Corales.com · guías de corales, química del agua y acuariofilia marina

Psammocora digitata

Psammocora digitata
Autor: Roberto Parra Jiménez 🎓 Biólogo Marino – Universidad de Hawaii (UH Mānoa)
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia

📋 ÍNDICE DEL ARTÍCULO

  • 1. 🌏 INTRODUCCIÓN
  • 2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
  • 3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
  • 4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
  • 5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
  • 6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
  • 7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
  • 8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES
  • 10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
  • 11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
  • 12. ✅ CONCLUSIÓN

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Psammocora digitata es un SPS de coralitos minúsculos (1–2 mm de diámetro) que engaña: no tiene la estética de ramas finas y pulidas de un Acropora, sino una base incrustante sólida de la que emergen dedos romos, gruesos y cortos, de 8–15 mm de diámetro y 2–6 cm de longitud, con puntas redondeadas y a menudo más pálidas que el resto de la colonia. Esa morfología compacta es precisamente lo que lo convierte en uno de los SPS más agradecidos del hobby y en la mejor transición entre corales blandos/LPS y el mundo de los pequeños pólipos.

Su tolerancia a la manipulación es alta: soporta transporte prolongado, encaja bien en fragmentos pequeños sobre roca viva y cicatriza con rapidez. En cautividad crece de forma mixta, extendiéndose lateralmente por incrustación (1–3 cm anuales de expansión radial) y levantando dedos nuevos de forma irregular. La coloración típica va del crema y el marrón grisáceo al rosa salmón, verde lima o incluso violeta pálido; las puntas claras son signo de crecimiento activo, mientras que un oscurecimiento uniforme a marrón chocolatesuele indicar exceso de nutrientes o luz insuficiente.

Parámetros concretos que funcionan bien con esta especie: temperatura 25–26,5 °C (rango tolerable 23–29 °C), salinidad 35 g/L (34–36), pH 8,1–8,4, alcalinidad 7,5–9,0 dKH, calcio 420–450 mg/L, magnesio 1300–1380 mg/L, nitrato 2–15 mg/L y fosfato 0,03–0,12 mg/L. Agradece agua con nutrientes disponibles: en sistemas con NO₃ por debajo de 1 mg/L y PO₄ indetectable se vuelve pálido y frágil, y es más propenso a necrosis basal. Iluminación de 120–350 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR) con fotoperiodo de 10–12 h; soporta puntas de 450 µmol si la alcalinidad es estable, pero se blanquea con ULNS y luz alta sostenida.

El punto crítico no es la luz ni el flujo, sino la estabilidad de la alcalinidad: oscilaciones de más de 1 dKH en 24 h producen recesión de tejido desde la base, un problema frecuente porque su base incrustante queda en zonas de sombra donde el flujo es menor. Su agresividad es baja (no desarrolla filamentos digestivos largos), pero sufre competencia por sobrecrecimiento: Montipora spp. y zoántidos lo cubren si se colocan en contacto. Conviene ubicarlo en la parte media del acuario, sobre roca consolidada y con flujo alterno moderado.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

Descrita por Milne Edwards y Haime en 1851, Psammocora digitata pertenece a la familia Psammocoridae, creada por Chevalier en 1975 y resucitada tras los trabajos filogenéticos de Benzoni y colaboradores (2007, 2012), que sacaron al género Psammocora de la familia Siderastreidae al demostrar que su esqueleto perforado y su columela trabecular no son homólogos de los de Siderastrea. En la práctica, esto significa que no es un pariente cercano de los «corales estrella» del Caribe, sino de un linaje indopacífico propio.

La identificación específica se apoya en tres caracteres: coralitos cerioides de 1,2–2,2 mm con paredes diferenciadas, septos en dos ciclos (8–12) con el primer ciclo alcanzando la columela y coenosteum granuloso con papilas finas. Se confunde con frecuencia con P. contigua, de ramas más aplanadas e irregulares y coralitos casi enrasados, y con P. haimeana, de colonias mayoritariamente incrustantes y superficie más lisa. En el comercio, muchos ejemplares etiquetados como P. digitata son en realidad P. contigua, algo relevante porque esta última es aún más tolerante a la turbidez.

Rango Clasificación Notas
Reino Animalia Metazoo, sin simetría bilateral
Filo Cnidaria Cnidocitos con nematocistos
Clase Anthozoa Pólipo solitario o colonial, sin fase medusa
Subclase Hexacorallia Septos y tentáculos en múltiplos de seis
Orden Scleractinia Coral pétreo, esqueleto de aragonito
Familia Psammocoridae Antes incluida en Siderastreidae
Género Psammocora 20–25 especies válidas, todas indopacíficas
Especie Psammocora digitata Milne Edwards & Haime, 1851
Forma de crecimiento Incrustante-digitada Dedos de 8–15 mm de grosor
Simbiontes Zooxantelas (Symbiodinium spp.) Autótrofa en gran medida

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Especie de amplia distribución indopacífica: mar Rojo, golfo de Adén, África oriental (Kenia, Tanzania, Mozambique), Madagascar, Seychelles, Maldivas, Chagos, Andamán, Tailandia, Malasia, Singapur, Indonesia, Filipinas, Palaos, Papúa Nueva Guinea, Gran Barrera de Coral, Australia Occidental, islas Ryukyu, Taiwán y Micronesia. Rango batimétrico de 0 a unos 30 m, con máxima abundancia entre 1 y 12 m.

Ocupa preferentemente planicies arrecifales (reef flats), bordes de laguna, cabezas de coral someras y laderas superiores batidas, pero también aparece en canales y bahías con fuerte influencia terrígena. En Singapur y en la bahía de Yakarta es una de las especies dominantes de arrecifes turbios con alta sedimentación, donde la visibilidad cae por debajo de 2 m; allí coloniza cascajo de coral muerto, pavimento calcáreo y roca volcánica secundaria. Esa

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Forma colonial. Psammocora digitata (familia Psammocoridae, antes incluida en Siderastreidae) presenta una morfología mixta muy característica: la colonia se inicia como una lámina incrustante de 1-2 mm de espesor que se adhiere íntimamente a la roca, y de ella emergen proyecciones digitiformes irregulares de 1-3 cm de longitud (excepcionalmente 5 cm) y 8-15 mm de grosor, con ápices romos —no afilados como en Acropora— y frecuentemente anastomosadas entre sí. La densidad de dígitos depende del ambiente: en flujo fuerte y luz alta la colonia tiende a compactarse y engrosar los dedos; en flujo débil y luz baja domina la fase incrustante y los dígitos crecen más finos y dispersos. Los márgenes de crecimiento son pálidos, a veces con tonos azulados o violáceos, y son el mejor indicador de actividad calcificadora.

Coralitos y esqueleto. Los cálices miden 1,5-2,5 mm de diámetro y son somero: apenas excavados, con paredes mal definidas y confluyentes, de modo que los coralitos se funden visualmente con el coenosteum (esta es la clave diagnóstica frente a P. contigua, de cálices más profundos y definidos, y frente a P. superficialis, de coralitos más pequeños y uniformes). Los septos se disponen en dos ciclos (10-12 primarios), con márgenes internos profundamente festoneados y caras laterales finamente granuladas; la columela es una pequeña cúpula trabecular, a menudo poco aparente. El coenosteum está cubierto de espínulas finas que le dan una textura mate y granulosa, tipo «papel de lija», visible con lupa de 10×. El esqueleto es de aragonito, poroso y de baja densidad: los dígitos tienen núcleo esponjoso, resisten bien la compresión pero se parten con facilidad ante fuerzas laterales, algo relevante al manipular fragmentos. El tejido (coenosarc) es muy fino, de 0,5-1 mm sobre el esqueleto, lo que hace a la especie especialmente sensible a la abrasión y al depósito de sedimento.

Pólipos y zooxantelas. Los pólipos son pequeños (1-2 mm), con tentáculos cortos, y permanecen retraídos durante el fotoperiodo, extendiéndose al apagarse las luces o tras la adición de alimento, momento en que la colonia adopta un aspecto «borroso» bajo luz actínica. Alimenta principalmente por vía autótrofa: alberga Symbiodinium (típicamente del clado C en escleractinios de arrecife somero) en la gastrodermis, y mantiene la pigmentación incluso con nitratos de 15-20 mg/L, algo que no toleran muchos SPS. La captura de presas (nauplios de Artemia, copépodos) es posible pero innecesaria en acuarios maduros. Coloración: crema, beige, marrón claro o verdosa, con ápices y márgenes pálidos. El blanqueamiento se manifiesta primero en los ápices de los dígitos, que se vuelven translúcidos antes de perder tejido; la coloración marrón intensa y uniforme suele indicar exceso de nutrientes o luz insuficiente, no buena salud.

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Procede de lagunas, llanuras arrecifales y zonas de back-reef con turbidez y sedimentación variables, lo que explica su tolerancia relativa a nutrientes y su menor exigencia lumínica frente a Acropora. El punto crítico no es el valor absoluto de cada parámetro, sino la estabilidad del KH y la salinidad.

Parámetro Rango objetivo Observaciones
Temperatura 24-26 °C (límite 23-27 °C) Evitar oscilaciones >1,5 °C/día
Salinidad 34-35 ppt (1.025-1.026) Medir con refractómetro calibrado
pH 8,1-8,4 Estable; evitar <7,9
KH (dureza de carbonatos) 7,5-9,0 dKH Nunca >11; mantener ±0,5 dKH
Calcio 410-450 mg/L Consumo moderado
Magnesio 1.290-1.350 mg/L Por debajo de 1.200 se altera el equilibrio Ca/KH
Nitratos (NO₃) 2-10 mg/L (tolera 10-20) Nutrientes altos oscurecen la coloración
Fosfatos (PO₄) 0,02-0,10 mg/L >0,15 favorece algas sobre la lámina incrustante
Iluminación 100-250 µmol·m⁻²·s⁻¹ PAR Hasta 300 PAR con aclimatación; 10-12 h de fotoperiodo
Flujo Moderado a moderadamente fuerte (15-25× volumen/h) Turbulento e intermitente; nunca laminar directo

En la práctica: mantén el coral en la mitad inferior o media del acuario, con 120-180 PAR si viene de un sistema con nutrientes altos. Con 250-300 PAR y NO₃ bajo (<2 mg/L) se produce decoloración de ápices; con <80 PAR la colonia se oscurece y la tasa de extensión se reduce casi a la mitad. El flujo debe barrer la superficie para evitar que el sedimento se pose sobre el coenosarc fino, pero sin impactar directamente sobre los dígitos, que se erosionan en su base con corrientes de más de 30×.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocación. Es una especie que conviene fijar sobre una roca aislada («isla») o sobre una loseta de cerámica, nunca directamente en la roca principal: su lámina incrustante avanza varios centímetros al año y resulta difícil de desprender sin dañar el resto del arrecife. Deja 5-8 cm de separación respecto a corales vecinos; en contacto, P. digitata extruye filamentos mesentéricos y puede necrosar tejido de Montipora o Seriatopora mediante digestión externa, aunque pierde frente a Galaxea o Euphyllia. La cara superior o superior-lateral de la roca es la posición óptima: recibe luz tamizada y flujo turbulento.

Crecimiento. El crecimiento es bifásico. Primero se expande el margen incrustante, a un ritmo de 1-3 mm/mes en condiciones óptimas; un fragmento de 2 cm puede tardar 2-3 meses en cubrir 3-5 cm² de sustrato antes de emitir los primeros dígitos. Después, las proyecciones verticales crecen 3-10 mm/mes. La calcificación es más lenta que en Acropora o Stylophora: no esperes una colonia de 15 cm en un año. A cambio, la especie soporta mejor caídas puntuales de KH y periodos de nutrientes elevados, lo que la hace adecuada para acuarios de arrecife mixto con SPS y LPS. Un KH estable a 8 dKH con Ca en 430 mg/L y Mg en 1.320 mg/L sostiene el crecimiento sin necesidad de dosis agresivas de oligoelementos.

Fragmentación. Los dígitos se cortan con alicates de hueso o cizalla de coral, haciendo un corte limpio (no un aplastamiento) y dejando al menos 5 mm de tejido sano por encima del punto de sección; para la base incrustante, usa minitorno con disco de diamante y refrigeración. Realiza el corte fuera del agua el menor tiempo posible y devuelve el fragmento al acuario en minutos. Desinfecta con baño de yodo (10-15 min a dosis de etiqueta) o un dip comercial, y monta sobre tapón con cianoacrilato en gel: la superficie de

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Psammocora digitata presenta pólipos de 0,5-1 mm y cnidocitos de baja potencia; su defensa se basa más en la arquitectura compacta de sus ramas digitiformes que en la agresión química. Es, por tanto, un coral pasivo y de crecimiento lento (1-2 cm anuales en las ramas apicales), lo que lo convierte en el eslabón débil de cualquier cara a cara en el acuario.

Peces

  • Sin riesgo práctico: Amphiprion, Gobiodon, Ecsenius, Nemateleotris, Synchiropus, Cirrhilabrus y Pseudochromis conviven sin incidir sobre el tejido. Los lábridos pequeños (Halichoeres chrysus, Pseudocheilinus hexataenia) son incluso útiles como control de platelmintos y copépodos.
  • Vigilancia: Ctenochaetus strigosus y C. tominiensis raspan la película algal de la base del coral; en piezas con STN incipiente pueden retirar tejido necrótico junto con el alga. Salarias fasciatus irrita la base al pastar sobre ella.
  • Riesgo alto: Chaetodon lunula, C. auriga y C. collare; los enanos Centropyge eibli, C. bispinosus y C. loriculus picotean pólipos de forma intermitente y especialmente sobre corales pardo-beige poco crípticos; Pomacanthus spp., Canthigaster valentini, balístidos y escáridos (Scarus, Chlorurus) trituran el esqueleto directamente.

Invertebrados

  • Compatibles: Trochus, Cerithium, Nassarius, Lysmata, Alpheus, ermitaños (Calcinus, Clibanarius) y ofiuras pequeñas. Los cangrejos galéridos comensales (familia Cryptochiridae) que ocasionalmente habitan en agallas de sus ramas son inofensivos, aunque deforman la arquitectura de la colonia.
  • Peligrosos: los caracoles coralívoros Coralliophila abbreviata y Drupella cornus perforan y consumen tejido; retíralos manualmente tras el apagado. Estrellas de mar de gran tamaño (Culcita novaeguineae, Protoreaster nodosus) se posan sobre la colonia y la asfixian. Los erizos Diadema y Tripneustes raspan ramas basales.

Otros corales

Es colonizado con rapidez por Acropora, Montipora y zoántidos, y agredido químicamente por Hydnophora, Galaxea, Euphyllia y Palythoa. Mantén al menos 10-12 cm de separación y carbón activado en continuo para adsorber alelopatías.

8. 🩺 ENFERMEDADES Y PROBLEMAS COMUNES

Blanqueamiento

En su hábitat lagunar tolera picos de 30-31 °C, pero una exposición mantenida a más de 32 °C durante 5-7 días provoca la pérdida de más del 50 % de sus zooxantelas, empezando por las puntas de las ramas. Con tejido intacto, la recuperación se produce en 4-8 semanas. Un exceso lumínico (PAR superior a 500 µmol·m⁻²·s⁻¹ con nutrientes en niveles de agotamiento, NO₃ < 1 mg/L y PO₄ < 0,02 mg/L) blanquea igualmente los ápices: es una especie de arrecife turbio y somero, no de aguas ultraoligotróficas.

RTN y STN

La necrosis rápida (RTN) es menos frecuente que en Acropora, pero se desencadena con variaciones de KH superiores a 1 dKH en 24 h, cambios bruscos de salinidad o temperatura sostenida por encima de 30 °C con presencia de Vibrio coralliilyticus. El cuadro más típico es la necrosis lenta desde la base (STN), casi siempre asociada a acumulación de detritos entre las ramas, sombreado basal o yodo por debajo de 0,03 mg

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

  1. Verifica la identificación antes de pagar. La Psammocora digitata auténtica desarrolla una base incrustante de la que emergen ramas cortas, gruesas y cónicas, de punta roma, con coralitos diminutos (menos de 2 mm) enrasados en el esqueleto y sin córneas elevadas. Si ves plataformas foliáceas o láminas horizontales, es P. contigua; si las ramas son finas y alargadas con coralitos en relieve, sospecha P. profundacella. Gran parte del material que se vende como «digitata» es en realidad Cyphastrea o Porites ramificado, y eso cambia por completo el manejo.
  2. Colócala con la base apoyada, no encajada. Es una especie que primero incrusta y luego ramifica: necesita roca rugosa y estable donde la base se expanda. Si la pegas con epoxi dejando huecos bajo la colonia, acumularás detrito en una cámara muerta y la necrosis basal aparecerá en semanas.
  3. Luz: 120-220 PAR como franja segura. Tolera bien 80-100 PAR en tanques maduros con nutrientes altos, pero por encima de 300 PAR sin aclimatación se blanquea y pierde el color pardo-verdoso característico. Aclimata subiendo 30-40 PAR por semana.
  4. Flujo indirecto y cruzado, 15-20× el volumen del acuario por hora. No soporta el chorro laminar directo de una bomba: cierra pólipos y retrae las ramas. Lo que necesita es flujo turbulento que atraviese la maraña de ramas, no que la golpee.
  5. Vigila el detrito entre ramas. Es su punto débil real. Una jeringa de 20 ml con agua del acuario, soplada suavemente en la base cada 7-10 días, previene la recesión de tejido en la zona de unión, el problema número uno en esta especie en cautividad.
  6. Nutrientes: no la trates como una Acropora. Rinde mejor con NO₃ entre 5 y 15 mg/l y PO₄ entre 0,03 y 0,10 mg/l. En sistemas ULNS (< 1 mg/l de nitrato) se queda pálida, con crecimiento casi nulo y aspecto «gris». Es, por tanto, una SPS excelente para acuarios de nutrientes medios.
  7. Alcalinidad estable por encima de todo. dKH 7,5-9,0 con oscilación diaria menor de 0,3. El consumo es lento pero constante por la masa incrustante; no esperes grandes caídas y no sobredosifiques por inercia.
  8. Calcio 420-450 mg/l, magnesio 1300-1350 mg/l. Con magnesio por debajo de 1250 el calcio precipita y la base incrustante deja de extenderse aunque el resto de parámetros sea correcto.
  9. Alimentación real, no mágica. Captura bacterioplancton y partículas de 50-200 µm. Aminoácidos dos veces por semana y una suspensión de fitoplancton muy diluida provocan extensión de pólipos en fotoperiodo nocturno; los alimentos secos grandes son inútiles.
  10. Ojo con los copépodos parásitos. Es susceptible a plagas de copépodos harpacticoides similares a los «black bugs». Revisa la cara inferior de la base con lupa: puntos negros móviles y zonas de tejido ausente con esqueleto blanco. Tratamiento con baño de prazicuantel no funciona; retira y sumerge en agua con yodo según protocolo del fabricante.
  11. Dale espacio o te invadirá. La base incrustante avanza unos pocos milímetros al mes y ahoga a zoántidos y a otras SPS contiguas. Deja 8-10 cm de roca libre alrededor.
  12. Fragmentación sencilla y agradecida. Corta una rama de 3-4 cm con tenaza de hueso por debajo de la bifurcación, seca el corte, pégalo con cianoacrilato gel y colócalo en zona de 100-150 PAR durante tres semanas. La incrustación sobre el taco es rápida en 20-30 días.
  13. Temperatura: 24-26 °C con techo estricto de 28 °C. Crecimiento aceptable hasta 27 °C, pero por encima de 28 °C durante más de 24 h aparece blanqueamiento parcial de puntas.
  14. No la muevas. Es poco tolerante a los cambios de posición: cada reubicación cuesta dos o tres semanas de aclimatación y, a menudo, una regresión de tejido en la base.
  15. Registra el crecimiento. Fotografía la colonia cenital cada mes con escala. Su tasa es lenta (0,3-0,8 mm de extensión radial al mes en condiciones óptimas); sin registro es imposible detectar que se ha estancado.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

Estación Parámetros y medición Luz y fotoperiodo Alimentación Mantenimiento e inspección Riesgo principal
Primavera
(mar-may)
dKH 8,0; Ca 430; Mg 1320; NO₃ 5-8; PO₄ 0,05. Medición semanal completa. 9-10 h de fotoperiodo; subida gradual si se ha bajado en invierno (+30 min/semana). Aminoácidos 2×/semana; fitoplancton diluido 1×/semana. Soplado de base con jeringa; revisión con lupa de cara inferior; primer fragmentado del año. Picos de fosfato por mayor carga orgánica; proliferación de algas sobre la base incrustante.
Verano
(jun-ago)
dKH 7,5-8,5; Ca 420-440; Mg 1300; NO₃ 5-10; PO₄ 0,04-0,08. Vigilancia diaria de temperatura. 10 h; bajada de 1-2 % de intensidad si la temperatura del agua supera 27 °C. Reducir a 1×/semana de aminoácidos si T > 27 °C. Ventiladores o refrigerador con controlador; limpieza de aspiración del skimmer; comprobar sellos y bombas. Sobrecalentamiento (> 28 °C) y caída de oxígeno nocturna.
Otoño
(sep-nov)
dKH 8,0-9,0; Ca 430-450; Mg 1320-1350; NO₃ 8-15; PO₄ 0,06-0,10. Test de Mg mensual. 10 h estables; no reducir antes de que baje la temperatura ambiente. Máxima frecuencia del año: aminoácidos 2-3×/semana, bacterioplancton 1×/semana. Ventana ideal para fragmentar y recolocar; revisión de plagas; limpieza profunda de roca. Acumulación de detrito en la maraña y necrosis basal.
Invierno
(dic-feb)
dKH 8,0; Ca 430; Mg 1320; NO₃ 5-10; PO₄ 0,05-0,08. dKH cada 48 h si usas reactor de calcio. 9-10 h; compensar con temporizador, nunca con luz natural de la ventana. Aminoácidos 1-2×/semana; suspender si hay recesión de tejido. Verificar calentador y controlador de temperatura; reponer agua de ósmosis por mayor evaporación de calefacción; fotografía cenital mensual. Fallo de calentador (caída brusca) y oscilación de alcalinidad por consumo irregular.

Anota en cada fila la fecha real de ejecución: la P. digitata perdona un parámetro fuera de rango puntual, pero no una rutina irregular repetida durante meses.

12. ✅ CONCLUSIÓN

La Psammocora digitata es una SPS de segunda línea que merece mucho más crédito del que se le da. No compite en color con las acroporas, pero ofrece algo que estas rara vez permiten: crecimiento y color aceptables en acuarios de nutrientes medios (NO₃ 5-15 mg/l, PO₄ 0,03-0,10 mg/l), con luz moderada de 120-220 PAR y flujo turbulento sin ser laminar. Su base incrustante y sus ramas romas la convierten en una excelente especie «puente» para acuaristas que ya dominan la estabilidad química pero todavía no quieren asumir el ritmo de una Acropora.

El éxito con esta especie se reduce a tres factores, en este orden: estabilidad de alcalinidad (oscilación diaria menor de 0,3 dKH), ausencia de detrito acumulado bajo la colonia y no reubicarla. Los tres son controlables con rutina, no con equipamiento caro. Si además mantienes magnesio por encima de 1300 mg/l y temperatura con techo en 28 °C, la colonia extenderá su base de forma continua y podrás fragmentarla una o dos veces al año sin complicaciones.

Lo que nunca debes esperar de ella es velocidad: 0,3-0,8 mm de extensión radial al mes es un ritmo normal, y confundirlo con estancamiento lleva a muchos aficionados a mover la colonia o a sobredosificar, que es exactamente lo que la mata. Registra el crecimiento con fotografías cenitales mensuales, respeta el calendario estacional y trata cualquier recesión blanca en la base como una señal de flujo insuficiente o de detrito acumulado, no como una enfermedad misteriosa. Con ese enfoque, esta Psammocora se convierte en una de las SPS más duraderas y silenciosas del acuario.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Cómo identifico Psammocora digitata y la distingo de sus congéneres?

La colonia parte de una base incrustante de la que emergen proyecciones digitiformes de 5–20 mm de grosor y 1–4 cm de longitud, con ápices romos y bifurcaciones frecuentes. Los cálices miden 1–2 mm de diámetro, son poco profundos y sus paredes están formadas por septocostae confluentes con septos en dos ciclos; carece de pali. A diferencia de P. superficialis, de ramas finas y frágiles, cálices aún menores y propia de ambientes más profundos y protegidos, P. digitata presenta ramas macizas y cálices distribuidos por toda la superficie, incluida la cara inferior de los dedos. P. contigua es casi exclusivamente incrustante con nódulos cortos, y P. stellata muestra ramas aplanadas y más anchas. El color oscila entre crema, beige y marrón, con morfos verde pálido o azulado en los ápices.

¿Qué iluminación y corriente necesita exactamente?

Trabaja de forma estable entre 150 y 350 µmol·m⁻²·s⁻¹ (PAR), con picos de 450–500 µmol·m⁻²·s⁻¹ solo tras aclimatación progresiva de 4–6 semanas. Tolera mejor la luz moderada que Acropora: por debajo de 100 µmol·m⁻²·s⁻¹ se oscurece y pierde matiz, mientras que un salto brusco a alta intensidad con espectro rico en 400–480 nm provoca blanqueamiento apical. En corriente, exige flujo turbulento y alternante de 15–25 cm·s⁻¹; el flujo laminar directo erosiona el tejido de los ápices y la calma favorece la acumulación de sedimento en la base. Colócala en la zona media del arrecife, típicamente a 20–30 cm de la superficie en un acuario de 55–60 cm de altura útil.

¿Qué parámetros de agua debo mantener?

Temperatura 24–26 °C (límite absoluto 27,5 °C), salinidad 34–35 g·L⁻¹ (1.025–1.026), KH 7,5–8,5 dKH con deriva máxima de 0,3 dKH al día, calcio 420–450 mg·L⁻¹, magnesio 1280–1350 mg·L⁻¹, potasio ≈400 mg·L⁻¹ y yodo 0,05–0,06 mg·L⁻¹. Nitrato 1–5 mg·L⁻¹ y fosfato 0,03–0,08 mg·L⁻¹: admite nutrientes algo más altos que un SPS estricto, pero por encima de 10 mg·L⁻¹ de NO₃ se vuelve marrón oscuro y pierde contraste. Es especialmente sensible a los descensos bruscos de alcalinidad, que producen recesión del tejido basal en 24–48 h.

¿Dónde la coloco y cómo gestiono su competencia?

No desarrolla tentáculos barredores apreciables, por lo que pierde frente a Hydnophora, Galaxea, Euphyllia y la mayoría de Montipora de crecimiento rápido. Deja un margen de 4–6 cm frente a estos géneros y frente a Zoanthus, que la invade por la base. Su crecimiento es lento (0,5–2 cm anuales en ramas), así que la roca debe quedar libre de macroalgas y de Aiptasia. Rinde mejor con la base en sombra parcial y los dedos expuestos, sobre roca viva madura y con la placa de montaje totalmente cubierta de algas coralinas para evitar la colonización por cianobacterias.

¿Cómo la fragmento y aclimato un esqueje?

Corta un dedo completo por su base con alicates de hueso, obteniendo fragmentos de 2–3 cm; el corte limpio cicatriza mejor que un desgarro. Seca ligeramente la base, fija con cianoacrilato en gel sobre un tapón y aplica un baño de yodo a 12,5 mg·L⁻¹ durante 8–10 minutos o un producto comercial tipo CoralRx. Mantén el esqueje en zona de baja luz (80–120 µmol·m⁻²·s⁻¹) y flujo suave 5–7 días, y sube progresivamente en 3–4 semanas. La cicatrización completa del corte lleva 2–4 semanas; montar el fragmento en horizontal acelera la incrustación del tapón.

¿Qué problemas sanitarios concretos presenta en acuario?

El riesgo principal es la necrosis rápida de tejido tras picos térmicos por encima de 28 °C o caídas de salinidad por relleno defectuoso, con pérdida de una colonia entera en 48–72 h. La recesión basal por sedimento acumulado entre los dedos es habitual en acuarios con poca corriente y requiere sifonado periódico. Los cortes mal curados pueden desarrollar infecciones bacterianas blanquecinas

Roberto Parra Jiménez 🎓 Biólogo Marino – Universidad de Hawaii (UH Mānoa)
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia

© 2026 Roberto Parra Jiménez – Biólogo Marino (UH Mānoa). Todos los derechos reservados.

Comentarios

Deja una respuesta

Tu dirección de correo electrónico no será publicada. Los campos obligatorios están marcados con *

Acuario marino en acuarios.com

Explora las secciones de la tienda.