacanthus y varios Monacanthidae picotean pólipos; también Centropyge spp. (C. loricula, C. bispinosa) causan daño puntual. El picoteo suele ser aprendido e individual: un ejemplar concreto puede volverse corallívoro sobre esta especie.
• Ladrones de alimento: el problema real. Pseudanthias, Chromis, lábridos y cirujanos capturan el mysis antes de que el pólipo lo retenga. Alimenta de noche, 20-30 minutos tras apagar luces, con pipeta o campana de alimentación individual.
• Peces de sustrato: Valenciennea, Halichoeres y Thalassoma pueden enterrar o volcar colonias, ya que el esqueleto es ligero y no está fuertemente cementado.

Invertebrados

• Camarones limpiadores: Lysmata wurdemanni, L. amboinensis y Stenopus hispidus extraen mysis directamente de los pólipos. No es anecdótico: en acuarios con varios ejemplares el coral puede quedar desnutrido.
• Gasterópodos y ermitaños: Nassarius, Cerithium y ermitaños abrasan y vuelcan colonias pequeñas; fija los fragmentos con epoxy o colocación en oquedades.
• Erizos: Diadema y Echinometra raspan tejido y epibiontes al desplazarse sobre la colonia.
• Otros azooxantelados: compatible con Dendrophyllia, Rhizotrochus y octocorales no fotosintéticos con separación mínima de 5-8 cm, para evitar solapamiento de tentáculos y reparto
  

  10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

  Tubastraea coccinea es un coral azooxantelado: no obtiene energía de la luz y depende casi por completo de la captura de zooplancton. En acuario, el error más frecuente es tratarlo como un LPS fotosintético y colocarlo en una zona iluminada con alimentación ocasional. Eso conduce a recesión del tejido, pérdida de color y muerte progresiva de los pólipos. La especie requiere un plan de alimentación dirigido, estable y verificable.

  • Aísla la colonia en una roca independiente. Crece por gemación y puede pasar de 20 a 60 pólipos en pocos meses si se alimenta bien. Deja 10–15 cm de separación respecto a otros corales para evitar competencia por espacio y nematocistos. Retira excedentes con cortapernos o una sierra de coral, siempre fuera del agua el menor tiempo posible. Nunca devuelvas fragmentos al mar: en el Atlántico, Golfo de México y Caribe está considerada especie invasora.
  • Alimentación dirigida con campana de alimentación. Corta una botella de 1,5–2 L y usa la parte superior como campana sobre la colonia. Administra mysis, brine shrimp enriquecido, cyclops, copépodos y trozos de mejillón o gamba de 1–3 mm. Deja la campana 20–30 minutos con flujo reducido. Así evitas que peces y gambas roben el alimento y que el exceso se disperse por el acuario.
  • Frecuencia y cantidad específicas. Con temperatura estable, alimenta 3–5 veces por semana; en colonias pequeñas o recién adquiridas, empieza con 4 tomas semanales. Cada pólipo debe recibir al menos 2–4 partículas por toma. No satures: si aparecen restos en la roca 30 minutos después, reduce la ración. La respuesta correcta es extensión de tentáculos en 1–3 minutos tras oler el alimento.
  • Horario y estímulo. Ilumina con luz azul tenue o apaga la iluminación principal. Descongela el alimento en agua del acuario y viértelo lentamente cerca de los pólipos con pipeta o jeringa de 10 mL. No uses alimento seco sin hidratar: flota y no es capturado. Alterna presas para cubrir requerimientos lipídicos y proteicos; no dependas solo de artemia.
  • Flujo indirecto moderado-alto. Busca 10–15 renovaciones por hora en la zona de la colonia, pero sin chorro directo que cierre los pólipos. Un flujo laminar suave y aleatorio facilita que el alimento llegue a los tentáculos y evita acumulación de detritus entre corallites. Si los pólipos permanecen cerrados durante el día, revisa primero el flujo y la salinidad.
  • Luz muy baja y sombra estable. Colócala bajo salientes, en cuevas o en la parte inferior de la roca, con PAR inferior a 50 µmol/m²/s. La luz no la alimenta y favorece algas sobre el esqueleto expuesto. Si aparece filamentosa verde en los bordes, sombrea más, mejora la exportación de nutrientes y retira algas con cepillo suave.
  • Química del agua orientada a esqueleto y estabilidad. Mantén temperatura de 23–26 °C, salinidad 34–35 ppt, pH 7,9–8,3, dKH 7,5–9,0, calcio 410–450 mg/L y magnesio 1280–1350 mg/L. La alimentación intensiva eleva nitrógeno y fósforo: acepta NO₃ 5–15 mg/L y PO₄ 0,03–0,10 mg/L, pero no permitas oscilaciones bruscas. Cambia 10–15 % semanal y usa skimmer sobredimensionado.
  • Indicadores de salud. Tejido naranja intenso, corallites completos y tentáculos extendidos al alimentar son señales positivas. Recesión blanquecina, pólipos retraídos más de 48 horas o esqueleto visible indican hambruna, flujo insuficiente o contaminación orgánica. Aclimata con goteo de 45–60 minutos y no la alimentes hasta 24–48 horas después del traslado.

  11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

  Estación	Temperatura y estabilidad	Alimentación	Flujo e iluminación	Parámetros y mantenimiento	Observaciones específicas
  Invierno	23–24 °C; revisa calentador y evita bajadas nocturnas.	3 tomas semanales de mysis o copépodos; 2–4 partículas por pólipo.	Flujo indirecto 10–12×/h; sombra bajo saliente; PAR <50.	dKH semanal; cambio de agua 10 %; limpieza de skimmer.	Menor evaporación: controla salinidad con refractómetro.
  Primavera	24–25 °C; subida gradual máxima de 1 °C por semana.	4 tomas semanales; alterna cyclops y gamba picada.	Flujo 12–15×/h; mantén la campana de alimentación.	Ca y Mg cada 15 días; NO₃ y PO₄ quincenal.	Vigila gemación y retira pólipos que invadan roca vecina.
  Verano	25–26 °C; nunca por encima de 27 °C; usa ventilador o enfriador.	4–5 tomas semanales; reduce ración si sube el fosfato.	Flujo 12–15×/h; evita luz directa y algas en corallites.	Reposición de agua de ósmosis; cambio 15 % semanal.	Mayor evapotranspiración: estabiliza salinidad y oxígeno.
  Otoño	24–25 °C; prepara el descenso térmico de forma paulatina.	3–4 tomas semanales; refuerza alimento enriquecido antes del invierno.	Flujo 10–15×/h; revisa que la sombra no acumule detritus.	Limpieza de bombas y skimmer; test completo mensual.	Registra extensión de tentáculos y número de pólipos para detectar recesión.

  12. ✅ CONCLUSIÓN

  Tubastraea coccinea no es un coral para acuarios de bajo mantenimiento ni para quien busque un LPS que dependa de la fotosíntesis. Su éxito se basa en tres pilares concretos: alimentación dirigida de zooplancton 3–5 veces por semana, sombra con flujo indirecto suficiente para que cada pólipo capture presas y estabilidad química sostenida con exportación de nutrientes. Una colonia bien alimentada muestra tentáculos rápidos, tejido naranja compacto y gemación regular; una colonia pálida o retraída suele indicar hambruna o flujo mal orientado.

  Manéjala como una especie de zona NPS: aislada en su propia roca, con campana de alimentación, skimmer eficaz y cambios de agua programados. Controla su crecimiento por gemación y no liberes fragmentos en el medio natural. Con estos parámetros y un calendario estacional como el propuesto, la especie es mantenible a largo plazo en acuariofilia avanzada, pero exige observación semanal y disciplina de alimentación, no improvisación.

  🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

  Tubastraea coccinea es un dendrofilíido azooxantelado: su calcificación no recibe el subsidio fotosintético de las zooxantelas, por lo que el consumo de carbonato cálcico es bajo pero sostenido y no amortigua desequilibrios iónicos. Mantenga salinidad 34–35 ppt (1,0255–1,0265), temperatura 24–26 °C con techo tolerado de 28 °C, Ca 420–450 ppm, KH 7,5–9 dKH y Mg 1290–1350 ppm; por debajo de 1250 ppm de Mg se dispara la precipitación abiótica de CaCO₃ y el KH cae sin que el coral lo demande. A diferencia de un escleractinio fotosintético, tolera NO₃ 5–20 ppm y PO₄ 0,05–0,15 mg/L, pero esa tolerancia es engañosa: la alimentación con mysis, krill o mejillón troceado a 2–4 mm aporta N y P rápidamente asimilables, así que exige exportación real (skimmer sobredimensionado, resina de PO₄, cambios semanales del 10 %). El acoplamiento crítico es alimento–oxígeno–pH: las tomas nocturnas abundantes deprimen el pH 0,2–0,3 unidades; vigile la caída nocturna y no la corrija con bicarbonato sin medir KH.

  Es un competidor espacial de primer orden en el Caribe y Golfo de México, donde coloniza sustratos artificiales y sobrecrece a Mussismilia o Siderastrea; parte de esa ventaja es química. Produce alcaloides citotóxicos tipo tubastrina y diterpenos, además de exudados disueltos que inhiben la extensión de polipos vecinos, y combina alelopatía con digestión extracoelentérica mediante tentáculos de nematocistos potentes. En acuario esto se traduce en una zona de exclusión real: deje 15–20 cm hasta cualquier otro coral y oriente la corriente para que el efluente de sus polipos no bañe a los vecinos. Use carbón activado a razón de 0,5–1 L por 500 L, renovado cada 3–4 semanas, y valore ozono. Ojo a la dirección inversa: los terpenos de Sinularia y Sarcophyton en sistemas pequeños frenan su expansión, y las incrustantes rápidas (Xenia, Briareum) acaban sombreando y asfixiando la colonia, que no compite bien por espacio horizontal.

  Al carecer de zooxantelas, la luz no cubre ninguna necesidad metabólica: los pigmentos carotenoides naranjas no son fotosintéticos y no existe bleaching por exceso de irradiancia. La luz actúa solo como estresor indirecto, favoreciendo césped algal, Derbesia y Bryopsis sobre corallites y coenosarco, y provocando retracción del polipo. Colóquela bajo repisa, en cueva o zona de sombra (por debajo de 50 µmol/m²/s de PAR incidente), con iluminación indirecta suficiente para poder observarla. El flujo sí es determinante: alterno y turbulento, 20–30 recambios/hora (15–20 cm/s), que renueva presas y arrastra detritos del espacio intercorallite; un chorro laminar directo superior a 30 cm/s daña el tejido y arrastra el alimento antes de que lo retenga. Estrategia práctica: baje el flujo a 5–10 recambios/hora durante 20–30 minutos en cada toma y restitúyalo después; así el polipo captura el 100 % de las presas sin pérdidas por exportación.

  Los fallos poco frecuentes rara vez son de parámetros y casi siempre de origen mecánico o biológico. Vigile el «polyp bailout»: polipos que se desprenden dejando coenosarco desnudo indican alimentación insuficiente o corriente dañina, no mala química. Revise el esqueleto: esponjas perforantes (Cliona) y poliquetos espiónidos lo horadan y vacían desde dentro, un daño irreversible que se detecta por poros y sedimento continuo. Los hidroides (Zanclea, Myrionema) y Aiptasia colonizan su base y compiten por el alimento; el gusano de fuego Hermodice carunculata devora polipos de noche. Ante necrosis marrón tras manipulación, haga baño de yodo (Lugol 5–10 ml/L, 8–10 min) y aísle. Es extremadamente sensible al cobre: nunca use fármacos con Cu en el sistema. Y recuerde su biología reproductiva: es incubadora de planulas; si se asientan en el tanque, no libere nunca fragmentos ni sustratos al medio natural, porque es specie invasora consolidada.

  ❓ PREGUNTAS FRECUENTES

  ¿Por qué Tubastraea coccinea no necesita iluminación?

  Es una especie azooxantelada: carece por completo de simbiontes del género Symbiodinium, por lo que su balance energético depende íntegramente de la captura de presas. En el medio natural coloniza techos de cuevas, salientes, paredes sombreadas y sustratos artificiales entre 0 y 110 m de profundidad. En acuario, ubícala en zonas de penumbra, bajo salientes o en recovecos con luz indirecta; la iluminación intensa directa no aporta nada y solo favorece la proliferación de microalgas sobre el esqueleto expuesto de las ramas muertas.

  ¿Cómo consigo que extienda los pólipos durante el día?

  Su actividad es crepuscular y nocturna. El método fiable es condicionarla: alimenta siempre a la misma hora, con luz actínica tenue, y libera 1-2 minutos antes jugo de mysis o un activador de aminoácidos cerca de la colonia para estimular la quimiorrecepción. Usa pipeta de boca ancha o una campana de alimentación (botella de base ancha) para concentrar el alimento y mantener el flujo bajo durante 20-30 minutos. La mayoría de colonias abren a plena luz en 1-3 semanas; los ejemplares recién importados pueden tardar más.

  ¿Qué debo alimentarla y con qué frecuencia?

  Cada pólipo necesita presas de tamaño adecuado a su calibre (10-15 mm): mysis, krill picado, copépodos, nauplios de Artemia enriquecidos, gamba o calamar en trozos de 1-2 mm, o pellets blandos de 1-2 mm. Pauta mínima: 3-4 veces por semana, un trozo por pólipo; colonias grandes requieren sesiones de 10-15 minutos. La inanición es la primera causa de mortalidad en cautividad, no la luz. Vigila el exceso: restos no ingeridos elevan NO₃ y PO₄, así que retíralos con pipeta y refuerza el skimmer.

  ¿Qué parámetros, corriente y ubicación requiere?

  Densidad 1.023-1.025; temperatura 22-26 °C (tolera 20-28 °C); pH 8,0-8,4; Ca 400-450 mg/L; KH 7-9 dKH; Mg 1250-1350 mg/L. Acepta NO₃ 5-20 mg/L y PO₄ 0,03-0,1 mg/L: los sistemas ULNS no compensan la falta de alimento y la debilitan. Corriente moderada e intermitente (10-20 cm/s), suficiente para renovar el agua sin arrastrar la comida; evita bombas directas. Fija la colonia en una roca propia, con aclimatación por goteo y cuarentena previa, ya que es muy sensible al daño mecánico del esqueleto tubular.

  ¿Es agresiva o puede convertirse en plaga en el acuario?

  Ambas cosas. Sus pólipos digieren tejido ajeno por contacto y su esqueleto crece por encima del sustrato vecino. Además está catalogada como invasora en el Atlántico: Brasil desde los años 80, Caribe, Golfo de México y registros mediterráneos, dispersada por plataformas petrolíferas y cascos. En el acuario, aíslala en una isla de roca separada del arrecife, con fragmento propio y revisión periódica de la roca base para eliminar yemas. Nunca liberes fragmentos al medio natural.

  ¿Cómo se reproduce y en qué se diferencia de otras Tubastraea?

  Crece por gemación extracalicular, formando colonias fácelo-subplocoides, y las poblaciones brasileñas muestran liberación de plánulas (incubación), lo que explica su rápida colonización. Morf

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