Corales.com · guías de corales, química del agua y acuariofilia marina

Symphyllia radians

Symphyllia radians
Autor: Roberto Parra Jiménez 🎓 Biólogo Marino – Universidad de Hawaii (UH Mānoa)
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia

📋 ÍNDICE DEL ARTÍCULO

  • 1. 🌏 INTRODUCCIÓN
  • 2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN
  • 3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE
  • 4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS
  • 5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO
  • 6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING
  • 7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS
  • 10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO
  • 11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS
  • 12. ✅ CONCLUSIÓN

1. 🌏 INTRODUCCIÓN

Symphyllia radians es un coral pétreo hermatípico de la familia Lobophylliidae que en el comercio aparece simplemente como «Symphyllia» y, con menos precisión, como «coral cerebro laberíptico» o «coral cerebro laberíntico». Su colonia es masiva, de contorno hemisférico a subflabeloide, con la cara superior frecuentemente aplanada y hasta 30-40 cm de diámetro en ejemplares adultos; el esqueleto es macizo y pesado, lo que la convierte en una pieza poco propensa a volcar, pero muy difícil de fragmentar sin sierra. El rasgo diagnóstico en vivo es la disposición meandroide de las cálices: valles alargados, sinuosos y ramificados que irradian desde el centro de la colonia —de ahí el epíteto radians—, de 15-25 mm de anchura, separados por muros compartidos y recorridos en su fondo por un surco axial profundo, ya que la especie carece de columela verdadera.

El tejido carnoso es notablemente grueso, con un coenosarc que cubre los muros y se extiende 1-2 cm por encima del esqueleto; esa masa de tejido es la razón de su rusticidad aparente y también de su fragilidad real: cualquier desgarro por manipulación expone el esqueleto y abre la puerta a infecciones oportunistas por ciliados. La coloración es variable y a menudo críptica en el arrecife: marrón grisáceo, verdoso o beige en los muros, con fondos de valle en verde fluorescente, rosa, naranja o crema, y una línea de tejido más claro en el borde de crecimiento.

En acuariofilia marina se la considera un LPS de entrada, pero no un coral «de descuido». Tolera bien niveles de nutrientes moderados (NO₃ 2-10 mg/L, PO₄ 0,03-0,10 mg/L), iluminación baja y flujo suave, y acepta alimento congelado con avidez tras la extinción de luces. Sus puntos críticos son tres: no soporta flujo directo e intenso, que desprende tejido de los muros; es extremadamente agresiva por contacto, con digestión extracelular sobre tejido vecino, por lo que requiere un radio libre de 10-15 cm; y es propensa a la «banda marrón» cuando la temperatura supera de forma sostenida los 28 °C o cuando se acumula detritus en los valles.

2. 🧬 TAXONOMÍA Y CLASIFICACIÓN

La posición taxonómica del género cambió con la reorganización molecular de los escleractinios robustos (Budd et al., 2012; Huang et al., 2014): Symphyllia fue separada de Mussidae y situada en Lobophylliidae, junto a Lobophyllia, Acanthastrea, Micromussa, Cynarina, Scolymia y Echinophyllia. La diferencia con Lobophyllia es estructural: en Lobophyllia los cálices son fácelo-meandroidos y los muros son propios de cada serie; en Symphyllia los muros son comunes y los septos de cálices adyacentes son confluentes a través de ellos. Los dientes septales son grandes, redondeados y romos, sin lóbulos paliformes, y el surco axial sustituye a la columela.

Reino Animalia
Filo Cnidaria
Clase Anthozoa
Subclase Hexacorallia
Orden Scleractinia
Suborden Lobophylliina
Familia Lobophylliidae
Género Symphyllia
Especie Symphyllia radians Milne Edwards & Haime, 1849
Sinónimos relevantes Mussa radians; registros atlánticos del género reasignados a Mussismilia
Esqueleto Aporoso, masivo, meandroide con muros comunes
Simbiontes Symbiodiniaceae (clados C/D, típicos de Lobophylliidae)
Distribución Indo-Pacífico tropical (no existe en el Atlántico)
Comercio CITES Apéndice II; reproducción sexual masiva en la naturaleza

Advertencia práctica: los ejemplares del Caribe vendidos como «Symphyllia» son Mussismilia (por ejemplo M. braziliensis), con requisitos de corriente y temperatura distintos. Verificar el origen indo-pacífico del ejemplar evita errores de mantenimiento.

3. 🗺️ ORIGEN Y HÁBITAT EN EL ARRECIFE

Especie ampliamente distribuida en el Indo-Pacífico: mar Rojo, golfo de Adén, costa este africana hasta Durban, Madagascar, Maldivas, archipiélago indo-malayo (centro de máxima diversidad), Filipinas, Indonesia, gran barrera de coral, islas Ryukyu y Micronesia hasta Samoa. Ocupa un rango batimétrico amplio, de 0 a unos 40 m, aunque la densidad máxima se sitúa entre 5 y 25 m en el arrecife posterior y en parches lagunares.

Se asienta sobre sustrato consolidado: caliza muerta, escombros cementados por algas coralinas, cabezas de Porites muertas y superficies horizontales o ligeramente inclinadas del arrecife posterior, la cresta y el talud superior. No es una especie libre ni desplazada pasivamente como Trachyphyllia geoffroyi; se fija y permanece en su lugar durante décadas. Tolera turbidez y sedimentación moderadas, hábitat que comparte con Lobophyllia hemprichii, Echinophyllia y Acanthastrea; de hecho, es común encontrarla en zonas con resuspensión de sedimento durante las mareas, donde el tejido carnoso y la capacidad de limpieza mucociliar le confieren ventaja.

La hidrodinámica del hábitat natural es de corriente suave a moderada, predominantemente laminar u oscilante, con episodios de mayor energía solo en la cresta. Esto explica su manejo en acuario: colocación en la parte baja de la roca o directamente sobre arena gruesa y grava consolidada, con el valle orientado en paralelo a la corriente para evitar que el detritus se acumule en el surco axial. Rango de PAR recomendado de 50 a 150 µmol·m⁻²·s⁻¹ (adaptable hasta ~200), temperatura de 24-26 °C con picos máximos de 27 °C, salinidad 34-35 g/L, alcalinidad 7,5-9 dKH, Ca 400-450 mg/L y Mg 1250-1350 mg/L.

En el arrecife es una competidora de primer orden: extruye filamentos digestivos a través del coenosarc y digiere el tejido de colonias adyacentes, además de capturar presas planctónicas con los tentáculos que extiende de noche. En acuario, alimentarla dos o tres veces por semana con mysis, krill picado o pellets de 2-3 mm mantenidos sobre los valles acelera el crecimiento y sostiene el color, aunque no es imprescindible si los nutrientes son estables. Se reproduce por desove masivo sincronizado, con colonias gonocóricas y larvas planctónicas; la fragmentación natural es rara por su esqueleto macizo, y la propagación en cautividad exige corte con sierra de diamante y cicatrización lenta.

4. 🌿 MORFOLOGÍA Y CARACTERÍSTICAS

Symphyllia radians (Milne Edwards & Haime, 1849) es un LPS de la familia Lobophylliidae cuyo estatus taxonómico conviene conocer: los análisis moleculares de Arrigoni y colaboradores (2016) demostraron que el género Symphyllia está anidado dentro de Lobophyllia, por lo que en la literatura reciente aparece citada como Lobophyllia radians. En el comercio sigue vendiéndose como Symphyllia, y las implicaciones prácticas (manejo, alimentación, fragmentación) son idénticas.

La colonia es flabelo-meandroide: los pólipos no son individuales ni forman cálices aislados, sino series meandroides (valles continuos) separadas por crestas comunes que comparten las paredes septotecales de dos filas de pólipos. En ejemplares jóvenes la forma es hemisférica; en colonias grandes (hasta 60–80 cm en el arrecife) tiende a aplanarse o a adquirir forma de plato o de abanico cuando crece en pendiente o en sustrato blando. Los valles miden típicamente 12–20 mm de anchura y se extienden 30–60 mm antes de bifurcarse, con un fondo columelar ancho, continuo y esponjoso, claramente visible. Cada valle alberga 15–25 septos dispuestos en dos órdenes, con dientes septales grandes, redondeados y romos —aspecto de “muelas”— y vesículas o fenestras internas, un carácter diagnóstico de la familia. Esta combinación (valle ancho + dientes gruesos y redondeados + columela continua y amplia) es lo que separa a S. radians de S. recta (valles más estrechos, alargados y rectos, septos más finos) y de S. agaricia (valles menores y más numerosos).

El tejido es carnoso y muy distensible: durante el día la colonia se infla con agua y el manto cubre las crestas esqueléticas entre 5 y 10 mm, lo que hace que el esqueleto apenas se vea. Los tentáculos son cortos (2–3 mm), romos y se despliegan únicamente de noche o tras la adición de alimento; no obstante, la capacidad de captura es alta gracias a la extensa superficie del manto y a la fuerte producción de mucus. La coloración va del pardo-grisáceo y verdoso al marrón rojizo, con morfos frecuentes en los que el fondo del valle contrasta (patrón en “molinillo” o diana verdoso/rosado). Las zooxantelas (Symbiodiniaceae, principalmente clados C y D) se alojan en la gastrodermis y le confieren una autotrofia relevante, pero la especie es marcadamente heterótrofa oportunista: en la naturaleza ingiere presas grandes y su tasa de crecimiento depende más del aporte alimenticio que de la luz. El esqueleto es de aragonito, muy denso y pesado, con epiteca basal amplia, lo que le da gran estabilidad y un centro de gravedad bajo.

Symphyllia radians
Symphyllia radians · Foto: (c) Ryan McMinds, some rights reserved (CC BY) (CC-BY)

5. 💧 PARÁMETROS, ILUMINACIÓN Y FLUJO

Parámetro Valor objetivo Observaciones
Temperatura 24–27 °C Tolera 23–28 °C; evitar oscilaciones >1,5 °C/día
Salinidad 34–35 ppt (1.024–1.026) Medir con refractómetro calibrado
pH 8,1–8,4 Estable, ciclo día/noche <0,15
KH (alcalinidad) 7,5–9 dKH (2,7–3,2 meq/L) Consumo moderado-alto de carbonatos
Calcio 400–450 mg/L Por debajo de 380 se detiene el crecimiento
Magnesio 1250–1350 mg/L Clave para mantener Ca y KH en solución
Nitratos (NO₃) 1–5 mg/L Tolera hasta 10–15; a 0 se decolora
Fosfatos (PO₄) 0,02–0,08 mg/L Tolera hasta 0,12; por encima se frena el esqueleto
Iluminación 50–150 µmol/m²/s PAR (baja-moderada) 8–10 h de fotoperiodo; aclimatación de 4–6 semanas
Flujo Bajo-moderado e indirecto (≈5–10 cm/s) Aleatorio u oscilante; nunca chorro laminar directo

El punto crítico es la luz: S. radians vive en el arrecife entre 5 y 25 m, a menudo en zonas turbias o bajo salientes, y responde a la exposición intensa con retracción del manto, aparición de bordes pálidos y, en casos extremos, expulsión de zooxantelas en 7–10 días. Bajo LED, sitúalo en la mitad inferior de la columna o en zonas de sombra parcial. El flujo debe renovar el agua sobre el manto sin golpear los valles: un flujo laminar constante erosiona el tejido de las crestas y favorece la infección bacteriana. Nitratos y fosfatos estables son más importantes que sus valores absolutos; la fluctuación brusca de KH (>1 dKH/día) provoca recesión del manto desde la base.

6. 🪨 COLOCACIÓN, CRECIMIENTO Y FRAGGING

Colocación. El peso y la forma aplanada del esqueleto permiten apoyarlo directamente sobre arena (sustrato de granulometría media, 1–3 mm) o sobre una losa plana de roca viva. Evita las rocas irregulares que presionen el manto: el tejido se expande 1–2 cm y cualquier punto de presión genera necrosis. Reserva un radio libre de 15–20 cm: aunque no emite tentáculos barrendores largos, posee una potente digestión extracoelentérica con filamentos mesentéricos que necrosa el tejido de corales vecinos (Euphyllia, Lobophyllia, Favites) en pocas horas. Evita también la vecindad de zoántidos y de esponjas incrustantes.

Crecimiento. Es una especie lenta: en cautividad, con parámetros estables y alimentación 2–3 veces por semana con trozos de 5–8 mm de mejillón, camarón o lanceta, se obtienen incrementos radiales de 0,5–2 cm al año; la expansión es principalmente lateral (adición de valles nuevos por bifurcación), no vertical. El esqueleto es tan denso que el consumo de calcio y carbonatos por litro es notable en relación al tamaño aparente, así que conviene vigilar KH semanalmente. Con NO₃ por debajo de 1 mg/L y sin alimentación directa, la colonia puede mantenerse viva años sin crecer apreciablemente.

Fragging. Es una de las especies menos agradecidas de fragmentar por su estructura meandroide. Método recomendado: sierra de cinta con hoja de diamante (o Dremel con disco de diamante) y corte perpendicular a las crestas, atravesando una cresta y no el centro de un valle, para que cada fragmento conserve al menos dos o tres valles completos con su columela íntegra; un fragmento formado solo por media serie suele reabsorber tejido y morir. Refrigera el corte con agua de acuario y descarta el ejemplar con signos de “brown jelly” (infección bacteriana oportunista frecuente en las 72 h posteriores). Realiza un baño de yodo (Lugol, 10–15 min) y coloca los fragmentos en un área de flujo moderado y luz baja durante 3–6 semanas. La cicatrización del borde cortado es lenta (4–8 semanas) y el nuevo tejido avanza sobre el corte en forma de ribete pálido. No manipules la colonia madre hasta pasadas 3–4 semanas, y no la alimentes hasta 7–10 días después del corte.

7. 🤝 COMPATIBILIDAD CON PECES E INVERTEBRADOS

Symphyllia radians es uno de los LPS más agresivos que se mantienen en acuario. Sus pólipos desarrollan tentáculos barrendores de 12–15 cm, con nematocistos capaces de digerir tejido de Euphyllia, Catalaphyllia, Lobophyllia, Caulastrea e incluso SPS situados a 8–10 cm; la respuesta se desencadena en menos de 24 horas y deja una necrosis en línea recta, inconfundible. Deje 15–20 cm libres a sotavento, según la corriente dominante, y no lo coloque junto a otros múslidos: el contacto entre dos colonias de distinto genotipo termina siempre en necrosis en la línea de contacto.

Peces. Convive sin problema con peces no corallívoros: Zebrasoma flavescens, Ctenochaetus strigosus, Cirrhilabrus, Pseudanthias, Gramma, Nemateleotris, Synchiropus, blénidos y gobios. Riesgo alto: los Chaetodontidae de dieta mixta o corallívora (Chaetodon lunula, C. ornatissimus, C. meyeri, C. capistratus, C. trifascialis) mordisquean pólipos y dejan «huellas» blanquecinas con esqueleto expuesto que tardan semanas en cubrirse; los Pomacanthidae (Pomacanthus, Holacanthus, Centropyge eibli, C. flavissima) pican el moco y el epitelio. No mantener bajo ningún concepto Oxymonacanthus longirostris (corallívoro obligado), Cantherhines, balístidos, Arothron, Canthigaster valentini ni Diodon;

10. 💎 CONSEJOS DEL EXPERTO

En Symphyllia radians, la clave no es “tratar un LPS más”, sino respetar su arquitectura meandroide: valles radiales con varias bocas, crestas afiladas y un esqueleto pesado que suele apoyarse sobre sustrato plano. Es un coral tolerante si se le da estabilidad, pero muy propenso a retraerse cuando la corriente incide directamente sobre el tejido o cuando el sedimento se acumula en los valles.

  • Apoyo y orientación: colócalo sobre una roca plana o en una cuna de roquedo, nunca enterrado en arena. La base debe quedar firme, sin presión sobre el tejido marginal. Si el esqueleto queda suspendido o apoyado en dos puntos, el peso de la colonia puede fracturar las crestas. Deja 2-3 cm alrededor para que el tejido no roce roca viva; en S. radians la expansión tisular sobre el esqueleto es lenta pero continua.
  • Corriente indirecta y limpieza de valles: busca una renovación suave y aleatoria, equivalente a 15-20 veces el volumen del acuario por hora en la zona, sin chorro laminar. Los valles retienen detritus y restos de comida; si aparece una película marrón en el fondo de los valles, no aumentes la bomba: aspira con pera de goma cada 7-10 días. Una corriente excesiva hace que el tejido se retraiga en la cresta expuesta y deja el esqueleto blanco visible.
  • Luz moderada y aclimatación larga: trabaja en 80-180 PAR, con picos máximos de 200 PAR solo si el coral lleva meses adaptado. Es habitual verlo en zonas bajas o turbias del arrecife, así que la luz intensa directa favorece bleaching y microalgas en las crestas. Si lo incorporas a un acuario de SPS, empieza en la parte baja y sube 10-15 cm cada 10 días durante 4-6 semanas.
  • Alimentación dirigida, no “sopa” de comida: cada valle contiene varias bocas; alimenta 2-3 veces por semana tras apagar luces, cuando salen los tentáculos. Usa trozos de mysis, krill o gamba de 3-5 mm y deposítalos sobre las bocas, no sobre las crestas. En una colonia de 10-12 cm, 6-10 trozos por toma es suficiente. Retira con jeringa lo que no se consuma en 20 minutos para evitar que fermente en los valles.
  • Estabilidad química antes que números perfectos: mantén salinidad 35 ppt, temperatura 24-26 °C, alcalinidad 8,0-9,5 dKH, calcio 420-450 ppm y magnesio 1300-1350 ppm. Evita oscilaciones de más de 0,3 dKH al día y cambios de salinidad por reposición. Nitrato 5-15 ppm y fosfato 0,03-0,10 ppm funcionan bien; con nutrientes a cero el coral se vuelve pálido, y con fosfato alto aparece filamentosa sobre las crestas.
  • Distancia de seguridad nocturna: como otros Lobophylliidae, puede desarrollar tentáculos barrendores al apagarse las luces. Deja 15-20 cm respecto a Euphyllia, Favites o SPS, y revisa con linterna roja 1-2 horas después del apagado. No lo coloques justo aguas abajo de una colonia agresiva: el daño aparece como líneas de tejido necrosado en el borde más próximo.
  • Inspección y baño preventivo: revisa los valles con lupa al recibirlo: flatworms, caracoles depredadores y bolsas de detritus son los problemas más frecuentes. Un baño de prazicuantel a 5 mg/L durante 5-8 minutos, con movimiento suave, ayuda con platelmintos; no cepilles el esqueleto ni recortes crestas sanas. Si hay recesión blanca en la base, corrige alcalinidad y corriente antes de fraccionar.

11. 📅 CALENDARIO DE CUIDADOS

Estación Luz y temperatura Alimentación Parámetros y mantenimiento Vigilancia específica
Primavera Fotoperíodo 8-10 h; subir PAR gradualmente si se busca crecimiento. Temperatura 24-26 °C. 3 tomas semanales de mysis/krill; trozos pequeños en cada valle. Medir alcalinidad 2 veces por semana; aspirar valles cada 10 días; revisar salinidad 35 ppt. Bordes de crecimiento y posibles flatworms en valles.
Verano Evitar picos de 27-28 °C; usar ventilador o enfriador. Sombrear si el PAR supera 200. 2-3 tomas semanales; reducir si hay retracción por calor. Controlar evaporación y reposición; no bajar alcalinidad por debajo de 8,0 dKH. Bleaching incipiente y acumulación de detritus por mayor carga orgánica.
Otoño Mantener 8-10 h de luz; estabilizar temperatura sin oscilaciones nocturnas. 3 tomas semanales para recuperar reservas antes del invierno. Limpieza profunda de valles; revisar calcio y magnesio semanalmente. Tentáculos barrendores y roce con colonias vecinas.
Invierno Revisar calentador; evitar corrientes frías de ventana. Luz estable, sin cambios bruscos. 2 tomas semanales; no sobrealimentar en días de poca actividad. Alcalinidad y salinidad semanales; aspirar restos no consumidos a las 24 h. Recesión basal por frío, estrés o sedimentación en la base.

12. ✅ CONCLUSIÓN

Symphyllia radians es un LPS robusto cuando se le ofrece apoyo firme, corriente indirecta y estabilidad química; no requiere luz intensa ni alimentación diaria, pero sí limpieza de sus valles y distancia física de corales agresivos. La señal de alarma no suele ser el blanqueamiento completo, sino la retracción localizada en crestas expuestas y la recesión del tejido basal. Si mantienes alcalinidad 8,0-9,5 dKH, temperatura 24-26 °C, nitrato 5-15 ppm y una alimentación dirigida 2-3 veces por semana, la colonia conserva su patrón radial y su tejido carnoso. Evita moverla con frecuencia: cada reubicación obliga a reaclimatar luz y corriente, y en esta especie el coste se paga en semanas de tejido retraído. Un S. radians bien asentado es un coral longevo, de crecimiento lento y muy útil como pieza central de un acuario LPS de corriente moderada.

🔎 ANÁLISIS AVANZADO: CASOS Y AJUSTES FINOS

Acoplamiento a parámetros. Symphyllia radians deposita esqueleto denso y crece despacio (2-4 mm/año en el margen), por lo que su consumo de alcalinidad es muy inferior al de un acropórido de biomasa comparable: 0,4-0,8 dKH/día en un 300 L bien poblado. Si calibras la dosificación por el consumo de SPS, el KH se te irá a 10-11 y la primera señal aparecerá en las paredes septales: una línea de tejido retraído que deja al descubierto los septos, sin mucus ni necrosis. Mantén KH 7,8-8,5 con oscilación diaria menor de 0,3 dKH, Ca 420-440 mg/L, Mg 1320-1380 mg/L y salinidad 35 ppt; un Mg por debajo de 1250 desacopla la calcificación y produce márgenes blanquecinos que no progresan. El acoplamiento con nutrientes es el inverso al esperado: por debajo de NO₃ 2 mg/L y PO₄ 0,03 mg/L el coral se aclara y las vaguadas pierden pigmento, mientras que en NO₃ 5-12 y PO₄ 0,06-0,12 mg/L mantiene color y expansión máxima. No es un coral de agua «ultra pura», es un coral de agua estable.

Competencia química entre corales. De noche S. radians extiende filamentos mesentéricos y tentáculos de barrido de 5-8 cm que digieren tejido de Acropora, Montipora y Seriatopora sin aviso; la lesión típica es un frente recto de esqueleto limpio en el vecino, orientado a favor de la corriente. Como emisor también sufre: su mucus arrastra compuestos que inhiben la expansión de otros LPS, y situarlo aguas abajo de Sinularia, Sarcophyton o Lobophytum (terpenos) provoca retracción crónica, palidez y necrosis marginal difusa sin patógeno visible. Deja 12-15 cm con euphylidos y Galaxea (barrido de hasta 20 cm) y colócalo por encima de los blandos en el circuito hidráulico. Carbón activado a 150-200 g por 300 L, renovado cada 3 semanas, más skimmer húmedo, resuelve la mayoría de los cuadros de guerra química que se confunden con enfermedad. Si el halo blanco aparece solo en el lado orientado al competidor y no hay olor fétido, es alelopatía: no hagas baños de yodo.

Respuesta a cambios de luz y flujo. Es un coral de PAR 50-150 µmol/m²/s; por encima de 200 sostenidos reacciona en dos fases. Primero, contracción diurna y mucus espeso; a los 7-12 días, decoloración que comienza en el fondo de las vaguadas —donde la densidad de zooxantelas era mayor por estar adaptada a la sombra— y avanza hacia las crestas. La aclimatación tras un cambio de luz exige 3-4 semanas con subidas de 20-30 µmol/semana; bajar de golpe a sombra total tras un blanqueo ralentiza la recuperación, porque el tejido profundo de las vaguadas necesita flujo para oxigenarse. En cuanto a corriente, tolera bien el movimiento suave e intermitente (5-10 cm/s, tipo ola), pero el chorro laminar directo de una bomba produce «quemadura de flujo»: una franja recta de septos expuestos en la cara de impacto, con tejido sano alrededor. Ajusta la bomba para que el detrito salga de las vaguadas sin levantar arena.

Solución de problemas poco frecuentes. El más subestimado es la acumulación de detrito en las vaguadas, que genera bolsas anaerobias y necrosis localizada en el fondo del valle con olor sulfhídrico; se corrige con jeringa de 20 mL y sifonado dirigido quincenal, no añadiendo más corriente. Cualquier zona de esqueleto expuesto es colonizada en 2-3 semanas por esponjas perforadoras (Cliona) y espiónidos, que amplían la lesión desde dentro y pasan inadvertidos hasta que el coral se desprende de la base. Revisa de noche: Eurythoe complanata y eunicidos raspan tejido en el margen basal y dejan muescas que parecen enfermedad. Ante un despegue de tejido por choque de salinidad (más de 1,5 ppt en horas) o de temperatura, no bañes el ejemplar completo: corta una porción sana de cresta con sierra de diamante, deja 5 mm de margen limpio y fíjala lejos del coral enfermo. Un baño de Lugol (5 gotas/L, 5-8 min) solo tiene sentido con mucus turbio, nunca en márgenes blancos secos.

❓ PREGUNTAS FRECUENTES

¿Qué parámetros de agua exige Symphyllia radians?

Mantén salinidad 34–35 ppt (1.024–1.026), temperatura 24–26 °C estable, pH 8,1–8,4, alcalinidad 7–9 dKH, calcio 420–450 mg/L y magnesio 1300–1350 mg/L. Tolera nitrato 5–15 mg/L y fosfato 0,03–0,08 mg/L; mantenerlos indetectables durante meses suele palidecerlo. Evita oscilaciones de KH superiores a 1 dKH/día: su esqueleto es macizo, pero el tejido de los valles es fino y se desgarra con facilidad al manipularlo.

¿Qué iluminación y corriente necesita?

Iluminación moderada, 80–150 PAR en la zona inferior o media; aclimata a 200 PAR durante 4–6 semanas si viene de luz débil. Espectro 14.000–20.000 K o azul dominante. Corriente indirecta y variable, 10–15 cm/s, sin chorro laminar directo sobre el tejido. Colócalo sobre roca firme, nunca sobre arena: la sedimentación en los valles meandroides favorece infecciones bacterianas y recesión.

¿Cómo se alimenta y con qué frecuencia?

Extiende tentáculos de captura de noche. Ofrece mysis, krill picado, gamba cruda o pellets de 2–3 mm dos o tres veces por semana, tras apagar luces. Haz target feeding con pipeta y bomba en pausa 10 minutos. No requiere alimentación diaria; el exceso eleva nitrato y fosfato. Si no muestra tentáculos, revisa corriente, salinidad y KH antes de aumentar la comida.

¿Es agresiva con otros corales?

Pertenece a Lobophylliidae y puede desplegar tentáculos barrendores de 10–15 cm capaces de digerir tejido de vecinos. Deja 15–20 cm de separación respecto a Acropora, Montipora y otros LPS; usa carbón activo si detectas guerra química. No lo pegues con masilla sobre tejido vivo: la presión y el calor localizado provocan necrosis. Fíjalo por la base esquelética, sin cubrir los valles.

¿Cómo se diferencia de otras Symphyllia y de Lobophyllia?

S. radians muestra valles meandroides curvados, de 10–18 mm de anchura, con dientes septales grandes y redondeados. S. agaricia presenta valles más estrechos y dientes más agudos; S. recta tiende a valles rectos. Lobophyllia tiene corallites flabeloides separados, no una serie meandroide continua. La identificación fiable requiere revisar el esqueleto y, en muchos casos, la revisión taxonómica de Lobophylliidae.

¿Qué problemas de salud y plagas son típicos?

Vigila recesión basal por KH bajo, blanqueamiento por luz superior a 250 PAR, infección bacteriana tras heridas y “brown jelly”. Haz baño de yodo al introducirlo, según fabricante, y no lo expongas al aire. Revisa base y valles por platelmintos y caracoles perforadores; elimínalos con pinzas o dip específico. Una recesión que avanza 2–3 mm/día exige aislar el coral, corregir KH y valorar antibiótico solo con diagnóstico.

📚 REFERENCIAS

  • Veron, J.E.N. (2000). Corals of the World, Vol. 2.
Roberto Parra Jiménez 🎓 Biólogo Marino – Universidad de Hawaii (UH Mānoa)
Especialista en Ecología Acuática, Botánica Tropical y Acuariofilia

© 2026 Roberto Parra Jiménez – Biólogo Marino (UH Mānoa). Todos los derechos reservados.

Comentarios

Deja una respuesta

Tu dirección de correo electrónico no será publicada. Los campos obligatorios están marcados con *

Acuario marino en acuarios.com

Explora las secciones de la tienda.