Corales.com · guías de corales, química del agua y acuariofilia marina

Psammocora contigua

Psammocora contigua
Autor: Roberto Parra Jiménez 🎓 Biólogo Marino – Universidad de Hawaii (UH Mānoa)
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia

📋 ÍNDICE DEL ARTÍCULO

  • 1. 🌏 INTRODUCCIÓN
  • 2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
  • 3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
  • 4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
  • 5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
  • 6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
  • 7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
  • 10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
  • 11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
  • 12. ✅ CONCLUSIÓN

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Psammocora contigua es el SPS que casi nadie elige y que casi todos acaban teniendo: llega como polizonte en roca viva, sobrevive a errores de parámetros que fulminan a un Acropora y se convierte en la prueba de fuego de quien cree que «SPS = difícil». Su nombre genérico —psammos, arena— alude a la textura porosa y granular de su esqueleto, y resume su biología: es un coral de aguas someras, turbias, sedimentadas y térmicamente inestables, no un coral de arrecife exterior prístino.

Morfológicamente es un coral submásivo con nódulos cortos y romos que en algunas colonias se alargan en dedos aplanados; la superficie muestra coralitos de 1–2 mm, poco profundos, con paredes mal definidas (subcerioides), lo que produce un aspecto de lija fina muy distinto de los cálices bien marcados de Porites o de la retícula de Montipora. La plasticidad es enorme: en flujo fuerte y exposición máxima la colonia se aplana y se extiende como costra sobre el sustrato; en zonas protegidas desarrolla columnas cortas y ramificaciones gruesas. Ese mismo polimorfismo explica la mayoría de las identificaciones erróneas en el hobby, donde se vende indistintamente como «Porites marrón», «Psammocora sp.» o incluso «Siderastrea».

Coloración discreta: crema, beige, marrón claro, verde oliva o pardo verdoso, con el cenosarco más pálido que los cálices; rara vez rosados o violáceos. No es un coral de color, y quien lo compre buscando fluorescencia se llevará una decepción. Su valor es otro: robustez, crecimiento continuo y capacidad de colonizar huecos donde otros SPS no prosperan. En acuariofilia avanzada tiene dos usos legítimos: iniciación controlada al mantenimiento de escleractinios y biotopo de laguna o zona de rompiente con fluctuaciones. Es, además, un excelente indicador: si se te blanquea un Psammocora, el problema del sistema es grave.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

Rango Taxón
Reino Animalia
Filo Cnidaria
Clase Anthozoa
Subclase Hexacorallia
Orden Scleractinia
Familia Psammocoridae (antes Siderastreidae)
Género Psammocora Dana, 1846
Especie Psammocora contigua (Esper, 1797)
Basónimo Madrepora contigua Esper, 1797
Sinónimos citados Psammocora gaimardi; P. contigua var. maldivensis

La familia Psammocoridae se separó de Siderastreidae tras los trabajos filogenéticos de Benzoni y colaboradores (2007, 2012), basados en marcadores mitocondriales y nucleares; en la literatura antigua seguirás viendo P. contigua dentro de Siderastreidae. El género agrupa formas masivas, incrustantes y ramificadas con septos dispuestos en dos ciclos y columela granular, sin las trabéculas típicas de Porites. P. contigua se distingue de P. digitata por sus nódulos más cortos y su base submásiva extensa, y de P. superficies por no ser una costra delgada y uniforme. Se sospecha que el nombre abarca un complejo de especies indopacíficas con linajes crípticos; hasta que se resuelva, cualquier identificación basada solo en morfología es provisional.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Distribución indopacífica amplísima: mar Rojo, África oriental, Madagascar, Maldivas, Indonesia, Filipinas, Papúa, Gran Barrera de Coral, islas Ryukyu al norte y costa australiana al sur. Ocupa el rango batimétrico de 0 a unos 20 m, pero su centro de abundancia está entre 0 y 5 m, en la llanura arrecifal (reef flat), la cresta y las lagunas someras. Es frecuente verla emergida durante las mareas vivas equinocciales, con el cenosarco retraído y cubierto de una película mucosa; tolera sin daño aparente exposiciones aéreas de una a tres horas y variaciones térmicas de 24 a 32 °C.

Su nicho real incluye ambientes que la mayoría de escleractinios evita: fondos de arena gruesa y cascajo, bordes de praderas de Thalassia, proximidades de desembocaduras con aporte de agua dulce y sedimentos finos, y roca desnuda en costas batidas. Es una colonizadora pionera de escombros y sustrato muerto, y su esqueleto denso y su tasa de crecimiento lenta (del orden de 1–3 cm de radio al año) la convierten en un componente estructural de la llanura arrecifal más que en un constructor de relieve. En varios arrecifes del Indo-Pacífico se ha documentado su persistencia tras eventos de blanqueamiento en los que desaparecieron los Acropora someros, lo que la señala como reservorio larvario y refugio de biodiversidad crítica en arrecifes degradados.

Trasladado al acuario, ese perfil ecológico dicta el montaje: posición media o baja de la roca, con 100–250 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR) y tolerancia real desde 50 hasta 400, siempre que la aclimatación sea progresiva. Flujo medio, del orden de 10–20 renovaciones por hora, alternando y caótico; en flujo fuerte se aplana y crece más rápido, en flujo nulo se cubre de cianobacterias y detritus. Parámetros: 24–28 °C, salinidad 33–36 (admite 30–38 sin signos de estrés), Ca 400–450 mg/L, Mg 1250–1350 mg/L, dKH 7–9, NO₃ 2–20 mg/L y PO₄ 0,03–0,3 mg/L. A diferencia de los SPS «clásicos», rinde peor en sistemas ULNS: con NO₃ por debajo de 1 mg/L palidece de forma sostenida y puede detener el crecimiento.

Conviene mantenerla separada de Acropora y Montipora de crecimiento rápido, que la sombrean y la invaden por competencia espacial; su agresividad química es baja. Tolera bien el asentamiento de sedimento, y de hecho prospera en la interfase arena-roca: no la entierres, pero tampoco la coloques en una zona de arena fina con corrientes que la sepulten cada día. La fragmentación es trivial —corte con alicates de hueso y fijación con cianoacrilato en gel— y la base se reencrusta en dos o tres semanas. Revisa la cara inferior de la colonia cada pocos meses: es ahí donde aparecen las necrosis por acumulación de detritus y las algas filamentosas en las zonas de sombra.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Forma de colonia. Psammocora contigua es la especie claramente ramificada del género: desarrolla ramas digitiformes de sección redondeada —a veces ligeramente aplanadas— de 8–15 mm de diámetro y 3–8 cm de longitud, sobre una base incrustante que se extiende por el sustrato. Las ramas se fusionan con frecuencia (anastomosis), generando retículos cerrados y un perfil de arbusto compacto, más denso que el de P. digitata. En el arrecife las colonias alcanzan 20–40 cm; en acuario, con crecimiento anual lento, lo habitual es un arbusto de 10–20 cm tras varios años. Se distingue de un Montipora ramificado o de un Porites por la ausencia total de pared mural en el coralito y por el coenosteum granulado-espinuloso, de tacto áspero como papel de lija.

Coralitos y esqueleto. Coralitos inmersos, de 1,5–2,5 mm de diámetro, sin pared definida: los septos nacen directamente del coenosteum y continúan como costas. Presentan dos ciclos septales (8–12 septos visibles), con márgenes finamente dentados, foseta estrecha y profunda, y una columela en estilo formada por la fusión de los ápices septales. El esqueleto es de aragonito poco denso, ligero y notablemente frágil: una rama de 4 cm se parte con presión manual moderada, lo que condiciona tanto la colocación como la manipulación en el trasvase.

Pólipos. Pequeños, de 1–2 mm, con unos 12 tentáculos cortos y cónicos. Permanecen retraídos durante el fotoperiodo y se expanden de noche o con luz muy atenuada, momento en que se aprecia la típica superficie «erizada» de la colonia. No posee tentáculos barrenadores ni capacidad agresiva relevante: es una especie competitivamente sumisa.

Zooxantelas y color. Alberga Symbiodinium del clado C; en colonias sometidas a estrés térmico se ha documentado la presencia de Durusdinium (clado D), lo que explica en parte su tolerancia relativa a picos de temperatura frente a acropóridos. La coloración va del crema y el marrón claro al amarillento o verde, con ápices de rama pálidos. En aguas turbias y ricas en nutrientes dominan los morfos verde-marrón oscuro, por mayor densidad de simbiontes; en sistemas pobres en nutrientes la colonia se aclara hasta casi blanco sin que ello implique necesariamente bleaching.

Psammocora contigua
Psammocora contigua · Foto: (c) Debra Baker, some rights reserved (CC BY) (CC-BY)

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Es un SPS de perfil «laminar-lagunar»: procede de fondos someros protegidos, a menudo turbios, y tolera rangos que estresarían a un Acropora. La contrapartida es su mala respuesta a los sistemas ultrapobres y a los cambios bruscos de alcalinidad.

Parámetro Valor óptimo Rango tolerado y observaciones
Temperatura 25–26 °C 23–28 °C; por encima de 29 °C durante más de 48 h aparecen áreas blanqueadas en los ápices
Salinidad 34–35 ppt (1.025–1.026) 33–36 ppt; evitar descensos por reposición de agua dulce mal calibrada
pH 8,15–8,35 7,9–8,45; admite oscilación diurna, no pH crónicamente bajo
KH (alcalinidad) 7,5–9,0 dKH 6,5–11 dKH; más importante que el valor absoluto es la estabilidad (±0,5 dKH/día)
Calcio 410–450 mg/L 390–470 mg/L; consumo moderado, inferior al de un acropórido de masa similar
Magnesio 1280–1350 mg/L 1250–1400 mg/L; por debajo de 1200 se desestabiliza el KH
Nitratos (NO₃) 3–10 mg/L 1–25 mg/L; por debajo de 1 mg/L la colonia palidece y retrocede por la base
Fosfatos (PO₄) 0,03–0,10 mg/L 0,02–0,20 mg/L; con más de 0,2 se engrosa el esqueleto y se ensucia de algas
Iluminación 120–250 PAR 80–300 PAR; adapta bien a luz media-baja, pero un salto de más de 100 PAR provoca bleaching apical
Flujo Moderado e indirecto (15–20× volumen/h) Evitar corriente laminar directa de bomba; el flujo debe mecer las ramas, no doblarlas. Tolera bien el flujo turbulento de superficie

Nutrientes. Es una de las pocas especies de esqueleto calcáreo ramificado que mantiene color y crecimiento con NO₃ en torno a 10–20 mg/L; en el arrecife ocupa precisamente zonas con sedimento fino en suspensión. En acuarios con NO₃ < 1 mg/L y PO₄ < 0,02 mg/L se produce adelgazamiento del tejido interramal y recesión basal progresiva, un cuadro que se confunde con infección bacteriana.

Iluminación. Aclimatar siempre a la baja: 80–100 PAR las dos primeras semanas, subiendo 20–30 PAR por semana hasta la posición definitiva. Bajo LED de espectro completo responde bien con fotoperiodo de 9–10 h; con T5 conviene situarla en la mitad inferior de la columna de agua.

Flujo. Prefiere movimiento alterno y de baja velocidad sobre las ramas; un flujo demasiado concentrado erosiona el coenosteum en la punta de las ramas y facilita la entrada de algas filamentosas en las zonas denudadas.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocación. Tercio inferior o medio del paisaje rocoso, sobre roca viva madura y estable, en una posición donde la rama quede perpendicular a la corriente dominante. Evitar el sustrato arenoso removido por gobios o Stichodactyla: la sedimentación sobre las ramas inferiores provoca necrosis por asfixia en 2–3 semanas. Es imprescindible mantenerla alejada de Galaxea, Euphyllia y Favites (tentáculos barrenadores nocturnos que superan los 10 cm) y de incrustantes rápidos como Montipora capricornis, Palythoa o Zoanthus, que la cubren por completo: su baja agresividad la convierte en la perdedora habitual de cualquier contacto.

Crecimiento. Extensión apical de 1–3 cm de rama al año en condiciones óptimas, con engrosamiento y anastomosis posterior; el crecimiento basal incrustante es algo más rápido y es el que consolida la fijación al sustrato. La calcificación requiere KH estable y calcio por encima de 400 mg/L. Con nutrientes altos el crecimiento se acelera ligeramente pero el esqueleto se vuelve más poroso y quebradizo.

Fragging. Propagación sencilla por corte de rama. Procedimiento: extraer la colonia madre, cortar con alicates de hueso o disco de diamante una rama de al menos 3 cm con 5 mm de margen de tejido sano, evitar aplastar el esqueleto (las microfracturas abren vía a infección bacteriana). Fijar con cianoacrilato gel sobre tapón de cerámica, secando ligeramente la base del fragmento antes de pegarlo; alternativa: cemento epoxi para fragmentos con base incrustante. Curado en bandeja o sumidero con luz moderada (80–120 PAR) y flujo suave durante 10–15 días, hasta que el tejido cubra el corte. No requiere baño de yodo si el corte es limpio; sí un baño de 5 min en solución yodada al 0,5 % si se sospecha manipulación traumática. La rama injertada suelda al tapón en 3–5 semanas y produce la primera bifurcación a los 4–6 meses.

Observaciones de mantenimiento. Revisar el punto de unión con la roca: es una especie propensa a desprenderse por la fragilidad de su base y a acumular detritus en las axilas de las ramas. Un soplado semanal con jeringa o pipeta sobre el arbusto previene la recesión basal, el problema más frecuente en esta especie en acuario.

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Psammocora contigua no desarrolla tentáculos barrendores largos como Galaxea</em

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

Psammocora contigua es, posiblemente, el SPS más subestimado del hobby: sobrevive donde muchos Acropora mueren, pero eso no significa que no tenga exigencias propias. Estos son los puntos que marcan la diferencia entre una colonia que se apaga y una que coloniza la roca en meses.

  • Identifícala antes de comprarla. Confundirla con P. digitata es habitual en tiendas. P. contigua presenta cálices de 1–2 mm con septos en dos ciclos visibles y columela poco desarrollada; su crecimiento es incrustante con proyecciones digitiformes cortas y romas, a menudo fusionadas. P. digitata desarrolla ramas más cilíndricas y verticales y es claramente más delicada. La primera tolera nutrientes altos; la segunda, no.
  • Aísla la colonia desde el primer día. Su base incrustante avanza entre 1 y 2 cm al mes y sofoca sin piedad zoantídeos, Montipora y cualquier tejido que toque. Colócala sobre una roca «isla» con 6–8 cm de sustrato desnudo alrededor, no en la estructura principal del arrecife.
  • Aclimatación lumínica en tres fases. Si viene de un sistema con PAR inferior a 120, no la subas de golpe. Semana 1–2 al 50 % de la intensidad final, semana 3 al 75 %, semana 4 a la posición definitiva. Tolera bien 100–250 µmol·m⁻²·s⁻¹; por encima de 350 se aclara y pierde color de forma reversible, pero tarda 6–8 semanas en recuperar zooxantelas.
  • No la mates de hambre. Es una especie de aguas turbias y ricas en materia orgánica. Mantener NO₃ entre 5 y 15 mg/L y PO₄ entre 0,05 y 0,15 mg/L la mantiene con color y crecimiento. En sistemas ULNS se vuelve pálida, casi blanca, y la base se retrae; en ese caso suplementa con aminoácidos y fitoplancton tres veces por semana.
  • Vigila la trampa de detritos. La maraña de ramas cortas y fusionadas acumula sedimento en su interior. Sifona con una jeringa de 60 mL o con una bomba de flujo suave una vez por semana: el detrito retenido genera necrosis basal, el fallo más frecuente en esta especie en cautividad.
  • Movimiento de agua, 15–20 veces el volumen por hora. Agradece corriente indirecta y caótica; el chorro directo de una bomba a menos de 15 cm provoca retracción policipal prolongada y erosión del borde de crecimiento.
  • Fraccionamiento rápido y limpio. Corta con alicates de hueso una rama de al menos 2 cm con varios cálices completos, seca el corte 30 segundos y pega con cianoacrilato en gel. La cicatrización se cierra en 10–14 días y la rama hija suele fijarse al sustrato en 3 semanas. No la manipules con las manos secas: el mucus es su única barrera frente a infecciones.
  • Baño de entrada obligatorio. Sumerge la pieza 5 minutos en yodo diluido o en un baño comercial a base de yodo. Revisa el reverso de la base, donde aparecen pequeños nudibranquios y platelmintos crípticos; también busca puntos blancos de 1 mm, indicio de protozoos o picaduras de caracoles.
  • Cuidado con los vecinos agresivos. No la pongas en contacto con Euphyllia, Galaxea ni Hydnophora: sus filamentos mesentéricos la necrosan en horas. Con Acropora mantén al menos 10 cm de separación.
  • Es tu especie centinela. Su respuesta es rápida y legible: retracción diurna persistente indica corriente excesiva o depredación; palidez súbita, alcalinidad inestable; base blanca con borde marrón, falta de yodo o de alimento. Úsala como indicador antes que como víctima.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

Estación Tareas principales Parámetros objetivo Observaciones específicas
Primavera
(marzo–mayo)
Poda de la base incrustante que invade roca vecina; revisión de fijaciones; subida progresiva del fotoperiodo de 9 a 11 h; primer baño preventivo del año. T 25–26 °C · Salinidad 35 g/L · KH 7,5–8,5 dKH · Ca 420–440 mg/L · Mg 1300–1350 mg/L Época de crecimiento más activo. Aprovecha para fragmentar y regalar ramas; la cicatrización es más rápida con agua estable.
Verano
(junio–agosto)
Control térmico con ventiladores o enfriador; sifonado semanal de detritos; vigilancia de algas filamentosas en la base; reducción del fotoperiodo a 9–10 h si la temperatura sube. T máxima 27 °C (nunca sostenida) · KH 8–9 dKH por mayor consumo · NO₃ 5–10 mg/L Por encima de 28 °C aparece blanqueamiento en los bordes y retracción policipal. Es su punto débil real: no la temperatura alta puntual, sino la falta de oxígeno asociada.
Otoño
(septiembre–noviembre)
Limpieza de bombas y skimmer; ajuste de corriente a 15–20 renovaciones/hora; suplementación con aminoácidos 2–3 veces por semana; revisión de la base en busca de necrosis. T 25 °C · PO₄ 0,05–0,10 mg/L · Yodo 0,03–0,06 mg/L (si se mide) Con la bajada de luz natural en acuarios junto a ventana, la colonia puede palidecer; compensa con fotoperiodo o intensidad, no con más alimento.
Invierno
(diciembre–febrero)
Mínima manipulación; cambio de agua del 10 % semanal; revisión de calcio y magnesio quincenal; observación diaria de pólipos al apagado de luces. T 25–26 °C · Salinidad estable ±1 g/L · KH sin oscilaciones >1 dKH/día Es cuando mejor se aprecia la extensión policipal nocturna: si no hay pólipos visibles dos noches seguidas, revisa corriente, salinidad o presencia de depredadores.

12. ✅ CONCLUSIÓN

Psammocora contigua es un coral incrustante de cálices minúsculos y plasticidad ecológica enorme: en el arrecife habita llanuras mareales, lagunas turbias y bordes de praderas de fanerógamas, ambientes donde la luz fluctúa y el sedimento se deposita a diario. Esa biología se traduce en un perfil de acuario muy concreto: tolera nutrientes altos y variaciones térmicas moderadas, pero no soporta la competencia por espacio ni el detrito acumulado en su entramado de ramas fusionadas.

Si respetas tres reglas —aislamiento físico, sifonado semanal y estabilidad de alcalinidad— tendrás un SPS que crece de forma constante y que perdona errores que otros no perdonan. Si la tratas como un coral de exposición en un sistema ULNS, se apagará lentamente hasta desaparecer sin signos de enfermedad evidente. Es, en definitiva, la especie ideal para dar el salto a los SPS duros y, al mismo tiempo, un test exigente de la rutina de mantenimiento del acuarista avanzado.

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

Psammocora contigua procede de llanuras arrecifales y lagunas someras donde la salinidad oscila entre 28 y 36 ppt y la temperatura entre 22 y 31 °C, de modo que su aclimatación a un sistema estable exige un proceso de «desacoplamiento» de esas fluctuaciones, no una simple adaptación. En acuario rinde con Ca 410-440 mg/L, KH 7,5-8,5 dKH, Mg 1280-1350 mg/L y salinidad 35 ppt, pero el factor crítico no es el valor absoluto sino la relación entre alcalinidad y nutrientes: con PO₄ 9 su calcificación cae y el esqueleto se vuelve frágil y poroso, mientras que en agua con NO₃ 5-10 mg/L y PO₄ 0,05-0,10 mg/L tolera KH 6-7 sin signos de estrés. Esta «máscara de parámetros» provoca diagnósticos erróneos: ejemplares aparentemente sanos en sistemas con nutrientes altos se descalcifican al reducirlos bruscamente sin reajustar la alcalinidad. La secuencia correcta es bajar KH a 7 antes de reducir PO₄, y no mover más de 0,5 dKH al día.

En contacto directo, P. contigua es un competidor débil: cede ante los filamentos mesentéricos de Favia/Favites, los tentáculos barredores de Galaxea y Euphyllia, y el crecimiento de Montipora digitata o Acropora, que la sombrean y sobrecrecen en 3-6 semanas. Su estrategia no es la agresión química sino la evasión mediante proyecciones columnares que elevan el tejido fotosintético por encima del competidor, junto con la colonización rápida de esqueleto muerto. Su mucus posee actividad antimicrobiana y alelopática moderada: en cultivos mixtos frena la extensión de Briareum y Clavularia, pero no detiene a Palythoa ni a Zoanthus. El riesgo real en acuario es la competencia por disueltos: ese mucus rico en carbohidratos estimula bacterias copiotrofas que, con DOC > 3 mg/L, forman biofilm sobre la superficie y asfixian los pólipos. Carbón activo y cambios semanales del 10 % resultan más eficaces que separarla físicamente de cada vecino.

Su fotobiología es de tipo shade-adapted: en su hábitat recibe PAR de 100-300 µmol·m⁻²·s⁻¹ con turbidez elevada, y el umbral de fotoinhibición aparece hacia 450-500 µmol·m⁻²·s⁻¹ si la exposición es brusca. La aclimatación pigmentaria requiere 4-6 semanas, subiendo 30-50 µmol·m⁻²·s⁻¹ por semana y no más; con luz alta sostenida pasa de marrón a crema o verde pálido por pérdida de densidad de zooxantelas y puede blanquear en 5-7 días tras un salto de 200 µmol. El flujo idóneo es oscilatorio y turbulento de 10-20 cm·s⁻¹; por encima de 25 cm·s⁻¹ en régimen laminar aparece recesión en los bordes de la costra, y por debajo de 5 cm·s⁻¹ la sedimentación sobre la superficie horizontal desencadena necrosis basal en 2-3 semanas. La respuesta al flujo es más rápida que a la luz: retrae pólipos en minutos con corriente directa y los expande en 20-30 minutos al cesar. Dos bombas alternas cada 6 horas reproducen mejor su hábitat que un flujo constante.

Tres patologías poco frecuentes pero documentadas merecen atención. Primera, la necrosis basal por atrapamiento de sedimento: en morfos incrustantes el margen inferior acumula detrito y el tejido se retrae sin signo infeccioso; se resuelve dirigiendo una bomba pequeña de 300-500 L/h a la base, no aumentando el flujo general. Segunda, la liberación de pólipos (polyp bailout): bajo hipoxia nocturna (O₂ 30 °C durante 48 h), la especie emite pólipos viables que se reasientan; no es muerte del coral, pero indica que el sistema está al límite y obliga a reforzar la aireación nocturna. Tercera, la infección de fracturas en las proyecciones digitadas: el muñón expuesto desarrolla bandas de tejido blanco que avanzan 2-4 mm/día, y el tratamiento es corte limpio con disco y baño de yodo a 10 mg/L durante 10 minutos. Conviene además descartar esponjas perforantes del género Cliona, que erosionan el esqueleto desde el interior y solo se delatan por sus ósculos anaranjados.

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

Psammocora contigua procede de llanuras arrecifales y lagunas someras con turbidez y oscilación térmica diaria, y eso se traduce en una ventana de parámetros más ancha de lo que su etiqueta de SPS sugiere, con un punto crítico: el margen de crecimiento. Mantén densidad 1,025–1,026 (34–35 ppt), temperatura 25–28 °C, Ca 410–440 mg/L, Mg 1300–1380 mg/L y K 390–420 mg/L. La alcalinidad es donde falla el ajuste fino: por encima de 9,5 dKH el tejido del borde se engrosa y deja de avanzar; por debajo de 6,5 dKH el ribete encostrante se despega del sustrato en 48–72 h y aflora esqueleto blanco. Trabaja a 7,5–8,5 dKH con fluctuación diaria inferior a 0,4 dKH. Tolera NO₃ 5–25 mg/L y PO₄ 0,05–0,15 mg/L sin oscurecerse de forma irreversible, pero con NO₃ <2 mg/L y PO₄ <0,02 mg/L durante más de tres semanas pierde pigmentación y calcifica casi nada. No dosifiques yodo ni estroncio por rutina: es una de las especies que responde con retracción sostenida de pólipos.

Su agresividad es de tipo pasivo: no extiende tentáculos de barrido largos, sino filamentos mesentéricos y una digestión extracelular lenta que consume el tejido vecino en el punto de contacto. P. contigua puede sobrecrecer a Montipora capricornis o a Seriatopora en seis u ocho semanas, pero retrocede en 24–48 h frente a Galaxea fascicularis, Euphyllia y cualquier Briareum. El problema real es químico: los terpenos de Sinularia, Sarcophyton y Lobophytum, y los diterpenos de Briareum, inhiben su avance incluso a 10–15 cm de distancia, con un patrón característico de borde limpio y sin necrosis. Instala carbón activado a razón de 150–250 mL por 100 L, renovado cada 3–4 semanas, y separa físicamente los corales blandos con 15 cm de margen. Contra Acropora de crecimiento rápido pierde por sombreado, no por contacto. Documenta el punto de contacto con foto cada 48 h: si el borde se retrae más de 3 mm en una semana, la causa es alelopática y no un patógeno.

En su hábitat recibe PAR alto pero variable, con periodos de emersión; en acuario se adapta a 120–300 µmol/m²/s con fotoperiodo de 9–11 h, y el límite no es el máximo sino la velocidad del cambio. Subidas superiores a 80 µmol/m²/s en menos de una semana provocan palidecimiento del cenosarco y retracción de pólipos en las zonas altas de la colonia, mientras la base permanece marrón oscuro: es fotoinhibición, no blanqueamiento térmico. Baja la intensidad un 20 % y recupera pigmento en 4–6 semanas. Con el flujo ocurre lo contrario: tolera bien 5–10 cm/s, pero por encima de 20 cm/s en chorro directo y continuo el ribete encostrante se erosiona y expone trabéculas. Usa movimiento alterno u oscilatorio de 10–15 cm/s con picos cortos. Ajusta luz y flujo por separado, con dos semanas de diferencia: si cambias ambos a la vez no podrás atribuir la respuesta y perderás la colonia sin identificar la causa.

Los fallos poco frecuentes en esta especie son casi siempre mecánicos o de diagnóstico. Primero, necrosis bajo el borde de la placa: el detrito se acumula entre coral y roca y genera un anillo pardo que progresa hacia arriba; solución, sifonado semanal dirigido con jeringa y una bomba de 800–1.200 L/h apuntando tangencialmente. Segundo, esponjas perforantes del género Cliona, que se manifiestan como poros amarillos o naranjas en el esqueleto y no como pérdida de tejido; no hay tratamiento in situ, fragmenta 2 cm de borde sano y descarta el resto. Tercero, confusión con P. digitata: si tu colonia desarrolla ramas verticales de más de 3 cm en lugar de placas, revisa la identificación antes de ajustar parámetros por ella. Cuarto, regresión tras dosificar aminoácidos o fitoplancton concentrado: reduce la dosis a la mitad. Ante cualquier necrosis de avance rápido, fragmenta de inmediato, sumerge en yodo a 10 mg/L durante 8 minutos y reubica en flujo medio-alto, nunca en luz máxima.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Cómo distingo Psammocora contigua de otras Psammocora del comercio?

Forma colonias incrustantes que emiten nodulaciones y ramas cortas, irregulares, aplanadas y de ápices romos, frecuentemente con margen pálido. Los coralitos miden 1–2 mm, están poco excavados —casi enrasados— y no se alinean en hileras definidas: ese es el carácter clave frente a P. haimeana y P. nierstraszi, que los disponen en series. P. digitata presenta ramas cilíndricas más regulares y coralitos excavados por toda la superficie. En P. contigua los septos se ordenan en dos ciclos (6–12), la columela trabecular es poco marcada y el coenosteo es granuloso-espinuloso. Benzoni et al. (2010) demostraron que el «complejo contigua» agrupa linajes morfológicamente solapados, así que muchos «Psammocora marrón incrustante» del comercio son identificaciones provisionales.

¿Qué parámetros exactos le van mejor?

Salinidad 35 (rango 34–36), temperatura 25–26 °C (tolera 24–29), dKH 7,5–8,5 estable, Ca 420–440 mg/L, Mg 1300–1350 mg/L, NO3 2–15 mg/L y PO4 0,03–0,10 mg/L. Es una de las pocas SPS que mantiene crecimiento y color decente con nutrientes altos: procede de lagunas y planicies turbias, soporta bajadas puntuales de salinidad y picos térmicos mejor que un Acropora</em

Roberto Parra Jiménez 🎓 Biólogo Marino – Universidad de Hawaii (UH Mānoa)
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia

© 2026 Roberto Parra Jiménez – Biólogo Marino (UH Mānoa). Todos los derechos reservados.

Comentarios

Deja una respuesta

Tu dirección de correo electrónico no será publicada. Los campos obligatorios están marcados con *

Acuario marino en acuarios.com

Explora las secciones de la tienda.